哮喘患者鼻上皮细胞中受损的CC16介导的鼻病毒宿主反应

Impaired CC16-mediated host responses to rhinovirus in nasal epithelial cells from patients with asthma

作者信息Sasipa Tanyaratsrisakul, Natalie Iannuzo, Laurie M Ellerman, Paul R Langlais, Fernando D Martinez, Stefano Guerra, Julie G Ledford
PMID42476371
发布时间2026-07
DOI10.1016/j.jaci.2026.06.021

实验完整度

高

含人气道上皮细胞、小鼠模型及MTEC多层级验证,并有rCC16功能挽救和VLA-2机制验证

主要模型

人气道上皮鼻细胞(HNEC)气液界面培养 小鼠气管上皮细胞(MTEC)气液界面培养 CC16−/−与野生型C57BL/6J小鼠RV-A1B感染模型

重点核对

HNEC来源:哮喘患者(n=7)与非哮喘参与者(n=7),ALI分化3周 RV-A1B感染剂量:HNEC为1×10^6 PFU/12 mm transwell或3×10^5 PFU/6.5 mm transwell,MOI=1感染4小时 rCC16处理:HNEC和MTEC为25 μg/mL处理24小时;CC16−/−小鼠为16.4 μg/只 小鼠RV-A1B感染:鼻内滴注4×10^7 PFU/50 μL,感染后24小时评估 VLA-2抑制剂BTT3033用于评估CC16信号依赖性

摘要

背景:鼻病毒(RV)感染增加哮喘发生风险,是疾病急性加重的主要诱因。哮喘患者CC16水平降低,且与炎症和急性加重频率呈负相关。目的:我们试图确定在哮喘背景下,CC16对气道上皮鼻细胞中RV A种1B型(RV-A1B)感染的影响。方法:将来自哮喘参与者和非哮喘参与者的人气道上皮鼻细胞(HNEC)在气液界面培养中感染RV-A1B,并给予或不给予重组CC16(rCC16)。通过定量RT-PCR定量病毒RNA及先前鉴定与CC16水平相关的宿主因子(包括溶菌酶、SPLUNC1、乳转铁蛋白和表面活性蛋白D)的表达。用CC16充足和缺陷的动物模型及小鼠气管上皮细胞(MTEC)感染RV-A1B,并给予或不给予rCC16,以验证发现。结果:与来自非哮喘参与者(n=7)的HNEC相比,来自哮喘参与者(n=7)的HNEC在基线条件下CC16及相关宿主防御因子的基因表达较低。RV感染增加了非哮喘参与者HNEC中的宿主因子,而哮喘参与者的HNEC未能响应RV上调宿主因子。rCC16诱导了非哮喘参与者和哮喘参与者HNEC中宿主防御因子的表达并降低了病毒负荷,这部分依赖于整合素α2α1(VLA-2)相互作用。CC16缺陷(CC16−/−)小鼠与野生型小鼠相比,RV感染更严重,炎症更重,肺中宿主防御因子基因表达更低。从CC16−/−小鼠MTEC顶端冲洗液中验证了分泌蛋白水平,与WT MTEC相比显著降低。在RV感染期间通过递送rCC16对CC16−/−小鼠进行的挽救研究导致炎症细胞募集和感染减少。结论:结果提示CC16通过介导宿主防御因子的上调减少上皮细胞中的RV感染,且该机制在CC16水平低的哮喘患者中可能存在缺陷。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CC16在哮喘状态下对气道上皮鼻细胞中RV-A1B感染的影响及其机制是什么?
核心机制
CC16通过VLA-2依赖和非VLA-2依赖机制上调宿主防御因子(SPLUNC1、乳转铁蛋白、SP-D等),从而减少RV感染;哮喘患者中该反应因CC16水平低而受损。
主要证据
哮喘患者HNEC基线宿主防御基因表达低且RV感染后无法上调;rCC16可恢复宿主防御因子并降低病毒负荷,部分依赖VLA-2;CC16−/−小鼠和MTEC显示RV感染加重、宿主防御因子表达降低,rCC16挽救可减少炎症和感染。
研究意义
提示CC16增强可作为呼吸感染易感人群的潜在治疗策略,为未来治疗开发提供依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

