FGFR1/KLB-MFG-E8 维持微血管完整性与适应性心脏重构

FGFR1/KLB-MFG-E8 Maintains Microvascular Integrity and Adaptive Cardiac Remodeling

作者信息Sanskruti R Gare, Nasser H Alatawi, Xinyi Chen, Jiayan Zhang, Claire Ross, Oveena Fonseka, Yihua Han, Namrita Kaur, Andrea Ruiz-Velasco, Xiangjun Zhao, Yingjuan Liu, Riham R E Abouleisa, Susanne S Hille, Tao Wang, Sabu Abraham, Bernard D Keavney, Martin K Rutter, Elizabeth J Cartwright, Gareth Howell, Tamer M A Mohamed, Oliver J Müller, Wei Liu
PMID42808145
期刊Circ Res
发布时间2026-09-29
DOI10.1161/CIRCRESAHA.125.327950

实验完整度

高

包含人心力衰竭样本、多种小鼠糖尿病模型、细胞特异性敲除与过表达、体外细胞实验及机制验证

主要模型

人糖尿病心力衰竭心脏样本 心肌细胞特异性FGFR1或KLB敲除小鼠 高脂高蔗糖饮食联合链脲佐菌素诱导的2型糖尿病小鼠 新生大鼠心肌细胞与HUVEC共培养体系

重点核对

心肌细胞特异性FGFR1或KLB敲除小鼠在8周HFHSD+STZ应激下的心脏功能与毛细血管密度 重组MFG-E8(40 μg/kg体重/周)腹腔注射对FGFR1cKO和KLBcKO小鼠心脏功能与毛细血管稀疏的挽救效果 AAV9介导的FGFR1和KLB双过表达对12周HFHSD+STZ野生型小鼠心脏功能的恢复作用 CEBPβ过表达通过荧光素酶报告基因和突变实验验证其对Mfge8启动子的直接转录调控 hiPSC-CMs中FGFR1/KLB-CEBPβ-MFG-E8轴在PA+HG应激下的表达与旁分泌功能验证

摘要

背景:心脏内皮缺陷是心脏病理重构和功能障碍的促成因素,并可受心肌细胞影响。本研究探讨糖尿病条件下心肌细胞与内皮细胞之间的心脏保护性串扰。方法:通过高脂高蔗糖饮食联合低剂量链脲佐菌素在雄性和雌性小鼠中诱导2型糖尿病。通过将floxed小鼠与αMHC-Cre转基因小鼠杂交实现心肌细胞特异性FGFR1或KLB缺失,并通过重组腺相关病毒9递送系统或给予重组蛋白评估治疗潜力。利用多种体外模型研究糖尿病样条件下的机制。通过转录组学、蛋白质组学、细胞因子阵列、血管生成实验、组织学和荧光素酶报告基因实验探索分子机制。结果:人糖尿病心脏表现出血管生成通路受损,伴心肌毛细血管密度显著降低。多组学分析还揭示小鼠糖尿病心脏中FGFR1通路改变。心肌细胞特异性FGFR1和KLB敲除小鼠均表现出毛细血管丰度降低并发生失代偿性心脏重构。机制研究确定CEBPβ是FGFR1/KLB通路下游转录因子,调控心肌细胞中MFG-E8表达。心肌细胞分泌的MFG-E8增强内皮细胞活力和分支。重要的是,共同恢复心脏FGFR1和KLB可挽救对心脏的有害影响,而单独过表达任一基因均不足,突显其抗糖尿病应激的协同作用。最后,遗传或药理学增强MFG-E8可逆转心肌毛细血管稀疏并改善心脏功能,尽管在雄性中治疗效果更明显。结论:我们的发现证明了FGFR1/KLB介导的通过心肌细胞-内皮细胞串扰的心脏保护机制,并提供证据表明保留适应性重构是缓解两性心力衰竭的有前景策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
糖尿病条件下心肌细胞与内皮细胞之间的保护性串扰机制是什么?
核心机制
心肌细胞中FGFR1/KLB信号通路通过激活CEBPβ转录因子,促进MFG-E8表达与分泌,进而以旁分泌方式增强内皮细胞存活和血管生成。
主要证据
人糖尿病心脏和多种小鼠糖尿病模型显示血管生成通路受损和毛细血管稀疏;心肌细胞特异性FGFR1或KLB敲除加重微血管稀疏和心脏功能障碍;重组MFG-E8、AAV9-CEBPB或双基因过表达可挽救;体外NRCMs和hiPSC-CMs实验证实FGFR1/KLB-CEBPβ-MFG-E8轴调控内皮功能。
研究意义
保留心肌细胞FGFR1/KLB信号通路可维持血管生成能力和适应性心脏重构,从而缓解糖尿病相关心脏功能障碍,提示该通路是两性糖尿病心血管疾病的潜在预防和治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

