多系统萎缩相关的少突胶质细胞蛋白p25α刺激形成具有增强神经退行性潜力的新型α-突触核蛋白株

Multiple system atrophy-associated oligodendroglial protein p25α stimulates formation of novel α-synuclein strain with enhanced neurodegenerative potential

作者信息Nelson Ferreira, Hjalte Gram, Zachary A Sorrentino, Emil Gregersen, Sissel Ida Schmidt, Lasse Reimer, Cristine Betzer, Clara Perez-Gozalbo, Marjo Beltoja, Madhu Nagaraj, Jie Wang, Jan S Nowak, Mingdong Dong, Katarina Willén, Ersoy Cholak, Kaare Bjerregaard-Andersen, Nicolas Mendez, Prakruti Rabadia, Mohammad Shahnawaz, Claudio Soto, Daniel E Otzen, Ümit Akbey, Morten Meyer, Benoit I Giasson, Marina Romero-Ramos, Poul Henning Jensen
PMID33978813
发布时间2021-07
DOI10.1007/s00401-021-02316-0

实验完整度

证据包括体外生物物理与生化表征、细胞实验(人iPSC神经元及OLN-AS7细胞)以及两种小鼠模型的体内验证(M83转基因及野生型),并包含功能验证和机制探索。

主要模型

人iPSC来源多巴胺能神经元 大鼠少突胶质细胞系OLN-AS7 人A53T转基因M83小鼠 野生型C57BL/6小鼠

重点核对

α-Syn单体浓度346 μM与p25α浓度17 μM的摩尔比 人iPSC来源神经元分化38天后,PFF处理浓度14 μg/ml,处理24小时 M83小鼠双侧肌肉注射PFF:10 μg/腿,观察生存期及行为学 野生型小鼠单侧纹状体注射PFF:10 μg/2 μl,观察运动行为及病理 脑匀浆用于PMCA检测时,稀释度为0.01%,0.001%,0.0001%

摘要

由α-突触核蛋白(α-Syn)的细胞内聚集体构成的病理改变通过神经系统传播,涉及多种神经退行性疾病,包括帕金森病、路易体痴呆和多系统萎缩。结构上不同的α-Syn多态性(即所谓的“株”)的发现支持了一种假说,即株特异性结构被模板化为天然α-Syn形成的聚集体。这些不同的株被认为决定了病理在组织中的传播和聚集体的细胞影响,从而导致了临床表型的多样性。在此,我们提供了由多系统萎缩相关的少突胶质细胞蛋白p25α诱导的新型α-Syn株的证据。通过一系列生物物理、生物化学、细胞和体内分析,我们证明与单独的α-Syn相比,亚化学计量的p25α将α-Syn聚集重定向为一种独特的α-Syn/p25α株,该株具有不同的结构和增强的体内促神经退行性特性。α-Syn/p25α株在人多巴胺能神经元中诱导了更大的包涵体。在体内,与α-Syn PFF相比,肌肉注射α-Syn/p25α株的预形成纤维(PFF)缩短了表达人A53T转基因(M83品系)小鼠的寿命,并导致了脑内包涵体病理的不同解剖分布。对终末期小鼠脑干提取物中α-Syn聚集体的研究表明,α-Syn/p25α株更具侵袭性的表型与基于Förster共振能量转移免疫分析的α-Syn聚集体负荷增加以及基于蛋白错误折叠循环扩增分析的α-Syn聚集体播种活性降低相关。当单侧注射到野生型小鼠的纹状体时,与α-Syn PFF相比,α-Syn/p25α株导致了更明显的运动表型,并表现出对黑质-纹状体神经元的“趋向性”。总体而言,我们的数据支持一个假说,即少突胶质细胞p25α负责在多系统萎缩中产生高度促神经退行性的α-Syn株。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
少突胶质细胞蛋白p25α是否能诱导形成具有独特结构和增强神经退行性潜力的新型α-Syn株,从而解释MSA中快速且致命的神经退行性过程?
核心机制
p25α以亚化学计量浓度存在时,通过改变α-Syn聚集的动力学和结构,形成一种新型α-Syn/p25α株,该株具有不同的β-折叠排列、蛋白水解模式和固体NMR结构,并在体内模板化α-Syn聚集体,增强其神经毒性并改变其传播趋向性。
主要证据
体外生物物理和生化表征(ThT/K114荧光、蛋白酶K消化、SSNMR、CD/FTIR)显示α-Syn/p25α株结构不同;人iPSC神经元和OLN-AS7细胞实验显示其诱导更大包涵体;M83小鼠模型中,α-Syn/p25α PFF缩短生存期并加速疾病进展;野生型小鼠纹状体注射后显示更强的运动缺陷和对黑质纹状体神经元的趋向性。
研究意义
该研究提出p25α是MSA中产生α-Syn株的候选少突胶质细胞因子,并提示p25α与α-Syn的相互作用可能成为MSA的新治疗靶点,同时该体外生成的α-Syn/p25α多态性可作为建模突触核蛋白病的新工具。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外生成和表征α-Syn/p25α株

