CCD患者临床样本分析
验证RUNX2突变是否影响牙槽骨破骨细胞分化和骨吸收
收集CCD患者牙槽骨样本,进行micro-CT扫描、HE染色和TRAP染色,与年龄和性别匹配的对照比较
RUNX2 promotes osteoclast differentiation and bone resorption via the newly identified LncRNA-ROD: implications for alveolar remodeling
包含患者样本、Runx2+/−与LncRNA-ROD−/−小鼠模型、OVX骨质疏松模型及RAW 264.7/BMMs体外功能与机制验证
CCD患者牙槽骨样本 Runx2+/−小鼠及LncRNA-ROD−/−小鼠 RAW 264.7细胞及小鼠BMMs OVX诱导骨质疏松小鼠模型
Runx2+/−小鼠在PN11和PN13下颌第一磨牙萌出高度(n=6) Runx2+/−小鼠在PN5牙槽骨TRAP阳性破骨细胞数量(n=6) LncRNA-ROD−/−小鼠在PN11和PN13下颌第一磨牙萌出高度(n=6) OVX模型中Runx2+/−与LncRNA-ROD−/−小鼠股骨micro-CT参数(BMD、BV/TV、Tb.Sp等,n=6) AAV-shQki尾静脉注射后Runx2+/−+OVX小鼠股骨micro-CT参数(n=5)及LncRNA-ROD−/−+OVX小鼠股骨micro-CT参数(n=6)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证RUNX2突变是否影响牙槽骨破骨细胞分化和骨吸收
收集CCD患者牙槽骨样本,进行micro-CT扫描、HE染色和TRAP染色,与年龄和性别匹配的对照比较
验证RUNX2单倍剂量不足是否导致磨牙萌出延迟和破骨细胞分化受损
通过同源重组生成Runx2+/−小鼠,使用micro-CT分析PN11和PN13下颌第一磨牙萌出水平,TRAP染色分析PN5牙槽骨破骨细胞数量,PN21分析M1、M2和M3萌出高度
验证RUNX2缺失对破骨细胞分化和骨吸收的直接细胞自主效应
使用CRISPR/Cas9生成Runx2 KO RAW 264.7细胞,Sanger测序确认移码突变,RT-qPCR和Western blot检测破骨细胞相关基因表达,TRAP染色和骨吸收陷窝实验评估分化和吸收功能
验证RUNX2单倍剂量不足对原代破骨细胞前体分化和吸收功能的影响
从Runx2+/+和Runx2+/−小鼠分离BMMs,诱导破骨细胞分化,RT-qPCR和Western blot检测基因表达,TRAP染色和骨吸收实验评估功能
验证RUNX2单倍剂量不足对雌激素缺乏诱导的骨丢失的影响
对Runx2+/+和Runx2+/−小鼠进行双侧卵巢切除或假手术,8周后micro-CT扫描股骨,HE和TRAP染色分析骨形态和破骨细胞分化
鉴定RUNX2调控的参与破骨细胞分化的lncRNAs
在RAW 264.7细胞中过表达WT-RUNX2或MUT-RUNX2(c.199C>T, Q67X; c.514delT, 172 fs; c.674G>T, R225L),第0天和第3天进行RNA测序,差异表达分析鉴定lncRNAs
鉴定RUNX2直接转录激活的lncRNA并表征其特征
RT-qPCR验证候选lncRNA表达,RACE确定全长序列,编码潜力分析确认非编码性质,ChIP-qPCR和双荧光素酶报告实验验证RUNX2直接结合和转录激活
验证LncRNA-ROD在体内破骨细胞中的表达及其与RUNX2的共定位
在P5牙槽骨和8周龄股骨切片中进行RUNX2和CTSK免疫荧光共定位,LncRNA-ROD RNA FISH联合CTSK免疫荧光,以及RUNX2免疫荧光联合LncRNA-ROD RNA FISH
验证LncRNA-ROD是否介导RUNX2依赖的破骨细胞生成
在Runx2+/− BMMs中过表达LncRNA-ROD,诱导破骨细胞分化,Western blot检测破骨细胞标志物和CSF1R,TRAP染色和骨吸收实验评估功能
验证LncRNA-ROD缺失是否重现Runx2+/−小鼠的萌出延迟和破骨细胞分化受损表型
使用CRISPR/Cas9生成LncRNA-ROD−/−小鼠,Alizarin red-Alcian blue染色分析骨骼表型,micro-CT分析PN11和PN13磨牙萌出,TRAP染色分析PN5牙槽骨破骨细胞
剖析LncRNA-ROD在破骨细胞生成中的功能
建立LncRNA-ROD过表达(OE-LncRNA-ROD)和敲除(LncRNA-ROD KO)RAW 264.7细胞,Western blot检测破骨细胞相关蛋白,TRAP染色和骨吸收实验评估分化和吸收功能
验证LncRNA-ROD缺失对原代破骨细胞前体融合和吸收功能的影响
从LncRNA-ROD−/−小鼠分离BMMs,诱导破骨细胞分化,Western blot检测CD44、ITGB3、CTSK、MMP9表达,TRAP染色和骨吸收实验评估功能
