抑制menin通过限制小鼠肠道脂质吸收减轻高脂饮食诱导的体重增加

Inhibiting menin attenuates high-fat diet-induced weight gain by limiting intestinal lipid absorption in mice

作者信息Xiaoru Cao, Pingping Zhou, Haiyue Meng, Zhitao Guo, Yan Cao, Chenghao Wang, Lulu Liu, Yinghao Guo, Yue Wang, Guoshun Xin, Dabin Liu, Feng Geng, Jian Ma
PMID42579365
发布时间2026-08-11
DOI10.1172/JCI202709

实验完整度

高

含IEC特异性及诱导型Men1敲除小鼠、体外细胞、人肠道类器官芯片多层级,并有功能与机制验证

主要模型

IEC特异性Men1敲除小鼠(Men1ΔIEC)及诱导型Men1ΔIEC-IND小鼠 高脂饮食喂养的C57BL/6J野生型小鼠 MODE-K小鼠肠上皮细胞 人CACO-2细胞及人小肠类器官IBAC-on-chip

重点核对

Men1ΔIEC与Men1fl/fl对照小鼠在6周龄起分别喂食NCD或HFD(60% kcal脂肪,D12492)12周,每组n=6 橄榄油灌胃剂量10 μL/g体重,灌胃后0、2、4、6小时检测血清TG;tyloxapol按50 mg/mL、10 μL/g静脉注射后15分钟灌胃 MI-463按30 mg/kg每日一次口服6周;WWL113按30 mg/kg每日一次腹腔注射2周;TAM按100 μL/10 g体重(5 mg/小鼠)每日一次灌胃5天 NBD-TG水解实验使用100 μg总蛋白与7:1 NBD-TG:PC/PI底物37°C孵育0、15、30、60、90分钟,荧光460/530 nm检测 Seahorse棕榈酸氧化应激实验使用棕榈酸-BSA 5 mM、etomoxir 0.4 μM、oligomycin 1.5 μM、FCCP 1 μM、rotenone/antimycin A 0.5 μM

摘要

肠道脂质代谢对全身能量稳态至关重要,其调控正成为肥胖的治疗策略。Menin由MEN1基因编码,是一种调节染色质重塑和基因表达的支架蛋白,在肠上皮细胞(IEC)中高表达,但其代谢作用仍未充分探索。在此,我们构建了IEC特异性Men1敲除小鼠,发现Men1缺失可防止高脂饮食诱导的肥胖,并伴随IEC中羧酸酯酶1(CES1)表达升高。CES1增加促进甘油三酯(TG)水解并减少细胞内TG储存,从而限制ApoB48依赖性乳糜微粒组装所需的脂质底物池。尽管脂质水解增强,稳态游离脂肪酸水平并未升高;相反,Men1缺失激活脂肪酸β-氧化程序并增加依托莫司敏感的脂肪酸依赖性线粒体呼吸,支持脂肪酸分解代谢增强。机制上,menin招募组蛋白去乙酰化酶1并与核受体肝X受体-β相互作用以抑制Ces1g转录,从而维持有效的肠道脂质吸收。用MI-463对menin进行药理学抑制可重现诱导型Men1缺失的代谢效应。在人肠道类器官芯片系统中,MI-463剂量依赖性地增加CES1表达并显著减少脂质积累。总之,我们的发现将menin确定为肠道脂质代谢的调节因子,并提示抑制menin可作为肥胖相关代谢疾病的潜在治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Menin在肠上皮细胞中是否及如何调控肠道脂质吸收与代谢,以及抑制menin能否改善高脂饮食诱导的肥胖。
核心机制
Menin与LXRβ相互作用并招募HDAC1形成menin–LXRβ–HDAC1复合物,结合于Ces1g/CES1启动子的LXRE,降低组蛋白乙酰化从而抑制Ces1g/CES1转录;Men1缺失或MI-463解除该抑制,上调CES1促进TG水解,减少TG储存和ApoB48依赖性乳糜微粒组装,同时增强脂肪酸β-氧化。
主要证据
IEC特异性及诱导型Men1敲除小鼠在HFD下体重增加减少、脂肪组织减少、餐后血清TG和ApoB48降低、乳糜微粒直径减小;IEC转录组显示Ces1g及FAO基因上调;MODE-K和CACO-2细胞中Ces1g过表达或Men1敲低增强TG水解和脂肪酸依赖性线粒体呼吸;ChIP-seq、ChIP-qPCR、Co-IP和荧光素酶报告实验证实menin–LXRβ–HDAC1复合物抑制Ces1g转录;MI-463在人小肠类器官芯片中剂量依赖性增加CES1并减少脂质积累。
研究意义
研究将menin确定为肠道脂质代谢的调节因子,提出menin/CES1轴作为肥胖及相关代谢紊乱的潜在治疗靶点,并在小鼠和人肠道类器官中验证了menin抑制剂MI-463的代谢改善作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建肠上皮特异性Men1敲除小鼠并评估高脂饮食代谢表型

验证肠上皮menin缺失是否影响高脂饮食诱导的肥胖和代谢紊乱。

将Men1fl/fl小鼠与Villin-Cre转基因小鼠杂交构建Men1ΔIEC小鼠,6周龄起喂食NCD或HFD 12周,记录体重、脂肪组织重量、脂肪细胞大小、肝脏脂质和血清指标。