验证p25α是否能在体外诱导形成结构独特的α-Syn株。

将α-Syn单体(346 μM)与p25α(17 μM)共孵育,通过震荡形成PFF,并通过沉淀实验、ThT/K114荧光、AFM、TEM、CD、FTIR、SSNMR等方法分析结构。

2

细胞模型中的播种活性评估

评估α-Syn/p25α株在人神经元和少突胶质细胞系中的播种能力。

将人iPSC来源的多巴胺能神经元(分化38天)和OLN-AS7细胞暴露于α-Syn或α-Syn/p25α PFF,孵育后固定并免疫染色,分析pS129阳性包涵体的大小和数量。

3

M83小鼠肌肉注射模型

在体内评估α-Syn/p25α株的神经退行性潜力,特别是在转基因小鼠中的传播和致死性。

3月龄M83+/−小鼠双侧小腿肌肉注射α-Syn或α-Syn/p25α PFF(10 μg/腿),监测生存期、运动行为,并在终末期分析脑内α-Syn病理、FRET信号和PMCA播种活性。

4

野生型小鼠纹状体注射模型

评估α-Syn/p25α株在野生型小鼠中的播种能力、病理传播和运动功能影响。

将α-Syn单体、α-Syn PFF或α-Syn/p25α PFF(10 μg)单侧注射至野生型C57BL/6小鼠的右侧纹状体,在3和6个月后进行行为学测试和免疫组化分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Poros HQ50柱Thermo Fisher Scientific--
Jupiter C18柱Phenomenex--
Poros HS50阳离子交换柱PerSeptive Biosystems--
GF-75凝胶过滤柱Amersham Biosciences--
BCA蛋白浓度检测试剂盒Pierce--
Eppendorf ThermotopEppendorf--
Branson 250超声破碎仪Branson--
EnSpire 2300多功能酶标仪Perkin Elmer--
Multimode 8原子力显微镜Bruker--
Tecnai G2透射电镜FEI--
Chirascan-plus圆二色谱仪Applied Photophysics--
Q500超声破碎仪Qsonica--
Tensor 27傅里叶变换红外光谱仪Bruker--
Wyatt DynaPro NanoStar动态光散射仪Wyatt--
Bruker 950 MHz核磁共振波谱仪Bruker--
蛋白酶KSigma-Aldrich--
Pefabloc蛋白酶抑制剂Sigma-Aldrich--
iBlot® 2干式转印系统Thermo Fisher--
抗α-Syn Syn-1抗体BD Biosciences610787
抗α-Syn LB509抗体Abcam27766
抗小鼠HRP二抗Dako--
ECL化学发光底物GE Healthcare--
Fuji Las-3000成像系统Fujifilm--
Bio-Dot点印迹装置Bio-Rad--
抗p25α抗体----
MJF14-6-4-2抗体Abcam209538
FILA-1抗体----
DOPA分化试剂盒XCell Science--
BI2536(PLK1抑制剂)----
抗MAP2抗体Abcamab92439
抗pS129抗体(11A5)Imago Pharmaceuticals--
Zeiss Observer.Z1显微镜Zeiss--
DAPITh.Geyer--
抗微管蛋白抗体Abcamab6160
抗pSer129 α-Syn抗体Cell Signaling Technology23706
柠檬酸抗原修复液pH 6Agilent--
Vectastain ABC Elite试剂盒Vector Laboratories--
DAB显色试剂盒KPL--
Aperio ScanScope CS扫描仪Aperio Technologies--
抗p62抗体ProteinTech--
抗泛素-1抗体EMD Millipore--
抗pThr205 tau抗体7F2----
抗GFAP抗体Wako--
抗cd11b抗体AbCam--
Hamilton注射器Hamilton--
异氟烷----
Precellys裂解试剂盒Bertin InstrumentsP000912-LYSK0
Cisbio人α-Syn聚集检测试剂盒Cisbio Perkin Elmer6FASYPEH
PHERAstar多功能酶标仪BMG Labtech--
Gemini-XS荧光酶标仪Molecular Devices--
NuPAGE LDS上样缓冲液Invitrogen--
NuPage 12% Bis-Tris凝胶Invitrogen--
ECL Prime化学发光检测试剂Amersham Biosciences--
立体定位仪Stoelting--
冷冻切片机(Microm HM 450)Microm--
抗酪氨酸羟化酶抗体MilliporeAB152
抗MJF14抗体Abcam209538
抗Iba1抗体Wako019-19741
抗GAP抗体Abcamab7260
抗MHC II抗体eBioscience14-5321
DPX封片剂Sigma-Aldrich06522