糖尿病心脏微血管和FGFR1/KLB信号通路变化分析

探究糖尿病心力衰竭中血管生成通路和FGFR1/KLB信号的变化

对人糖尿病衰竭心脏和小鼠糖尿病模型心脏进行RNA测序、GO通路富集分析、免疫印迹、免疫荧光和细胞因子阵列检测。

2

心肌细胞特异性FGFR1或KLB敲除对糖尿病心脏的影响

验证心肌细胞FGFR1或KLB缺失在糖尿病应激下对心脏功能和微血管的作用

构建心肌细胞特异性FGFR1和KLB敲除小鼠,给予8周HFHSD+STZ应激,检测心脏功能、毛细血管密度、MFG-E8表达和病理重构。

3

FGFR1和KLB协同保护作用的体内验证

评估FGFR1和KLB单独或联合过表达对糖尿病心脏病的治疗潜力

使用AAV9载体在FGFR1cKO糖尿病小鼠中过表达FGFR1或KLB,以及在12周HFHSD+STZ野生型小鼠中双过表达FGFR1和KLB,检测心脏功能、毛细血管密度和MFG-E8水平。

4

MFG-E8作为下游效应因子的功能验证

验证重组MFG-E8能否挽救FGFR1或KLB缺失引起的心血管缺陷

对FGFR1cKO和KLBcKO糖尿病小鼠腹腔注射重组MFG-E8,检测心脏功能、毛细血管密度、纤维化和凋亡。

5

CEBPβ转录调控MFG-E8的机制验证

探究FGFR1/KLB信号通路如何转录调控MFG-E8表达

通过荧光素酶报告基因实验、突变实验、免疫印迹和免疫荧光验证CEBPβ对Mfge8启动子的直接结合和转录激活,以及FGFR1/KLB对CEBPβ核定位和磷酸化的调控。

6

CEBPβ过表达对糖尿病心脏的体内挽救验证

验证心肌细胞CEBPβ过表达能否逆转FGFR1或KLB缺失引起的心血管损伤

对FGFR1cKO和KLBcKO糖尿病小鼠注射AAV9-CEBPB,检测心脏功能、毛细血管密度、MFG-E8表达和病理重构。

7

人干细胞来源心肌细胞中FGFR1/KLB-CEBPβ-MFG-E8轴的验证

在人类细胞模型中验证FGFR1/KLB-CEBPβ-MFG-E8轴的转化相关性

在hiPSC-CMs和hESC-CMs中给予PA+HG应激,检测FGFR1、KLB、CEBPβ和MFG-E8表达,并通过条件培养基和MFG-E8中和抗体验证旁分泌血管生成效应。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
mTeSR Plus培养基----
CHIR99021----
IWP2----
C59----
CellTiter-Glo发光法细胞活力检测试剂盒----
CellTox Green细胞毒性检测试剂盒----
LEGENDplex血管生成实验BioLegend--
CytoTune-iPS 2.0仙台病毒重编程试剂盒----
棕榈酸----
链脲佐菌素----
重组MFG-E8----
AAV9-Fgfr1----
AAV9-Klb----
AAV9-CEBPB----
抗MFG-E8抗体----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
糖尿病模型诱导
高脂高蔗糖饮食成分、链脲佐菌素剂量和注射次数:文中未明确说明
阅读提示:Methods中Animal Studies部分和Supplemental Methods
心肌细胞特异性基因敲除
FGFR1cKO和KLBcKO小鼠的构建策略、floxed小鼠来源和Cre品系
阅读提示:Methods中Animal Studies部分和Figure S3
重组MFG-E8治疗
rMFG-E8剂量(40 μg/kg体重/周)、给药途径(腹腔注射)、治疗起始时间(糖尿病应激4周后)和持续时间(4周)
阅读提示:Methods中Animal Studies部分和Figure 5A
体外糖尿病样应激
PA浓度(500 μM)、HG浓度(25 mM)、处理时间(8小时或16小时)
阅读提示:Figure 4A图注和Supplemental Methods
AAV9基因递送
AAV9载体构建、注射剂量、注射时间和心脏特异性启动子(cTnT)
阅读提示:Methods中Animal Studies部分和Figure S8、S10
CEBPβ荧光素酶报告基因实验
Mfge8启动子区域选择、突变位点和转染条件
阅读提示:Figure 6A-D图注和Supplemental Methods
hiPSC-CMs分化
hiPSC 02C9细胞系来源、分化方案(CHIR99021和IWP2浓度)
阅读提示:Methods中hiPSC-CMs部分和Supplemental Methods