岛叶定量解剖图谱构建
建立可跨动物比较的岛叶二维扁平图,用于将细胞定位到亚区和皮层层次。
对Nissl染色和PV免疫组化切片进行三维重建和标注,利用Laplacian方程构建层流坐标,生成岛叶扁平图并定义AI、DI、GI边界和各层厚度。
Pyramidal cell types and circuit organization of the mouse insular cortex reveal functional specializations
包含离体膜片钳电生理、树突形态重建、LSPS局部输入图谱、逆行示踪、ChR2辅助环路映射及在体条件性味觉厌恶行为验证。
小鼠急性岛叶脑片(改良水平切片) C57BL/6及PV-Cre、Fezf2-CreER等转基因小鼠 条件性味觉厌恶(CTA)在体行为模型
1,130个锥体神经元纳入多模态数据集,其中958个用于形态聚类、306个用于电学聚类、154个用于局部输入聚类 急性脑片改良水平切片厚度:内在特性记录300 µm,LSPS和ChR2实验350 µm 逆行微珠注射标记投射靶标:对侧AI、Ent、NAc、BLA、CeA、MD、PF/PO、NTS LSPS使用200 µM MNI-caged-L-glutamate,75 µm×75 µm刺激网格,电压钳−70 mV CTA实验:0.15 M蔗糖配对0.15 M LiCl(2% ml/g体重)腹腔注射
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立可跨动物比较的岛叶二维扁平图,用于将细胞定位到亚区和皮层层次。
对Nissl染色和PV免疫组化切片进行三维重建和标注,利用Laplacian方程构建层流坐标,生成岛叶扁平图并定义AI、DI、GI边界和各层厚度。
获取锥体神经元的树突形态、电学特性和局部输入,并将其配准到岛叶图谱。
在急性岛叶脑片上行全细胞膜片钳记录并充填biocytin,进行树突形态重建,将胞体位置配准到岛叶扁平图。
基于可解释的树突形态特征对锥体神经元进行无偏分类。
提取形态特征,使用迭代共识聚类分析(iCCA)确定M型,并用随机森林分类器评估特征预测能力。
基于内在电学特性对锥体神经元分类,并分析其与层次和M型的关联。
在电流钳下记录被动、整流和放电特性,使用iCCA定义电学profile。
系统描绘岛叶锥体神经元接受的局部兴奋性输入来源和空间范围。
使用激光扫描光刺激(LSPS)结合笼化谷氨酸释放,记录不同层次神经元的局部输入图谱,并用iCCA定义输入profile。
确定不同长程投射神经元的形态、电学和局部输入特征。
通过逆行荧光微珠标记投射到不同靶区的岛叶神经元,分析其胞体分布、形态类型、电学特性和局部输入模式。
验证岛叶内后→前局部输入是否桥接丘脑到杏仁核的长程环路。
在VPMpc/PF注射ChR2病毒,对前岛叶神经元进行ChR2辅助环路映射(CRACM),并记录后岛叶对光刺激的反应。
检验VPMpc–后岛叶投射在CTA保持中的作用。
在后岛叶注射AAVretro-Cre,在VPMpc注射Cre依赖的破伤风毒素(TeLC)或GFP对照病毒,进行蔗糖-LiCl配对CTA行为实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 组织切片 | VT1200S振动切片机 | Leica Biosystems | VT1200S |
| Nissl染色 | Eukitt封片剂 | Sigma-Aldrich | 03989 |
| PV免疫组化 | 小鼠抗PV一抗 | Sigma-Aldrich | P3088 |
| HRP标记山羊抗小鼠二抗 | Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc. | 115-035-003 | |
| Vectastain Elite ABC-HRP试剂盒 | Vector Laboratories | PK-6100 | |
| 镍增强DAB | Sigma-Aldrich | 5905 | |
| 电生理记录 | Multiclamp 700B放大器 | Molecular Devices | -- |
| 硼硅酸盐玻璃电极 | Sutter Instruments | -- | |
| QX-314氯化物 | Tocris Biosciences | 2313 | |
| biocytin | Sigma-Aldrich | B4261 | |
| (R)-CPP | Thermo Fisher Scientific | 02-471-0 | |
| LSPS | MNI笼化L-谷氨酸 | Tocris Biosciences | 1490 |
| 立体定位注射 | 红色逆行微珠IX | LumaFluor, Inc. | -- |
| 绿色逆行微珠IX | LumaFluor, Inc. | -- | |
| AAVretro-FLEX-tdTomato病毒 | Addgene | 28306 | |
| AAV1 ChR2-Venus病毒 | Addgene | 20071 | |
| AAV1 hChR2-TdTomatoH134R病毒 | Penn Viral Core | V0314 | |
| AAVretro-Cre病毒 | Addgene | 105553 | |
| AAV5-CAG-FLEX-TeLC-GFP病毒 | -- | -- | |
| AAV5-CAG-FLEX-GFP病毒 | -- | -- | |
| Fezf2诱导 | 他莫昔芬 | Sigma-Aldrich | T5648 |
| 形态学染色 | Hoechst 33342 | Thermo Fisher Scientific | H3570 |
| Aqua-Poly/Mount封片剂 | Polysciences | 18606-5 | |
| ChR2刺激 | 473 nm激光器 | Crystal Laser | CL473-025 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 岛叶定量图谱构建 | 小鼠品系、年龄(P49±1 d)、切片厚度(40 µm)、改良水平切片角度(10°倾斜)、Nissl和PV染色流程、扁平图配准原点(MCA) 阅读提示:Methods的Atlas collection and histology、Atlas microscopy and annotation、Laplacian analysis和Insular flatmap小节;Extended Data Fig. 1 |
| 电生理记录与形态重建 | 动物年龄范围、切片厚度(300或350 µm)、aCSF配方、内液配方、记录温度、biocytin浓度(3–5 mg/ml)、纳入标准(access resistance <40 MΩ等) 阅读提示:Methods的Electrophysiology recordings、Biocytin labeling and staining和Morphological reconstruction and processing小节;Supplementary Table 1 |
| LSPS局部输入图谱 | MNI-caged-L-glutamate浓度(200 µM)、激光功率(20 mW)、刺激网格间距(75 µm×75 µm)、电压钳电位(−70 mV)、直接反应排除标准(20%峰值时间<10 ms)、外侧输入边界定义(375 µm和675 µm) 阅读提示:Methods的Laser scanning photostimulation和LSPS map feature extraction小节;Extended Data Fig. 7和8 |
| 逆行示踪与投射靶标分析 | 微珠注射体积(30–60 nl)、注射坐标、注射后切片时间(3–14 d)、切片厚度(50 µm或100 µm)、胞体深度归一化方法 阅读提示:Methods的Stereotaxic injections和Imaging and quantification of retrograde fluorescent bead distribution小节;Fig. 3d,e |
| ChR2辅助环路映射 | 病毒类型和滴度、注射坐标(VPMpc/PF)、切片厚度(350 µm)、激光波长(473 nm)、刺激网格(50 µm×50 µm)、重复次数(3–5次)、后侧反应指数计算公式 阅读提示:Methods的Channelrhodopsin-assisted circuit mapping小节;Fig. 8a–f和Extended Data Fig. 10 |
| 条件性味觉厌恶行为 | 病毒注射坐标和体积、蔗糖浓度(0.15 M)、LiCl浓度(0.15 M)和剂量(2% ml/g体重)、饮水限制方案、测试天数(4 d)、纳入标准(组织学确认和饮水适应)、样本量(TeLC组n=9,对照组n=10) 阅读提示:Methods的Conditioned taste aversion小节;Fig. 8h,i |