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
α-Syn/p25α PFF制备
α-Syn单体浓度346 μM,p25α浓度17 μM,反应体积、震荡速度和时间(1050 rpm,37°C,72小时)
阅读提示:Methods: Quantitative α-Syn fibril assembly and sedimentation
细胞播种实验
人iPSC分化多巴胺能神经元的培养条件,分化天数(38 d),PFF处理浓度(14 μg/ml),处理时间(24 h),洗脱和培养时间(6 d);OLN-AS7细胞培养条件,PFF处理浓度(14 μg/ml),处理时间(12 h),洗脱和培养时间(36 h)
阅读提示:Methods: Cell cultures
M83小鼠肌肉注射模型
小鼠品系(TgM83+/-),年龄(3个月),注射剂量(10 μg/腿),注射体积(5 μl),注射部位(后腿腓肠肌),麻醉和术后护理,观察指标(生存期、后肢紧握)
阅读提示:Methods: In vivo induction and transmission of α-Syn pathology by intramuscular injection of α-Syn PFF
野生型小鼠纹状体注射模型
小鼠品系(雌性C57BL/6),年龄(6周龄),注射剂量(10 μg/2 μl),注射坐标(AP 0.7 mm,ML -2.5 mm,DV -3.0 mm),注射速率(0.2 μl/30 s),行为学测试时间点(3和6个月)
阅读提示:Methods: In vivo induction and transmission of α-Syn pathology by intrastriatal injection of α-Syn PFF
FRET检测
脑匀浆制备方法(10% w/v),稀释系列,抗体浓度,孵育时间(20 h),检测波长(665/620 nm),计算delta F%/μg
阅读提示:Methods: Förster resonance energy transfer (FRET) analysis of aggregated α-Syn
PMCA
脑匀浆稀释度(0.01%,0.001%,0.0001%),底物浓度(1 mg/ml),循环参数(1 min震荡,29 min静置,37°C),ThT浓度(5 μM),检测波长(λex=435 nm,λem=485 nm)
阅读提示:Methods: α-Syn protein misfolding cyclic amplification (α-Syn-PMCA) from human A53T-α-Syn-transgenic M83 mice
免疫组化分析
一抗种类和稀释度(例如81A, EP1536Y, LS4-2G12, 2H6等),抗原修复方法(Tween-20或柠檬酸缓冲液),DAB显色时间,定量分析方法(positive pixel count algorithm)
阅读提示:Methods: Immunohistochemistry, Quantitation of 81a and 2H6 positivity