人气道上皮鼻细胞(HNEC)培养与基线特征评估

比较哮喘与非哮喘来源HNEC在基线条件下的宿主防御基因表达差异

HNEC在气液界面分化3周,定量RT-PCR检测SCGB1A1、BPIFA1、LTF、LYZ2、SFTPD等基因表达

2

RV-A1B感染HNEC及宿主防御反应检测

评估哮喘与非哮喘HNEC对RV感染的宿主防御反应差异

HNEC感染RV-A1B,检测病毒负荷及宿主防御因子基因表达

3

rCC16处理HNEC及宿主防御基因表达检测

验证外源rCC16是否能上调宿主防御因子

HNEC顶端给予rCC16或对照,24小时后检测宿主防御基因表达

4

VLA-2抑制剂干预实验

验证CC16诱导宿主防御因子及降低RV负荷是否依赖VLA-2

非哮喘HNEC给予rCC16±BTT3033,检测宿主防御基因表达及RV负荷

5

rCC16挽救哮喘HNEC感染实验

评估rCC16能否在RV感染期间恢复哮喘HNEC的宿主防御反应

哮喘HNEC感染RV-A1B后给予rCC16,检测病毒负荷及宿主防御基因表达

6

CC16−/−小鼠体内RV感染及rCC16挽救实验

在体内验证CC16缺失对RV感染和炎症的影响及rCC16的挽救效果

WT和CC16−/−小鼠鼻内感染RV-A1B,评估BALF炎症细胞、肺组织RV负荷;CC16−/−小鼠给予rCC16或生理盐水

7

MTEC培养及RV感染实验

在体外验证CC16缺失对RV感染的影响

WT和CC16−/− MTEC在ALI分化2周,感染RV-A1B,检测病毒负荷

8

小鼠肺组织宿主防御因子表达及蛋白分泌验证

验证CC16−/−小鼠中宿主防御因子在基因和蛋白水平的表达变化

检测WT和CC16−/−小鼠肺组织宿主防御因子基因表达及MTEC顶端分泌蛋白

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
鼻病毒A1B型ATCCVR-1645
重组CC16R&D Systems--
DMEM/F12培养基Gibco--
PneumaCult气液界面培养基STEMCELL Technologies--
磷酸盐缓冲液Gibco--
GraphPad Prism 10.3.1版GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
HNEC分离与培养
供体来源、伦理审批、ALI分化时间(3周)、培养基类型
阅读提示:参见Methods中Human nasal epithelial cell isolation and culturing及Supplementary Methods
RV-A1B感染HNEC
病毒剂量(MOI=1)、感染时间(4小时)、洗涤步骤、检测时间点(24小时)
阅读提示:参见Methods中RV infections in MTECs and HNECs及Fig 2图注
rCC16处理
rCC16浓度(25 μg/mL,图注中存在2.5 mg/mL差异)、处理时间(24小时)、给药部位(顶端)
阅读提示:参见Methods中rCC16 treatment for MTECs and HNECs及Fig 4图注
VLA-2抑制实验
BTT3033浓度、处理时间、rCC16联合使用、RV感染条件
阅读提示:参见Fig 5图注及Results中相应描述
小鼠RV感染
小鼠品系(C57BL/6J)、年龄(6-8周)、病毒剂量(4×10^7 PFU/50 μL)、给药途径(鼻内)、检测时间点(24小时)
阅读提示:参见Methods中RV infections in mice及Fig 7图注
rCC16挽救实验
rCC16剂量(16.4 μg/只)、给药时间(感染时)、对照(生理盐水)、检测指标
阅读提示:参见Fig 7图注及Results中相应描述
MTEC培养与感染
ALI分化时间(2周)、RV-A1B剂量(2×10^6 PFU,MOI=1)、感染时间(4小时)、检测时间点(24小时)
阅读提示:参见Fig 8图注及Methods中相应描述