蛋白质组学鉴定Casq2R33Q/R33Q心脏分子改变
鉴定突变心脏中钙处理蛋白、ER应激和蛋白水解途径的变化。
对成年Casq2WT/WT和Casq2R33Q/R33Q小鼠心脏进行蛋白质组学和磷酸化蛋白质组学分析,并进行GO富集分析。
Calpain-Dependent Protein Degradation Contributes to CASQ2-R33Q CPVT
包含蛋白质组学、新生心肌细胞、成年小鼠模型及AAV体内过表达,并有钙蛋白酶底物生化验证与功能验证
Casq2R33Q/R33Q纯合敲入小鼠 Casq2WT/WT小鼠 Casq2R33Q/R33Q和Casq2WT/WT新生小鼠心肌细胞 成年小鼠分离心室肌细胞
钙蛋白酶抑制剂MDL28170 70 mg/kg每日一次腹腔注射3天,或calpeptin 20 mg/kg每日一次3天 新生心肌细胞calpeptin 10 μM处理8小时 肾上腺素2 mg/kg腹腔注射后记录ECG 20分钟 氟卡尼20 mg/kg每12小时腹腔注射3天,或细胞20 μM处理8小时 TRDN过表达:AAV-TRDN 7×10^10病毒颗粒股静脉注射,4周后取材
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定突变心脏中钙处理蛋白、ER应激和蛋白水解途径的变化。
对成年Casq2WT/WT和Casq2R33Q/R33Q小鼠心脏进行蛋白质组学和磷酸化蛋白质组学分析,并进行GO富集分析。
确定CASQ2和TRDN的降解速率及先后关系。
用cycloheximide抑制蛋白翻译,在新生心肌细胞中检测CASQ2和TRDN随时间的减少。
验证TRDN失稳是否促进CASQ2降解。
在突变新生心肌细胞中转染编码TRDN的修饰RNA,或在体内注射AAV-TRDN,检测CASQ2水平。
判断couplon蛋白降解是否为钙处理异常的结果。
用氟卡尼处理突变新生心肌细胞和成年突变小鼠,检测CASQ2、TRDN、JCTN水平。
确定CASQ2降解涉及的蛋白水解途径。
用eeyarestatin抑制ERAD、MG132或bortezomib抑制蛋白酶体、羟氯喹或氯喹抑制自噬,检测CASQ2和TRDN水平。
确定钙蛋白酶是否介导TRDN和CASQ2降解。
检测CAPN1、CAST和α-fodrin切割;用calpeptin处理细胞、MDL28170或calpeptin处理小鼠;体外重组钙蛋白酶切割TRDN。
验证钙蛋白酶抑制是否改善CPVT表型。
分离成年小鼠心室肌细胞进行钙成像检测触发活动;植入遥测设备记录ECG,肾上腺素激发后统计VT发生率。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型与分组 | 小鼠品系(Casq2R33Q/R33Q、Casq2–/–、C57BL/6NCrL)、年龄(2月龄或P1)、性别混合、随机化方法 阅读提示:Methods的Mice小节 |
| 药物体内处理 | flecainide 20 mg/kg每12小时3天;bortezomib 1 mg/kg每日一次3天;羟氯喹50 mg/kg单次24小时;MDL28170 70 mg/kg或calpeptin 20 mg/kg每日一次3天;均腹腔注射 阅读提示:Methods的Mice小节及Figure 2、4、5、7图注 |
| 新生心肌细胞处理 | 抑制剂浓度与时间:cycloheximide 50 μM(2、4、8小时)、flecainide 20 μM、MG132 10 μM、eeyarestatin 10 μM、羟氯喹30 μM、calpeptin 10 μM(均为8小时) 阅读提示:Methods的Neonatal Cardiomyocytes Isolation and Treatment小节 |
| AAV-TRDN体内递送 | 7×10^10病毒颗粒、股静脉注射、TnT启动子、AAVmyo衣壳、4周后取材 阅读提示:Methods的Mice小节中AAV administration段落 |
| ECG与触发活动检测 | 肾上腺素2 mg/kg腹腔注射后记录20分钟;钙成像在无药物Tyrode液中生理温度进行;触发活动以贝叶斯逻辑回归分析 阅读提示:Methods的ECG Recording by Telemetry小节及Figure 8图注 |