错配修复功能完好的结直肠癌可通过内在抑制性程序逃避免疫监视

Mismatch Repair-Proficient Colorectal Cancer can evade Immune Surveillance Through an Intrinsic Suppressive Program

作者信息Chiara Maria Cattaneo, Sharon Scardellato, Gianluca Mauri, Vittoria Matafora, Veera K Ojala, Costanza Cannariato, Rosaria Chila, Zulma Irene Magnani, Wouter Scheper, Luca Lazzari, Emile E Voest, Maria Chiara Bonini, Angela Bachi, Salvatore Siena, Silvia Marsoni, Giovanni Germano, Alberto Bardelli
PMID42126206
发布时间2026-05-13
DOI10.1158/2159-8290.CD-26-0542

实验完整度

高

含患者来源类器官体外模型和T细胞功能验证,两组学表面蛋白组分析及糖基化抑制机制验证,多层证据交叉验证。

主要模型

患者来源结直肠癌类器官(MSI和MSS) 健康供者PBMC来源的CD8+ T细胞,经1D3-TCR逆转录病毒转导 表达HLA-A2的永生化B细胞作为抗原呈递细胞

重点核对

PDO加载0.02 µmol/L MART-1ELA肽,避免饱和并确保跨样本可比 共培养T细胞与类器官比例在识别实验为1:2,杀伤实验为5:1 条件培养基(CM)收集前用200 ng/mL IFNγ刺激PDO 24小时 糖基化抑制使用2.5 µmol/L Benzyl-α-GalNAc和100 µmol/L Lith-O-Asp预处理,共培养维持0.25 µmol/L和10 µmol/L 识别和杀伤共培养均加入20 µg/mL抗PD-1抗体(nivolumab)

摘要

尽管微卫星不稳定(MSI)结直肠癌(反映错配修复缺陷)通常对免疫检查点抑制剂有反应,但微卫星稳定(MSS)肿瘤在很大程度上仍耐药。这种差异通常归因于新抗原负荷的差异。然而,抗原非依赖性机制是否导致MSS结直肠癌的免疫逃逸尚不清楚。为解决这一问题,我们构建了一个模型,其中MSI和MSS结直肠癌细胞表达相同水平的、可被T细胞受体工程化T细胞识别的特定抗原。尽管抗原呈递相当,但MSS肿瘤表现出T细胞活化受损、细胞毒性降低和对杀伤的抵抗。我们将这种免疫逃逸与MSS肿瘤分泌组联系起来,后者通过损害免疫突触形成,即使在免疫原性MSI细胞中也抑制了免疫反应。通过质谱进行的表面蛋白质组分析确定了损害免疫识别的糖基化依赖性改变。我们的发现表明,MSS结直肠癌通过由分泌组驱动的内在机制逃避免疫攻击,且与抗原性无关。靶向糖基化相关的抑制途径可能恢复T细胞反应性并改善MSS结直肠癌的免疫治疗疗效。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在抗原呈递水平一致的情况下,MSS结直肠癌是否通过抗原非依赖的内在机制逃避T细胞免疫监视?
核心机制
MSS肿瘤分泌组通过诱导肿瘤细胞表面糖基化依赖性重塑,损害T细胞-肿瘤细胞免疫突触形成,从而削弱T细胞活化和杀伤,该过程独立于抗原性。
主要证据
表达相同MART-1ELA抗原和HLA-A2的MSI与MSS PDO与1D3-TCR T细胞共培养,MSS肿瘤显示IFNγ、TNFα、granzyme-A/B分泌减少60-85%,CD137表达降低,杀伤抵抗;MSS来源CM可抑制MSI肿瘤的T细胞识别和杀伤;膜蛋白质组显示糖基化相关通路改变;糖基化抑制剂恢复T细胞对MSS肿瘤的识别。
研究意义
揭示了MSS结直肠癌独立于新抗原负荷的主动免疫逃逸机制,提示靶向糖基化相关抑制通路可能恢复T细胞反应性并改善MSS结直肠癌的免疫治疗疗效,同时为将分泌组分析整合入临床决策和患者分层提供了依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建抗原均一的MSI/MSS类器官与T细胞共培养平台

