患者iPSC和大脑类器官构建
建立可模拟早期人类皮层发育的CANDLE患者来源模型。
从CANDLE患者皮肤成纤维细胞重编程为iPSCs,并使用CO分化试剂盒生成COs,培养至第26天。
Proteasome mutations associated with CANDLE syndrome cause altered neuronal development by dysregulating polyamine synthesis
包含患者iPSC来源大脑类器官、NPCs/神经元、患者CSF三种证据层级,并有DFMO功能回救及ODC/PSMB8机制验证。
CANDLE患者iPSC来源大脑类器官(COs) CANDLE患者iPSC来源神经前体细胞(NPCs)和分化神经元 CANDLE患者脑脊液(CSF)样本 健康对照iPSC来源COs、NPCs和神经元
COs分析时间点为第26天;代谢分析使用第25-26天COs,DFMO处理从第6天开始并每日更换至第26天,浓度100 μM(最高无毒浓度) IHC定量:CANDLE COs n=56,健康对照COs n=31;DFMO回救实验每组iPSC系n=10–12个COs,每CO 2–3张切片 流式细胞术:HC1和CAN1各n=6个COs,检测SOX2+和TUJ1+活细胞比例 病毒刺激实验:第21天感染LACV或INKV 10^3 PFU,感染后2、4、6天收集上清/RNA Western blot:ODC上样5 μg总蛋白,PSMB8上样25 μL原始RIPA裂解液;抗体ODC(Abcam,1 μg/mL)、PSMB8(CST,1:1000)、GAPDH(Novus,5 ng/mL)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立可模拟早期人类皮层发育的CANDLE患者来源模型。
从CANDLE患者皮肤成纤维细胞重编程为iPSCs,并使用CO分化试剂盒生成COs,培养至第26天。
验证CANDLE突变是否影响早期神经元分化和成熟。
对第26天COs进行SOX2和TUJ1免疫组化及流式细胞术,并进行qRT-PCR检测NEUN和MAP2。
确定CANDLE COs中神经元发育异常是否由IFN反应驱动。
检测COs中IFNB1和ISGs表达、上清细胞因子,并用LACV或INKV感染COs后检测IFN反应。
鉴定CANDLE COs、NPCs、神经元及患者CSF中的代谢异常。
对COs、培养上清、NPCs、神经元和CSF进行LC-MS/MS和Biocrates MxP Quant 500靶向代谢组学分析。
验证CANDLE突变是否通过ODC和蛋白酶体组成影响多胺代谢。
在NPCs、分化和神经元及COs中通过Western blot检测ODC和PSMB8/β5i蛋白表达。
验证抑制ODC能否逆转CANDLE COs的代谢和神经发育异常。
从第6天开始用DFMO处理COs,每日更换,第26天进行代谢组学、qRT-PCR和IHC分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| iPSC培养 | mTeSR Plus培养基 | StemCell Technologies | -- |
| 基质胶 | Corning | -- | |
| ReLeSR | StemCell Technologies | -- | |
| NPC和神经元分化 | STEMdiff SMADi神经诱导试剂盒 | StemCell Technologies | -- |
| STEMdiff前脑神经元分化培养基 | StemCell Technologies | -- | |
| STEMdiff前脑神经元成熟培养基 | StemCell Technologies | -- | |
| 大脑类器官生成 | 大脑类器官分化试剂盒 | StemCell Technologies | -- |
| 药物处理 | 二氟甲基鸟氨酸 | -- | -- |
| 病毒滴度测定 | Vero细胞 | ATCC | CCL-81 |
| 羧甲基纤维素 | Sigma | -- | |
| 免疫印迹 | RIPA裂解液 | ThermoFisher | -- |
| Halt蛋白酶抑制剂 | ThermoFisher | -- | |
| Immun-Blot PVDF膜 | BioRad | -- | |
| ODC抗体 | Abcam | -- | |
| PSMB8抗体 | Cell Signaling Technologies | -- | |
| GAPDH抗体 | Novus | -- | |
| SuperSignal West Femto最高灵敏度底物 | ThermoFisher | -- | |
| 免疫组织化学 | 兔抗Sox2抗体 | Abcam | -- |
| 小鼠抗Tuj1抗体(B3T) | Millipore Sigma | -- | |
| AlexaFluor二抗驴抗兔488 | ThermoFisher | -- | |
| AlexaFluor二抗驴抗小鼠594 | ThermoFisher | -- | |
| Hoechst 33342 | ThermoFisher | -- | |
| Prolong Diamond抗荧光淬灭封片剂 | ThermoFisher | -- | |
| 流式细胞术 | 可固定活力染料eFluro 780 | Invitrogen | -- |
| Sox2抗体 | Biolegend | -- | |
| Tuj1抗体 | Abcam | -- | |
| eBioscience Foxp3/转录因子染色缓冲液套装 | -- | -- | |
| Truestain FcX | Biolegend | -- | |
| qRT-PCR | ZR RNA缓冲液 | Zymo | -- |
| Quick-RNA Midiprep试剂盒 | Zymo | -- | |
| Ambion DNAse I | -- | -- | |
| iScript逆转录试剂盒 | Bio-Rad | -- | |
| SYBR Green染料(含ROX) | Bio-Rad | -- | |
| 代谢组学 | Biocrates MxP Quant 500试剂盒 | Biocrates | -- |
| Precellys裂解试剂盒,软组织匀浆CK14 | Bertin | -- | |
| 细胞活力检测 | PrestoBlue检测 | ThermoFisher | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 大脑类器官生成与培养 | iPSC系来源及突变信息(CAN1 PSMB8/PSMA3双基因变异,CAN2/CAN3 PSMB8纯合或复合杂合;HC1/HC2为健康对照);COs起始数量5000 iPSCs/孔;第5天神经诱导,第7天包埋Matrigel,第10天转入Maturation media;第26天用于分析。 阅读提示:Methods中Cerebral organoid generation, culture and drug administration小节及Supplemental Table 1。 |
| DFMO处理 | DFMO浓度100 μM(最高无毒浓度);处理从第6天开始,每日更换至第26天;对照组为vehicle control。 阅读提示:Methods中Cerebral organoid generation, culture and drug administration小节及Supplemental Figure 5。 |
| 免疫组化分析 | CANDLE COs n=56,HC COs n=31;DFMO回救实验每组n=10–12个COs,每CO 2–3张切片;SOX2和TUJ1抗体稀释比例及图像分析参数。 阅读提示:Methods中IHC和Analysis of immunohistochemistry performed on COs小节及Figure 2、Figure 7图注。 |
| 病毒刺激实验 | LACV或INKV 10^3 PFU/mL,感染2小时,感染后2、4、6天检测;mock对照。 阅读提示:Methods中Organoid infection小节及Figure 3图注。 |
| 代谢组学分析 | COs:CANDLE n=3,HC n=2,技术重复n=12;CSF:CANDLE n=3,HC n=7,MS n=10;NPCs:CANDLE n=2,HC n=3;神经元:CANDLE n=3,HC n=3;FDR 10%或20% Benjamini-Hochberg校正。 阅读提示:Methods中Metabolomics sample extraction、Metabolomics LCMS、Biocrates targeted metabolomics assay小节及Figure 4、Figure 5、Figure 6图注。 |