2

评估肠道脂质吸收和乳糜微粒形成

验证Men1缺失是否通过影响肠道脂质加工与输出而非能量摄入或消耗来减轻体重增加。

HFD喂养6周后禁食12小时,橄榄油灌胃进行脂肪耐量试验,检测血清TG、FFA,Nile Red染色和肠TG含量,透射电镜测量乳糜微粒直径,Western blot检测血清ApoB48;并用tyloxapol阻断外周TG清除。

3

鉴定Ces1g为menin下游效应分子并验证其功能

明确Men1缺失后上调的脂解酶及其对TG水解和脂质输出的作用。

对HFD喂养小鼠近端小肠IEC进行RNA-seq和GO分析,RT-qPCR和Western blot验证Ces1g/CES1表达;在MODE-K细胞过表达Ces1g,在MEN1敲低的CACO-2细胞中敲低CES1,使用Transwell单层和WWL113抑制CES1,并进行NBD-TG水解实验。

4

评估脂肪酸β-氧化能力

验证CES1介导TG水解后释放的脂肪酸是否进入β-氧化而非积累。

对IEC转录组进行GSEA,RT-qPCR和Western blot检测FAO相关基因和CPT1A;测定原代IEC的OCR、FAO活性和CS活性;在MODE-K细胞中进行Seahorse棕榈酸氧化应激实验并使用etomoxir抑制CPT1。

5

解析menin–LXRβ–HDAC1复合物抑制Ces1g转录的机制

阐明menin如何转录抑制Ces1g/CES1。

在MODE-K和CACO-2细胞中敲低或过表达Men1/MEN1,检测Ces1g/CES1 mRNA和蛋白;ChIP-seq和ChIP-qPCR检测menin、Pol II、H3Ac、H3K27Ac、HDAC1、HDAC3、LXRβ在Ces1g启动子的占据;双荧光素酶报告、Co-IP、Re-ChIP和LXR激动剂/拮抗剂处理验证LXRβ和LXRE依赖性。

6

药理学抑制menin及人源类器官验证

验证menin抑制剂MI-463是否重现基因缺失的代谢获益,并在人肠道模型中验证转化相关性。

HFD喂养小鼠从12周龄起口服MI-463 30 mg/kg每日一次共6周,检测体重、FTT、肠Nile Red、ApoB48、糖代谢和安全性指标;在MODE-K、CACO-2和人小肠类器官IBAC-on-chip中检测MI-463对CES1表达和脂质积累的影响,并进行Co-IP和ChIP-qPCR。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高脂饮食D12492Research DietsD12492
他莫昔芬S1238SelleckS1238
menin抑制剂MI-463 S7816SelleckS7816
CES1抑制剂WWL113 HY-110148MedChemExpressHY-110148
BODIPY 500/510 C1, C12脂肪酸探针Biyun Tian Biotechnology Co., LTDC2055-1mg
细胞外耗氧率板式检测试剂盒DojindoE297
脂肪酸氧化比色检测试剂盒ElabscienceE-BC-K784-M
柠檬酸合酶活性检测试剂盒Thermo Fisher ScientificEEA054
Seahorse XF棕榈酸氧化应激检测试剂盒Agilent103693-100
LXR拮抗剂GSK2033----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
高脂饮食小鼠代谢表型
小鼠品系与构建:Men1fl/fl与Villin-Cre杂交获得Men1ΔIEC,C57BL/6J背景;饮食:HFD 60% kcal脂肪D12492;起始6周龄,喂养12周;每组n=6
阅读提示:Methods-Mice及Figure 1A、1B图注
脂肪耐量试验与乳糜微粒分析
HFD喂养6周后禁食12小时;橄榄油10 μL/g体重灌胃;0、2、4、6小时采血;tyloxapol 50 mg/mL、10 μL/g静脉注射后15分钟灌胃;每组n=6(电镜n=3)
阅读提示:Figure 2A–2F及对应图注、Methods
CES1功能验证与WWL113抑制
WWL113 30 mg/kg腹腔注射每日一次共2周;NBD-TG水解100 μg蛋白37°C 0–90分钟;Transwell CACO-2验证指标:荧光素通透性<2×10–6 cm/s、TEER>400 Ω·cm²、AP活性比>2
阅读提示:Figure 3I–3P图注及Supplemental Figure 3
FAO与线粒体呼吸验证
原代IEC来自HFD喂养4周小鼠;Seahorse使用棕榈酸-BSA 5 mM、etomoxir 0.4 μM、oligomycin 1.5 μM、FCCP 1 μM、rotenone/antimycin A 0.5 μM;OCR检测10分钟间隔至200分钟
阅读提示:Figure 4及对应图注、Methods-OCR/FAO/Seahorse小节
MI-463体内药效与人类器官验证
MI-463 30 mg/kg每日一次口服6周(12–18周龄);人小肠类器官IBAC M1芯片,油酸刺激,BODIPY-C12 5 μM 4小时;每组n=6或n=3
阅读提示:Figure 6L–6S、Figure 7A–7G图注及Methods