在相同抗原呈递条件下,比较MSI和MSS结直肠癌被T细胞识别和杀伤的内在差异。

从32例结直肠癌患者手术标本建立PDO(MSI n=6,MSS n=26),筛选HLA-A2表达;从健康供者PBMC分离CD8+ T细胞,逆转录病毒转导1D3-TCR(MART-1特异性);PDO加载0.02 µmol/L MART-1ELA肽后与T细胞共培养。

2

评估MSS肿瘤对T细胞识别和杀伤的内在抵抗

验证在抗原呈递一致时,MSS肿瘤是否仍表现出T细胞活化受损和杀伤抵抗。

通过流式检测CD137表达、上清检测IFNγ/TNFα/granzyme-A/granzyme-B释放,以及24小时杀伤共培养(Far Red信号和流式计数珠定量活细胞)评估T细胞反应。

3

分析肿瘤分泌组对T细胞-肿瘤相互作用的调节

探究MSS肿瘤来源可溶性因子是否直接损害T细胞对肿瘤的识别和杀伤。

收集IFNγ刺激后PDO的条件培养基(CM),在CM存在下进行T细胞对MSI肿瘤的识别和杀伤实验,并通过高内涵成像和单细胞声力技术评估T细胞与肿瘤细胞的接触频率和结合强度。

