样品采集与宿主鉴定
确认T. tokunagai在黄海的分布、分类地位及种群结构
2018–2025年九个航次采集黄海162个站位,用0.1 m²箱式采泥器取表层沉积物,0.5 mm筛手工挑取蛤;结合形态和线粒体cox1条形码鉴定,并分析9个采样点cox1相似性、单倍型网络及30个线粒体基因组13个蛋白编码基因的STRUCTURE分析。
Intricate chemosymbiosis in a widespread shallow-water thyasirid clam.
结合电镜、FISH、扩增子/宏基因组/宏转录组、放射性碳示踪等多层级证据,含功能与机制验证
浅水索氏蛤Thyasira tokunagai活体个体 T. tokunagai鳃组织匀浆 鳃部Sedimenticola共生菌(两种phylotype)
T. tokunagai样本采自黄海9–82 m(材料方法写9–80 m),2018–2025年九个航次162个站位中的107个 鳃部Sedimenticola共生菌占比:全长16S扩增子平均92.34%(n=21),V3-V4扩增子平均88%(n=99) 两种phylotype在16S rDNA第590位单碱基差异(G vs A),分别占共生菌群46.29%和45.88% 14C-DIC活体蛤孵育:8站,每站6个实验样本+1对照,原位温度约12小时,加入约3.7×10⁴ Bq 14C-DIC 鳃匀浆温度实验:4站混合样,5°、12°、20°、28°C暗孵育46–47小时,每温度3实验+1阴性对照
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认T. tokunagai在黄海的分布、分类地位及种群结构
2018–2025年九个航次采集黄海162个站位,用0.1 m²箱式采泥器取表层沉积物,0.5 mm筛手工挑取蛤;结合形态和线粒体cox1条形码鉴定,并分析9个采样点cox1相似性、单倍型网络及30个线粒体基因组13个蛋白编码基因的STRUCTURE分析。
判断宿主的营养策略及共生菌对碳氮来源的贡献
取全个体、鳃和内脏团组织冻干,用同位素比质谱仪测定δ13C和δ15N,并与POM、SOM、浮游植物、浮游动物和大型底栖动物比较。
确认鳃部优势共生菌种类及其在鳃组织中的空间分布
全长16S rRNA基因扩增子测序(21个鳃样、6个沉积物样)和V3-V4区扩增子测序(99个鳃样)分析细菌群落;FISH、H&E和TEM观察共生菌在鳃丝中的位置及胞外囊状结构。
解析两种phylotype的基因组差异及在鳃组织中的空间异质性
通过Sanger测序验证16S rDNA第590位单碱基差异;结合长读长和短读长测序组装30个环状MAGs,用StrainPanDA分解phylotype;Stereo-seq空间metabarcoding分析6个个体鳃切片的phylotype分布。
评估两种phylotype的碳、硫、氮、氢代谢能力及宿主-共生菌代谢互补
对30个MAGs进行KEGG注释和通路完整性分析;对8个样品进行宏转录组测序,分析CBB循环、硫氧化、氮代谢和氢化相关基因表达;比较宿主基因组与共生菌基因组的代谢通路完整性。
量化完整蛤体将溶解无机碳转化为有机碳的能力
将活体蛤置于20 ml无菌血清瓶中,加入原位无菌海水和14C-DIC示踪剂,原位温度孵育约12小时后终止反应,过滤、研磨、闪烁计数测定放射性。
探究温度对共生菌碳固定速率的影响
将4个站位的鳃组织匀浆混合后分装,在5°、12°、20°、28°C暗孵育46–47小时,加入14C-DIC,三氯乙酸终止对照,过滤后闪烁计数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 稳定同位素分析 | 同位素比质谱仪 | Sercon Instruments | -- |
| 透射电子显微镜 | JEM-1200EX透射电子显微镜 | JEOL | -- |
| FISH | Alexa Fluor 488标记的刀豆蛋白A | Invitrogen | -- |
| ProLong Diamond抗淬灭封片剂 | Invitrogen | -- | |
| 4′,6-二脒基-2-苯基吲哚 | Solarbio | -- | |
| DNA提取 | DNeasy血液与组织DNA提取试剂盒 | QIAGEN | -- |
| 沉积物DNA提取 | PowerSoil DNA分离试剂盒 | QIAGEN | -- |
| DNA定量 | NanoDrop Lite微量核酸蛋白测定仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 宏基因组牛津纳米孔测序 | SQK-LSK109建库试剂盒 | Oxford Nanopore Technologies | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RNA质检 | Bioanalyzer 5400系统 | Agilent Technologies | -- |
| rRNA去除 | TIANSeq rRNA去除试剂盒 | -- | -- |
| 空间metabarcoding | Stereo-seq芯片 | BGI | -- |
| Stereo OR 100显微镜 | -- | -- | |
| 核酸染料 | Thermo Fisher Scientific | Q10212 | |
| 0.1×SSC缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | AM9770 | |
| RNase抑制剂 | NEB | M0314L | |
| 胃蛋白酶 | Sigma-Aldrich | P7000 | |
| VAHTSTM DNA纯化磁珠 | -- | -- | |
| Qubit dsDNA HS定量试剂盒 | -- | -- | |
| Stereo-seq 16 Barcode建库试剂盒V1.0 | -- | -- | |
| 14C-DIC活体孵育 | GSWP滤膜 | Millipore | -- |
| Ultima Gold闪烁液 | PerkinElmer | -- | |
| Tri-Carb 3100TR液体闪烁计数仪 | PerkinElmer | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样品采集与宿主鉴定 | 采样深度范围:材料方法写9–80 m,结果写9–82 m;采样站位162个中107个有分布;活体暂养温度~10°C 阅读提示:查看Materials and Methods的Sampling description及table S1、S2 |
| 共生菌鉴定与定量 | 全长16S扩增子n=21、V3-V4扩增子n=99;引物27F/1492R和341F/805R;测序平台PacBio RS II和Illumina NovaSeq 6000 阅读提示:查看Materials and Methods的16S rRNA gene amplicon sequencing |
| 两种phylotype空间分布 | 6个个体鳃切片;bin 20定义(20×20 DNA NanoBalls,约10 μm);有效spot至少180 reads;优势阈值>95%;第590位G/A差异 阅读提示:查看Materials and Methods的Spatial metabarcoding sequencing和Spatial metabarcoding analyses及fig. S7 |
| 活体holobiont碳同化率 | 8站每站6实验+1对照;每瓶15 ml原位无菌海水;100 μl约3.7×10⁴ Bq 14C-DIC;原位温度约12小时;甲醛终浓度4% 阅读提示:查看Materials and Methods的Live clam incubations及Fig. 5B、fig. S12A |
| 鳃匀浆温度实验 | 4站混合、每温度3实验+1阴性对照;5°、12°、20°、28°C;暗孵育46–47小时;14C-DIC约4.1×10⁴ Bq;0.5 ml 100%三氯乙酸终止对照 阅读提示:查看Materials and Methods的Homogenized gill tissue incubations及fig. S15B |