建立生前血浆与死后脑组织配对队列
获取可用于比较血浆与颞叶皮层pTau217水平的配对样本。
从鲁汶大学医院记忆门诊回顾性纳入32例痴呆患者,基于生前血浆样本和死后脑组织共同可用性入选,血浆采集与尸检平均间隔5年。
Quantitative Relationship Between Lumipulse G Measures of pTau217 in Plasma and the Temporal Cortex
含生前血浆与死后脑组织两个独立样本层级,并行免疫测定、神经病理定量及诊断性能验证。
痴呆患者生前血浆样本 死后颞下新皮层(Brodmann area 20)脑组织 AD与非AD痴呆疾病对照队列
血浆与脑组织样本采集时间间隔平均5年,范围0–10年 血浆pTau217NT、pTau217Mid及pTau217Mid/Aβ1-42比值与皮层pTau217NT的偏Spearman相关性 AD(n=19)与非AD疾病对照(n=13)分组及神经病理ADNC分级 脑组织匀浆1,000倍、15,000倍或80,000倍稀释后pTau217NT定量 所有血浆和脑匀浆测量均为单次冻融后单孔检测
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取可用于比较血浆与颞叶皮层pTau217水平的配对样本。
从鲁汶大学医院记忆门诊回顾性纳入32例痴呆患者,基于生前血浆样本和死后脑组织共同可用性入选,血浆采集与尸检平均间隔5年。
确定AD与非AD疾病对照分组,并评估ADNC及相关共病理。
按照NIA-AA标准进行ADNC神经病理诊断,ADNC中或高者归为AD(n=19),低或无ADNC的FTLD-TDP或FTLD-tau患者归为疾病对照(n=13),并评估Aβ phase、Braak NFT stage、CERAD评分、LATE-NC、CAA、GVD及Braak LBD stage。
测量血浆中pTau217NT、pTau217Mid及Aβ1-42水平,用于与皮层pTau217比较。
血浆样本在K2 EDTA管中采集并离心,上清于−80°C保存后,使用概念性pTau217NT Lumipulse G assay及商业化pTau217Mid和Aβ1-42 Lumipulse G assays测量。
从颞下新皮层获取可用于pTau217NT定量的脑组织提取物。
取100 mg颞下新皮层(Brodmann area 20)脑组织,经匀浆、超声、高盐缓冲液溶解、超速离心、去除髓鞘、2% sarkosyl处理及PBS洗涤后获得sarkosyl不溶性沉淀,重悬后用于pTau217NT检测。
确定血浆pTau217NT、pTau217Mid及pTau217Mid/Aβ1-42比值与皮层pTau217NT的关联强度和模型拟合。
以血浆标志物为自变量、皮层pTau217NT为因变量构建广义加性模型,并计算校正sex、TI和PMI后的偏Spearman相关系数;使用AIC和BIC比较模型拟合。
比较血浆和皮层pTau217标志物区分AD与非AD痴呆的能力。
以intermediate至high ADNC为标准真值,使用ROC分析评估血浆pTau217NT、pTau217Mid、pTau217Mid/Aβ1-42及皮层pTau217NT的AUC,并报告最大Youden指数 cutoff。
分析血浆pTau217与脑内Aβ斑块及pTau聚集体密度的关联及其独立性。
对颞叶皮层Aβ(4G8)斑块和pTau(AT8)聚集体密度进行定量图像分析,并计算其与血浆pTau217的偏Spearman相关性,包括相互校正后的独立贡献分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 血浆采集 | K2 EDTA包被聚对苯二甲酸乙二醇酯管 | BD Diagnostics | 367864 |
| 血浆保存 | 聚丙烯冷冻管 | Thermo Fisher Scientific | 363401 |
| 脑组织蛋白提取 | Halt蛋白酶/磷酸酶抑制剂混合物 | ThermoFisher Scientific | -- |
| Pierce通用核酸酶 | ThermoFisher Scientific | -- | |
| 神经病理染色 | 抗pTDP-43 409/410抗体 | Proteintech | 22309-1-AP |
| 抗聚集α-突触核蛋白克隆5G4抗体 | Merck Millipore | MABN389 | |
| 图像采集 | LEICA DM2000显微镜 | -- | -- |
| 血浆pTau217Mid和Aβ1-42检测 | Lumipulse G pTau217Mid检测 | Fujirebio | 81472 |
| Lumipulse G Aβ1-42检测 | Fujirebio | 81301 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 研究队列与样本配对 | 痴呆患者样本量n=32;AD n=19,疾病对照n=13;血浆采集与死亡间隔平均5年,范围0–10年;血浆采集2007年5月至2018年4月;尸检2010年11月至2023年2月 阅读提示:Methods的Study Population小节及Table 1 |
| 血浆pTau217和Aβ1-42检测 | K2 EDTA管采集后400g离心5分钟;上清−80°C保存中位12年,范围7–18年;pTau217NT于2025年1月在Fujirebio检测;pTau217Mid和Aβ1-42于2025年7月在鲁汶大学医院检测;未稀释样本单孔检测,一次冻融;pTau217NT包含ADx218检测抗体和ADx258捕获抗体;pTau217Mid包含ADx258捕获抗体和HT7/BT2检测抗体 阅读提示:Methods的Plasma Biomarker Measurements小节及Figure 1图注 |
| 脑组织pTau217NT定量 | 颞下新皮层Brodmann area 20,100 mg脑组织;sarkosyl不溶性组分最终重悬于300 µL PBS;脑匀浆稀释1,000倍(n=24)、15,000倍(n=17)或80,000倍(n=2);单孔检测,一次冻融;pTau217NT于Fujirebio与血浆平行检测 阅读提示:Methods的Brain Protein Extraction小节 |
| 神经病理定量 | 5 µm厚左侧半球FFPE切片;Aβ使用4G8免疫染色,pTau使用AT8免疫染色;LEICA DM2000显微镜200×采集;Fiji/ImageJ 1.8.0分析;固定阈值像素强度160–190;计算各标志物免疫反应性面积百分比 阅读提示:Methods的Neuropathologic Examination小节及Figure 4图注 |
| 统计模型与协变量 | 广义加性模型中血浆标志物为自变量、皮层pTau217NT为因变量;协变量包括sex、PMI和blood sampling至death时间间隔TI;偏Spearman校正sex、TI和PMI;AIC或BIC差异大于2单位视为模型拟合改善;CIs通过5,000次自助迭代估计 阅读提示:Methods的Statistical Analysis小节及Abstract Methods |