4

表面蛋白质组分析揭示糖基化依赖性重塑

无偏分析MSS来源CM如何重塑MSI肿瘤细胞表面蛋白,并鉴定关键修饰。

MSI类器官经IFNγ刺激后,在MSI或MSS来源CM中培养24小时,提取膜蛋白进行LC-MS/MS(DIA模式)分析,进行通路富集和糖基化相关基因关联分析。

5

功能验证糖基化抑制对T细胞识别的影响

验证糖基化修饰对MSS肿瘤限制T细胞反应性的直接作用。

在MSS来源CM存在下,用O-糖基化抑制剂Benzyl-α-GalNAc和糖基转移酶抑制剂Lith-O-Asp共处理MSI类器官,检测T细胞CD137表达;并在无CM条件下,用糖基化抑制剂处理MSS类器官,检测T细胞活化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
肿瘤解离试剂盒Miltenyi Biotec130-095-929
Cultrex 低生长因子基底膜提取物2型R&D Systems3533-005-02
Advanced DMEM/F12培养基Gibco12634010
GlutaMAX添加剂Gibco35050061
HEPES缓冲液EurocloneECM0180L
青霉素/链霉素EurocloneECB3001L
不含维生素A的B27添加剂Gibco12587010
N-乙酰半胱氨酸Sigma-AldrichA9165
烟酰胺Sigma-AldrichN0636
人重组EGFPeproTechAF-100-15
A83-01Tocris Bioscience2939
SB202190Sigma-AldrichS7067
前列腺素E2Cayman Chemicals14010-1
TrypLE Express解离液Gibco12605028
Y-27632Selleck ChemicalsS1049
二甲基亚砜EurocloneEMR385250
胎牛血清Sigma-AldrichF7524
GenePrint 10系统PromegaB9510
MLH1抗体,克隆G168-15Biocare MedicalPM 220 AA
MSH2抗体,克隆FE11Biocare MedicalPM 219 AA
MSH6抗体,克隆44Biocare MedicalPM265 AA
PMS2抗体,克隆A16-4Biocare MedicalPM344 AA
聚合物检测试剂盒(GAM-HRP)Microtech--
DAB显色试剂盒Vector LabsSK-4100
小鼠抗人HLA-A,B,C-PEBD Biosciences555553
小鼠抗人HLA-A2-APCBD Biosciences561341
小鼠抗人HLA-DP/DQ/DR-FITCBD Biosciences550853
近红外活力染料InvitrogenL10119
Zombie Aqua可固定活力试剂盒BioLegend423101
X-tremeGENE 9转染试剂Merck Millipore6365779001
CD8+ T细胞分离试剂盒Miltenyi Biotec130-096-495
抗CD3/CD28抗体eBioscience16-0037-85
人AB血清EurocloneECS0219D
人重组IL2R&D Systems200-IL
RetroNectinTakaraT100B
抗小鼠TCRβ-PEBD Biosciences561081
嘌呤霉素Vinci-AdipogenAG-CN2-0078-M100
AIM-V培养基Gibco12055091
MART-1肽ELAGIGILTV----
苄基-α-GalNAcMedChemExpressHY-129389
石胆酸O-天冬氨酸MedChemExpressHY-112415
抗CD28抗体eBioscience16-0289-81
抗人CD3-PerCP-Cy5.5BD Biosciences332771
抗人CD8-BV421BD Biosciences562429
抗人CD137-APCBD Biosciences550890
Golgi-PlugBD Biosciences555029
Golgi-StopBD Biosciences554724
抗人IFNγ-APCBD Biosciences554702
Cytofix/Cytoperm试剂盒BD Biosciences554714
佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯Sigma-Aldrich19-144
离子霉素Sigma-AldrichI9657
CellTrace远红染料InvitrogenC34564
AccuCount空白计数微球SpherotechACBP-70-10
Cytometric Beads Array人IFNγ Flex试剂盒BD Biosciences558269
LEGENDplex人CD8/NK panelBioLegend741065
LEGENDplex人促炎趋化因子panel 1BioLegend741081
CellTiter-Glo发光细胞活力实验PromegaG7573
Cytolight红色染料Sartorius4705
CellTrace CFSE细胞增殖试剂盒InvitrogenC34554
多聚-L-赖氨酸Sigma-AldrichP4707
伴刀豆球蛋白ASigma-AldrichC2010
Mem-PER Plus膜蛋白提取试剂盒Thermo Fisher Scientific89842
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific23225
Exploris 480质谱仪Thermo Fisher Scientific--
FAIMS装置Thermo Fisher Scientific--
ReproSil-Pur C18-AQ微球Dr. Maisch Gmbh--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
类器官建立与抗原加载
PDO来源患者数量及MSI/MSS比例(MSI n=6,MSS n=26)、HLA-A2筛选、MART-1ELA肽加载浓度0.02 µmol/L(避免饱和)、IFNγ预处理200 ng/mL 24小时
阅读提示:Methods 'Organoid Culture'、'Tumor Recognition Assays',Figure 1B,Supplementary Fig. S5和S6
T细胞工程与共培养
1D3-TCR转导效率、CD8+ T细胞纯度、共培养T细胞与类器官比例(识别1:2,杀伤5:1)、共培养时间(识别24小时,杀伤24小时)、抗PD-1抗体浓度20 µg/mL
阅读提示:Methods 'T-cell Engineering and Culture'、'Tumor Recognition Assays'、'Tumor Killing Assay',Supplementary Fig. S4
条件培养基收集与处理
CM收集前IFNγ刺激条件(200 ng/mL,24小时)、收集时细胞密度(2.5e5 cells/mL)、收集后离心去碎片、CM使用前是否冻存
阅读提示:Methods 'CM Collection',Figure 2B
糖基化抑制实验
抑制剂浓度(Benzyl-α-GalNAc预处理2.5 µmol/L,共培养0.25 µmol/L;Lith-O-Asp预处理100 µmol/L,共培养10 µmol/L)、预处理时间(2小时,37°C)、是否与MART-1ELA肽共脉冲
阅读提示:Methods 'Tumor Recognition Assays',Supplementary Fig. S12,Figure 3H
膜蛋白质组分析
MSI类器官经IFNγ刺激24小时后在CM中培养24小时、膜蛋白提取试剂盒、LC-MS/MS参数(Exploris 480,FAIMS,DIA模式)、生物重复数(N=3)
阅读提示:Methods 'Membrane Proteome after Exposure to CM'、'Global and Membrane Proteomics MS Analysis'、'DIA MS Analysis and Database Search',Figure 3E