SB转座子诱变小鼠模型构建
在体内模拟角质细胞转化和cuSCC发生,不依赖紫外线暴露
构建携带Actb-Cre、Trp53突变等位基因和SB转座子系统的SB|Onc3小鼠,观察肿瘤发生。
Transposon mutagenesis identifies cooperating genetic drivers during keratinocyte transformation and cutaneous squamous cell carcinoma progression
包含体内转座子诱变筛选、SBCapSeq基因组测序、转录组分析、体外细胞功能实验和异种移植模型等多层级验证。
SB|Onc3小鼠模型(携带Trp53突变) HaCaT人角质细胞系 A431、COLO16、SCC13人cuSCC细胞系 NSG免疫缺陷小鼠异种移植模型
SB转座子插入位点的克隆性(读段深度阈值300,多区域测序为200) Zmiz1/2激活插入与基因表达升高的相关性 shRNA敲低效率及对细胞增殖的影响 异种移植实验中的肿瘤体积测量时间点和统计方法 小鼠模型中的Trp53基因型(野生型、R172H突变、KO)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在体内模拟角质细胞转化和cuSCC发生,不依赖紫外线暴露
构建携带Actb-Cre、Trp53突变等位基因和SB转座子系统的SB|Onc3小鼠,观察肿瘤发生。
鉴定cuSCC和cuKA中复发性SB插入位点,定义候选驱动基因
对60个cuSCC、11个cuKA和32个正常皮肤样本进行SBCapSeq测序,结合SB Driver Analysis统计筛选驱动基因。
验证SB插入对驱动基因表达的影响,尤其是Zmiz1/2
对7个cuSCC肿瘤进行全转录组RNA-seq,检测SB融合转录本,并分析差异表达基因。
验证ZMIZ1ΔN185能否转化人角质细胞
在HaCaT细胞中稳定过表达ZMIZ1或ZMIZ1ΔN185,进行软琼脂集落形成实验;在A431和COLO16细胞中敲低ZMIZ1/ZMIZ2,检测细胞增殖。
验证CREBBP、KMT2C、NCOA2敲低能否促进角质细胞转化
在HaCaT细胞中敲低这些基因,进行增殖和软琼脂集落形成实验。
验证KMT2C和NCOA2在体内是否抑制cuSCC肿瘤生长
在A431、COLO16和SCC13细胞中稳定敲低KMT2C/NCOA2,皮下注射到NSG小鼠,测量肿瘤体积。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 基因组测序 | Ion Proton平台 | Life Technologies | PIv3 |
| 定量PCR | TaqMan探针 | Life Technologies | -- |
| 蛋白质印迹 | 抗SBase抗体 | R&D Systems | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | ATCC | 30-2002 |
| Leibovitz L-15培养基 | ATCC | 30-2001 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型构建 | 小鼠品系、Trp53基因型、转座子类型(T2/Onc3)、SB转座酶激活方式 阅读提示:Methods: Mice used for SB screens |
| SBCapSeq测序 | DNA起始量、捕获探针、测序平台、插入位点分析参数(读段深度阈值) 阅读提示:Methods: Mapping transposon insertion sites using the SBCapSeq method |
| 细胞增殖实验 | 细胞系、接种密度、培养时间、统计方法 阅读提示:Methods: Proliferation assay |
| 软琼脂实验 | 琼脂浓度、细胞密度、培养时间、染色方法 阅读提示:Methods: Soft agar assay |
| 异种移植实验 | 细胞数量、小鼠品系、注射部位、测量频率、统计方法 阅读提示:Methods: Xenografts |