hESC培养与模型建立
建立可模拟外胚层阶段的人胚胎干细胞模型,用于评估香兰素对早期发育过程的影响。
H9和H1 hESCs在mTeSR™ Plus培养基中、hESC-qualified Matrigel包被的培养板/孔中培养,使用ReLeSR和Accutase®传代,接种于96孔板、8孔腔室载玻片和12孔板。
Nanomolar vanillin, an e-cigarette flavorant, appears to disrupt pluripotency and promote endodermal differentiation in human embryonic stem cells via TRPV4 activation
体外hESC模型(H9、H1)结合钙成像、免疫细胞化学、MTT、延时成像及TRPV4拮抗/阻断验证,但无体内模型或组学数据。
H9 hESCs H1 hESCs 人胚层分化阳性对照细胞(PAX6+外胚层、NCAM+中胚层、SOX17+内胚层)
香兰素浓度:0.45–450 µM(钙内流0.45–100 µM;MTT 45 µM–45 mM;集落/细胞死亡/增殖45–450 µM;EpCAM 0.45–45 µM;多能性/分化0.45 µM) TRPV4拮抗剂HC067047浓度:0.1 nM(钙内流/集落/EpCAM/多能性),0.01–1000 nM(MTT) TRPV4功能阻断抗体ACC-124浓度:1 µM 处理时间:钙内流4 min内;MTT 24 h;集落/细胞死亡/增殖/EpCAM 72 h;多能性/分化6天 生物学重复:三次独立实验,每次使用不同代次hESC,每代次三个技术重复
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立可模拟外胚层阶段的人胚胎干细胞模型,用于评估香兰素对早期发育过程的影响。
H9和H1 hESCs在mTeSR™ Plus培养基中、hESC-qualified Matrigel包被的培养板/孔中培养,使用ReLeSR和Accutase®传代,接种于96孔板、8孔腔室载玻片和12孔板。
验证hESCs中TRPV4通道表达,并检测香兰素是否通过TRPV4诱导钙内流。
免疫细胞化学标记TRPV4和TRPV1;Fluo-8 No Wash Calcium Assay Kit检测香兰素(0.45–100 µM)和香草酸(100 µM)诱导的钙内流;使用TRPV4拮抗剂HC067047和功能阻断抗体ACC-124进行阻断验证。
评估微摩尔浓度香兰素对hESC集落生长、形态、脱离、死亡及线粒体功能的影响,并验证TRPV4依赖性。
MTT法检测线粒体还原酶活性;延时成像(每4 h)分析集落面积、形态和脱离;活化caspase-3免疫标记和亮度/总面积比检测细胞死亡;DAPI染色评估有丝分裂指数。
检测纳摩尔浓度香兰素是否影响EpCAM表达、细胞间间隙形成、多能性标志物和胚层分化标志物,并验证TRPV4依赖性。
EpCAM免疫标记及定量;OCT4、SOX17、PAX6、NCAM免疫标记及荧光强度定量;使用tri-lineage分化阳性对照验证标志物特异性。
量化估计孕期电子烟使用场景下到达母体血液和胚胎的香兰素浓度,并与体外活性浓度比较。
应用定量吸入暴露模型,整合电子烟烟油中香兰素浓度(≤1–33 mg/ml)、向气溶胶转移效率(约70–98%)、人EC使用者肺部滞留(约95%)、吸入香兰素从肺进入母体循环比例(50%)、母体血容量稀释(约2650 ml)及不同抽吸频率(1–64 puffs/h)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | mTeSR™ Plus培养基 | -- | -- |
| hESC认证Matrigel | -- | -- | |
| 细胞传代 | ReLeSR | -- | -- |
| Accutase® | -- | -- | |
| 细胞计数 | BioMate 3S分光光度计 | -- | -- |
| TRPV4功能阻断 | HC067047 | -- | -- |
| ACC-124 | -- | -- | |
| 免疫细胞化学 | 人TRPV4兔多克隆抗体 | -- | -- |
| 人TRPV1兔多克隆抗体 | -- | -- | |
| 人EpCAM(CD326)小鼠单克隆抗体 | -- | -- | |
| 细胞死亡检测 | 活化caspase-3抗体 | -- | -- |
| 钙内流检测 | Fluo-8免洗钙检测试剂盒 | -- | -- |
