细胞系水平评估T-DXd反应及信号变化
确定不同遗传背景子宫内膜癌细胞系对T-DXd的敏感性及T-DXd对HER2和ERK1/2信号的影响。
使用KLE、HEC-1B、Ishikawa、AN3 CA细胞系,T-DXd梯度浓度处理5天,结晶紫染色测IC50;免疫印迹检测HER2和pERK1/2。
Feedback activation of MAPK-ERK1/2 signaling causes resistance to trastuzumab-deruxtecan in endometrial cancers
包含细胞系、患者来源类器官、异种移植模型多层验证,并进行了磷酸化蛋白质组学和功能机制验证。
KLE、HEC-1B、Ishikawa、AN3 CA子宫内膜癌细胞系 患者来源子宫内膜类器官 HEC-1B异种移植裸鼠模型
细胞系:KLE、HEC-1B、Ishikawa、AN3 CA;T-DXd处理浓度因细胞系而异(Ishikawa 25 μg/mL、KLE 50 μg/mL、HEC-1B 100 μg/mL),处理48 h MEK抑制剂trametinib处理浓度:Ishikawa 1 μM、KLE 1.25 μM、HEC-1B 0.25 μM,处理48 h 体内实验:HEC-1B细胞皮下注射,T-DXd 10 mg/kg每周静脉注射,trametinib 1 mg/kg每日口服(第37天增至2 mg/kg),每组n=7 类器官:T-DXd 100 μg/mL、MEKi 2 μM处理5天,n=3 ATR抑制剂ceralasertib与T-DXd联合的集落形成和细胞周期分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定不同遗传背景子宫内膜癌细胞系对T-DXd的敏感性及T-DXd对HER2和ERK1/2信号的影响。
使用KLE、HEC-1B、Ishikawa、AN3 CA细胞系,T-DXd梯度浓度处理5天,结晶紫染色测IC50;免疫印迹检测HER2和pERK1/2。
验证MEK1/2抑制能否克服T-DXd耐药并恢复HER2表达。
在细胞系中进行T-DXd+trametinib剂量反应、集落形成实验,Bliss协同分析,免疫印迹检测HER2和pERK1/2。
评估T-DXd联合MEK抑制剂在体内对T-DXd耐药HEC-1B肿瘤生长的抑制效果。
HEC-1B细胞皮下注射裸鼠,随机分为对照、T-DXd、trametinib、联合组,测量肿瘤体积和免疫组化。
在患者来源类器官中验证T-DXd对HER2和pERK1/2的影响及联合MEK抑制剂的生长抑制效果。
使用子宫内膜癌组织来源类器官,T-DXd处理5天,免疫组化检测HER2和pERK1/2,成像测量类器官大小。
全局分析T-DXd处理的信号通路变化,并验证细胞周期阻滞及ATR/CHK1激活。
Ishikawa细胞T-DXd处理48 h后磷酸化蛋白质组学;PI染色流式细胞术检测细胞周期;免疫印迹检测pCHK1。
验证ATR激活在T-DXd耐药中的作用及ATR抑制能否增敏。
Ishikawa和HEC-1B细胞T-DXd联合ceralasertib,集落形成实验和流式细胞术。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Thermo Fisher Scientific | 11320082 |
| MEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | 11095080 | |
| GlutaMax添加剂 | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | |
| MEM非必需氨基酸 | Thermo Fisher Scientific | 11140050 | |
| 类器官培养 | Cultrex UltiMatrix低生长因子基底膜提取物 | BIO-TECHNE | BME001–05 |
| OncoPro基础培养基 | Life Technologies | A5701201 | |
| Y-27632 | Bio-Techne | 1254 | |
| Primocin | Invivogen | ANT-PM-05 | |
| 热稳定FGF-10 | Life Technologies | PHG0371 | |
| 17β-雌二醇 | Sigma | E8875 | |
| 药物处理 | Trametinib | Selleckchem | S2673 |
| Trastuzumab | MedChemExpress | HY-P9907 | |
| ceralasertib | MedChemExpress | HY-19323 | |
| DXd | MedChemExpress | HY-13631D | |
| T-DXd | Daiichi Sanko | -- | |
| MG132 | Thermo Fisher | 50–223–6986 | |
| Western blot | HER2/ErbB2兔单克隆抗体 | Cell Signaling | 2165S |
| 磷酸化p44/42 MAPK (ERK1/2) (Thr202/Tyr204)兔单克隆抗体 | Cell Signaling | 4370S | |
| p44/42 MAPK (ERK1/2)兔单克隆抗体 | Cell Signaling | 4695 | |
| 免疫组化 | KI67 SP6兔单克隆抗体 | Thermo Fisher Scientific | RM-9106-s |
| Western blot | 磷酸化CHK1抗体 | Cell Signaling | 12302 T |
| CHK1抗体 | Cell Signaling | 2360S | |
| β-Actin小鼠单克隆抗体 | Cell Signaling | 3700S | |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Roche | 11697498001 | |
| 磷酸酶抑制剂混合物3 | Sigma-Aldrich | P0044 | |
| Bio-Rad蛋白测定染料试剂 | Bio-Rad | 5000006 | |
| Laemmli染料 | Biorad | 1610747 | |
| ECL检测试剂 | Thermo Fisher Scientific | 34577, 34095 | |
| 动物实验 | Matrigel基质胶 | Fisher | CB 40230 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞系药物处理 | 细胞系来源(KLE、HEC-1B、AN3 CA购自ATCC,Ishikawa购自Sigma-Aldrich);T-DXd处理浓度和时间(5天梯度;免疫印迹48 h,浓度因细胞系不同) 阅读提示:Methods 2.1、2.4、2.5;Figure 1、Figure 2图注 |
| 类器官培养和药物处理 | 类器官来源(手术切除肿瘤);培养基成分(OncoPro basal medium、BME等);T-DXd 100 μg/mL处理5天;MEKi 2 μM 阅读提示:Methods 2.2;Figure 4图注 |
| 体内异种移植实验 | 细胞接种量(1×10^7 HEC-1B);给药剂量和途径(T-DXd 10 mg/kg尾静脉每周一次;trametinib 1 mg/kg口服5天休2天,第37天增至2 mg/kg);每组n=7;终点标准 阅读提示:Methods 2.6;Figure 3图注 |
| 磷酸化蛋白质组学和细胞周期分析 | Ishikawa细胞T-DXd 25 μg/mL处理48 h;PI染色流式细胞术;MEKi 1 μM、ATRi 1 μM浓度 阅读提示:Methods 2.5、2.7;Figure 5、Figure 6图注 |
| 协同分析和统计 | Bliss协同模型;至少三次独立生物学重复;统计软件GraphPad Prism 9、R、Python 阅读提示:Methods 2.7;Figure 2E图注 |