建立SARS-CoV-2及流感感染仓鼠模型
建立可模拟人类急性SARS-CoV-2感染的动物模型并以流感感染作对照。
6–8周龄雄性Golden Syrian仓鼠经鼻接种SARS-CoV-2 HK-13株或A(H1N1)pdm09,模拟对照组给予PBS,于多个时间点处死采集肺组织。
Chronic lung inflammation and CK14+ basal cell proliferation induce persistent alveolar-bronchiolization in SARS-CoV-2-infected hamsters.
含仓鼠体内模型、多时间点组织病理、免疫荧光、RT-qPCR、RNA-seq及空间转录组多层级验证
雄性Golden Syrian仓鼠SARS-CoV-2 HK-13株感染模型 雄性Golden Syrian仓鼠A(H1N1)pdm09感染对照模型 Vero E6-TMPRSS2细胞 MDCK细胞
SARS-CoV-2 HK-13株以103 PFU/只、50 μl体积鼻内接种,PBS为模拟对照 A(H1N1)pdm09以105 PFU/只鼻内接种作为对照 于4、7、14、42、84、120dpi采集肺组织和血液 组织切片H&E、Masson三色染色及免疫组化/免疫荧光检测病毒N抗原、Ki67、CK14、SCGB1A1、Tubulin、Notch3、Hes1等 RT-qPCR检测病毒载量、细胞因子及Notch/纤维化相关基因,ΔΔCt法以同龄模拟对照为基线
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立可模拟人类急性SARS-CoV-2感染的动物模型并以流感感染作对照。
6–8周龄雄性Golden Syrian仓鼠经鼻接种SARS-CoV-2 HK-13株或A(H1N1)pdm09,模拟对照组给予PBS,于多个时间点处死采集肺组织。
明确SARS-CoV-2感染后肺部慢性组织病理学病变及其时间进程。
对肺组织切片行H&E和Masson三色染色,观察肺泡-细支气管化灶、炎症浸润、胸膜和肺泡间隔纤维化。
判断急性期后肺部是否存在病毒残留及持续炎症反应。
RT-qPCR检测病毒RdRp基因及炎症细胞因子/趋化因子,免疫组化和免疫荧光检测SARS-CoV-2 N抗原及与Iba1的共定位。
确定肺泡-细支气管化灶的细胞来源。
免疫荧光双染SPC/Ki67追踪AT2细胞,CK14/Ki67、CK14/SPC、CK14/SCGB1A1、CK14/Tubulin追踪CK14+基底细胞的增殖与分化。
探究持续性肺泡-细支气管化的分子机制。
RT-qPCR检测Notch通路相关基因,免疫荧光检测Notch3和Hes1蛋白,并对120dpi肺组织行Stereo-seq空间转录组分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| RNA提取与RT-qPCR | MiniBEST通用RNA提取试剂盒 | Takara | -- |
| 逆转录 | PrimeScript逆转录试剂盒 | Takara | -- |
| RT-qPCR | QuantiNova探针PCR试剂盒 | Qiagen | -- |
| SYBR Premix Ex Taq II试剂盒 | Takara | -- | |
| 免疫组化/免疫荧光 | 抗Ki67抗体 | BD | 556003 |
| 抗Ki67抗体 | Abcam | ab15580 | |
| 免疫荧光 | 抗β微管蛋白-IV抗体 | Sigma | T7941 |
| 抗CK14抗体 | Invitrogen | PA516722 | |
| 抗CK14抗体 | Invitrogen | MA5-11599 | |
| 抗SCGB1A1抗体 | Proteintec | 10490 | |
| 抗SPC抗体 | Millipore | ab3786 | |
| 抗Iba1抗体 | Abcam | ab178846 | |
| 抗Notch3抗体 | MyBioSource | MBS242006 | |
| 抗Hes1抗体 | LSBio | LS-B2211 | |
| 抗Sox2抗体 | Proteintech | 11064-1-AP | |
| 抗Mlf1抗体 | MyBioSource | MBS9605647 | |
| 纤维化染色 | NovaUltra Masson三色染色试剂盒 | IHC World | IW3006 |
| RNA提取 | NucleoSpin RNA试剂盒 | Macherey-Nagel | 740955.250 |
| RNA-seq建库 | KAPA mRNA HyperPrep建库试剂盒 | -- | -- |
| 空间转录组建库 | Stereo-seq FFPE转录组试剂盒 | STOmics Tech | -- |
| Stereo-seq 16条形码文库试剂盒V1.0 | STOmics Tech | -- | |
| 全片扫描 | Akoya Vectra Polaris扫描仪 | Akoya Bioscience | -- |
| 显微成像 | Olympus BX53光学显微镜 | Olympus Life Science | -- |
| 共聚焦成像 | Zeiss LSM900共聚焦显微镜(配AiryScan 2) | Zeiss | -- |
| RNA-seq测序 | Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- |
| 空间转录组测序 | MGI DNBSEQ T系列测序仪 | MGI-TECH | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 病毒接种与分组 | 病毒株(HK-13、BA.5、A/H1N1pdm09)、接种剂量(SARS-CoV-2 103 PFU,IAV 105 PFU)、体积50 μl、麻醉剂剂量、随机分组 阅读提示:Methods的Virus, cell lines and biosafety与Virus challenge in hamsters小节 |
| 动物与时间点 | 仓鼠品系、周龄、体重、各时间点样本量(见表S1)、处死方式 阅读提示:Methods的Animals与Virus challenge小节,Fig. 1a和Fig. 2a实验布局 |
| 组织病理学与纤维化评分 | H&E与Masson染色条件、Ashcroft评分方法、双盲阅片、病灶半定量评分 阅读提示:Methods的Histopathology与Digital image analysis小节,Fig. 2d和Fig. 3c |
| 免疫荧光与定量 | 各抗体来源与货号、共染组合、阳性细胞定量方法、QuPath版本 阅读提示:Methods的Histopathology及Digital image analysis小节,各Figure legends |
| 转录组与空间转录组 | RNA-seq建库与测序平台、DESeq2阈值(|log2FC|>1且FDR<0.05)、Stereo-seq芯片规格与bin100分析参数 阅读提示:Methods的Bulk RNA-seq与Spatial transcriptomics小节 |