| Synergy HTX酶标仪 | -- | -- | |
| 延时成像 | Nikon BioStation CT | Nikon | -- |
| 免疫细胞化学 | DAPI | -- | -- |
| 细胞培养 | 杜氏磷酸盐缓冲液(DPBS) | -- | -- |
| 钙内流检测 | HHBS缓冲液 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| hESC培养与处理 | 细胞系(H9、H1)、培养基(mTeSR™ Plus)、基质(hESC-qualified Matrigel)、传代试剂(ReLeSR、Accutase®)、接种密度(96孔板2×10^4 cells/well、8孔腔室载玻片5×10^4 cells/chamber、12孔板1×10^5 cells/well)、培养条件(37 °C、5% CO2) 阅读提示:Materials and methods中“hESC cell culture”小节 |
| 钙内流检测 | 香兰素浓度(0.45–100 µM)、香草酸浓度(100 µM)、Fluo-8浓度(1 µM)、孵育时间(37 °C 20 min)、检测时间(基线20 s,加药后4 min)、TRPV4拮抗剂HC067047浓度(0.1 nM)、功能阻断抗体ACC-124浓度(1 µM)、对照IgG抗体浓度(1 µM) 阅读提示:Materials and methods中“Calcium influx assay”小节及Figure 1、Figure 5图注 |
| MTT线粒体还原酶活性检测 | 香兰素浓度(45 µM–45 mM)、处理时间(24 h)、TRPV4拮抗剂浓度范围(0.01–1000 nM)、IC70和IC50值(221.7和402.7 µM) 阅读提示:Materials and methods中“Assessment of mitochondrial reductase activity by MTT assay”小节及Supplementary Fig. S5 |
| 延时成像与集落分析 | 香兰素浓度(45–450 µM)、处理时间(72 h)、成像间隔(每4 h)、TRPV4拮抗剂浓度(0.1 nM)、每组分析集落数(3个/组) 阅读提示:Materials and methods中“Time-lapse imaging and colony analysis”小节及Figure 2图注 |
| 细胞死亡与增殖检测 | 香兰素浓度(45–450 µM)、处理时间(72 h)、活化caspase-3抗体、阳性对照(H2O2)、TRPV4拮抗剂浓度(0.1 nM)、计数细胞数(100 cells/colony)、每组集落数(3个/组) 阅读提示:Materials and methods中“Cell death assay”和“Cell proliferation assay”小节及Figure 2图注 |
| EpCAM与细胞间间隙分析 | 香兰素浓度(0.45–45 µM)、处理时间(72 h)、TRPV4拮抗剂浓度(0.1 nM)、EpCAM抗体(mouse monoclonal anti-human EpCAM/CD326)、分析集落大小(约100细胞)、定量参数(dot area、total area、mean fluorescence intensity) 阅读提示:Materials and methods中“Cell-to-cell gap analysis”小节及Figure 3图注 |
| 多能性与分化分析 | 香兰素浓度(0.45 µM/450 nM)、处理时间(6天)、TRPV4拮抗剂浓度(0.1 nM)、多能性标志物(OCT4)、胚层标志物(PAX6、NCAM、SOX17)、阳性对照(tri-lineage分化细胞)、定量方法(积分密度)、每组集落数(3个/代次,3个独立代次) 阅读提示:Materials and methods中“Pluripotency and differentiation analysis”小节及Figure 4图注 |
| 胚胎暴露建模 | 烟油香兰素浓度范围(≤1–33 mg/ml)、抽吸频率范围(1–64 puffs/h)、气溶胶转移效率(约70–98%)、肺部滞留(约95%)、肺进入母体循环比例(50%)、母体血容量(约2650 ml) 阅读提示:Materials and methods中“Exposure modeling and concentration relevance”小节及Figure 5C |