构建并体外表征T细胞重定向构建体
验证B7-H3–TCE、B7-H3–CAR、EGFRvIII–CAR及CAR–STAb构建体的表达、结合与功能活性。
制备B7-H3–TCE,构建MSGV1逆转录病毒载体表达的B7-H3–STAb-T、B7-H3–CAR-T、EGFRvIII–CAR-T和CAR–STAb-T细胞,流式检测CAR表达/TCE装饰及CD4/CD8比例,并检测TCE剂量依赖性T细胞活化。
Local T-cell engager secretion reprograms endogenous antitumor immunity and enhances CAR-T cell persistence in solid tumors
包含体外细胞毒性与旁观者招募实验、免疫健全小鼠皮下及颅内肿瘤模型、TCR库测序和过继转移功能验证
B16-F10工程化肿瘤细胞系(表达EGFRvIII和/或B7-H3) C57BL/6小鼠皮下荷瘤模型 C57BL/6小鼠颅内荷瘤模型 小鼠脾脏来源原代T细胞
CAR–STAb-T和STAb-T细胞在异质性肿瘤模型中的肿瘤控制与生存获益 工程化T细胞体内持久性(qPCR检测U3–psi,以GAPDH为内参) 内源性CD8+ T细胞对B16WT的细胞毒性和IFN-γ分泌(ELISpot/ELISA) TCRβ库测序中扩增克隆型及与B16-F10反应性序列的相似性 长期存活小鼠来源CD8+ T细胞过继转移后的肿瘤再攻击保护
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证B7-H3–TCE、B7-H3–CAR、EGFRvIII–CAR及CAR–STAb构建体的表达、结合与功能活性。
制备B7-H3–TCE,构建MSGV1逆转录病毒载体表达的B7-H3–STAb-T、B7-H3–CAR-T、EGFRvIII–CAR-T和CAR–STAb-T细胞,流式检测CAR表达/TCE装饰及CD4/CD8比例,并检测TCE剂量依赖性T细胞活化。
比较单靶向和双靶向T细胞对同质性及异质性肿瘤细胞的杀伤能力,并验证TCE介导的旁观者T细胞招募。
将转导T细胞与表达EGFRvIII和/或B7-H3的B16靶细胞共培养,流式计数存活肿瘤细胞;在恒定E:T比下减少A-T细胞并加入NT-T bystander细胞,检测旁观者杀伤;用B16EGFRvIII与B16B7-H3 1:1混合模型检测异质性肿瘤逃逸。
比较EGFRvIII–CAR-T、B7-H3–CAR-T和B7-H3–STAb-T在同质性B16EGFRvIII-B7-H3皮下肿瘤中的抗肿瘤活性及内源性免疫诱导。
C57BL/6小鼠皮下接种B16EGFRvIII-B7-H3细胞,淋巴清除后静脉给予NT-T或转导T细胞,监测肿瘤生长和生存;终点分析抗原下调、工程化T细胞持久性、脾CD8+ T细胞杀伤和IFN-γ分泌;并将存活小鼠CD8+ T细胞过继转移至B16WT荷瘤小鼠。
评估单靶向与双靶向策略在抗原异质性肿瘤中的抗逃逸能力和持久性。
使用20% B16B7-H3+80% B16WT或10% B16EGFRvIII-B7-H3+90% B16WT的混合肿瘤模型,比较NT-T、EGFRvIII–CAR-T、B7-H3–STAb-T和CAR–STAb-T的肿瘤控制、生存、工程化T细胞持久性及内源性CD8+ T细胞IFN-γ反应。
比较不同T细胞重定向策略对内源性TCR克隆扩增、B16反应性克隆富集和表位扩展的影响。
对同质性B16EGFRvIII-B7-H3荷瘤小鼠给予NT-T、EGFRvIII–CAR-T、B7-H3–STAb-T、CAR–STAb-T或全身性B7-H3–TCE,终点取脾脏进行TCRβ库测序;将扩增CDR3与已发表的B16-F10反应性CDR3参考数据集比较;并用gp100肽、B16WT或CT2A再刺激引流淋巴结细胞检测IFN-γ。
在免疫豁免的中枢神经系统环境中评估CAR–STAb-T相对于单靶向策略的疗效、持久性和内源性免疫激活。
C57BL/6小鼠颅内接种B16EGFRvIII-B7-H3细胞,于第7、10、12天静脉给予NT-T、EGFRvIII–CAR-T、B7-H3–STAb-T或CAR–STAb-T细胞,监测生存;终点检测脾脏工程化T细胞持久性和淋巴结细胞对B16WT/gp100的IFN-γ反应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI培养基 | Sigma-Aldrich | -- |
| 胎牛血清 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 非必需氨基酸 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 人白细胞介素-2 | Iovance Biotherapeutics | -- | |
| 人白细胞介素-2 | Mayo Clinic facilities | -- | |
| T细胞活化 | 伴刀豆球蛋白A | Sigma-Aldrich | -- |
| 流式分析 | FITC标记抗小鼠CD69抗体 | -- | -- |
| 逆转录病毒转导 | MSGV1逆转录病毒质粒 | -- | -- |
| pCL Eco辅助质粒 | Novus Biologicals | -- | |
| RetroNectin包被板 | Takara | -- | |
| 流式分析 | Zombie NIR活性染料 | -- | -- |
| 精确计数微球 | BioLegend | -- | |
| 动物实验 | 氟达拉滨 | -- | -- |
| 环磷酰胺 | -- | -- | |
| 数据分析 | GraphPad Prism V.8 | GraphPad Prism Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外细胞毒性与旁观者招募实验 | E:T比范围、A-T:T比、恒定总E:T 10:1、共培养48小时、靶细胞抗原表达比例 阅读提示:Methods的Cytotoxicity assays小节及Figure 1D–H图注 |
| 同质性皮下肿瘤模型 | B16EGFRvIII-B7-H3细胞2×105/只、8只/组、氟达拉滨100 mg/kg和环磷酰胺25 mg/kg每2天1–3次、5剂1×107 T细胞静脉注射、终点肿瘤1 cm³或第70天 阅读提示:Methods的In vivo experiments小节及Figure 2A图注 |
| 异质性肿瘤模型 | 20% B16B7-H3+80% B16WT或10% B16EGFRvIII-B7-H3+90% B16WT混合比例、10%模型单次5×106 A-T+5×106 NT-T、8只/组 阅读提示:Figure 3A和3D图注及Results相应段落 |
| 系统性与局部TCE比较 | 全身性B7-H3–TCE剂量20 µg/次、每日腹腔注射共7天;局部STAb-T/CAR–STAb-T为2剂1×107 T细胞静脉注射;8只/组 阅读提示:Figure 4A图注及Methods的In vivo experiments小节 |
| 颅内肿瘤模型 | 2×105 B16EGFRvIII-B7-H3细胞颅内接种、8只/组、第7、10、12天3剂1×107 T细胞静脉注射、终点第40天或肿瘤进展 阅读提示:Figure 6A图注及Results相应段落 |
| TCR库测序与内源性免疫分析 | 扩增克隆型阈值≥0.05%丰度(≥500 CPM)、B16-F10反应性CDR3参考数据集、gp100肽和SIINFEKL肽浓度(文中未明确说明)、ELISA检测时间点 阅读提示:Methods的Statistical analysis小节前后及Figure 5图注、online supplemental figure S6 |