验证LncRNA-ROD缺失对雌激素缺乏诱导的骨丢失的保护作用
对LncRNA-ROD+/+和LncRNA-ROD−/−小鼠进行OVX或假手术,8周后micro-CT扫描股骨,HE和TRAP染色分析,免疫荧光检测CTSK和MMP9
鉴定LncRNA-ROD相互作用的蛋白
RNA pulldown联合质谱鉴定LncRNA-ROD结合蛋白,Western blot和RIP-qPCR验证QKI为直接互作蛋白,免疫荧光验证核内共定位
验证QKI在破骨细胞分化和骨吸收中的调控作用
建立QKI敲低RAW 264.7细胞(shQki),Western blot检测破骨细胞相关基因,TRAP染色和骨吸收实验评估功能。使用isoform特异性siRNA(si-Qki-5)验证QKI-5功能
验证LncRNA-ROD通过隔离QKI稳定Csf1r mRNA
Western blot检测LncRNA-ROD过表达或敲除后QKI和CSF1R蛋白表达,RIP-qPCR验证QKI结合Csf1r mRNA,RNA稳定性实验检测QKI过表达和LncRNA-ROD共过表达对Csf1r mRNA稳定性的影响
确定哪些QKI isoforms与LncRNA-ROD和Csf1r mRNA互作
使用isoform特异性抗体(QKI-5、QKI-6、QKI-7)进行RIP-qPCR,检测各isoform对LncRNA-ROD和Csf1r mRNA的富集
验证QKI敲低能否在体内挽救RUNX2或LncRNA-ROD缺失导致的破骨细胞分化缺陷
通过尾静脉注射AAV-shQki至Runx2+/−或LncRNA-ROD−/−小鼠(sham或OVX手术),2周后EGFP成像确认AAV分布,免疫组化验证QKI敲低,micro-CT和TRAP染色评估骨参数和破骨细胞
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 红细胞裂解 | 红细胞裂解液 | Solarbio | R1010 |
| 破骨细胞诱导 | 重组小鼠RANKL | R&D Systems | 462-TEC-010 |
| 重组小鼠M-CSF | BioLegend | 576404 | |
| TRAP染色 | 白细胞酸性磷酸酶(TRAP)试剂盒 | Sigma-Aldrich | 387A |
| 骨吸收实验 | 骨吸收板 | Cosmo Bio | CSR-BRA-24P |
| RNA FISH | RNA FISH试剂盒 | GenePharma | -- |
| DAPI | Sigma-Aldrich | D9542 | |
| RNA pulldown | Pierce磁性RNA-蛋白pull-down试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 20164 |
| RIP | RIP试剂盒 | BersinBio | Bes5101 |
| QKI特异性抗体 | Abcam | ab126742 | |
| 兔IgG | CST | 2729S | |
| ChIP | BeyoChIP酶法ChIP试剂盒 | Beyotime | P2083S |
| RUNX2特异性抗体 | CST | 12556S | |
| 双荧光素酶报告实验 | 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E1910 |
| 显微CT | Inveon微型CT系统 | Siemens | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 8.0.1 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Runx2+/−小鼠磨牙萌出分析 | 小鼠基因型、PN11和PN13时间点、n=6、micro-CT扫描参数(电压60 kV,电流220 µA,曝光时间1500 ms,有效像素8.89 µm)、萌出高度定量方法(从最高牙尖到牙槽嵴最高点的垂直距离) 阅读提示:Methods中Micro-CT analysis小节及Fig. 2b, c图注 |
| 破骨细胞分化诱导 | RAW 264.7细胞接种密度(3.5×10^4 cells/mL)、RANKL浓度(10 ng/mL)、诱导时间(3-6天,每2天换液);BMMs接种密度(5×10^6 cells/mL)、M-CSF浓度(30 ng/mL)、RANKL浓度(50 ng/mL)、诱导时间(4-7天,每2天换液) 阅读提示:Methods中Osteoclast differentiation小节 |
| TRAP染色和骨吸收实验 | TRAP染色固定时间(4% PFA,室温5 min)、染色条件(37°C,40 min)、阳性细胞定义(≥3核)、计数视野(5个预定义视野)、骨吸收实验NaClO处理浓度(10%)和时间(10 min)、n=3 阅读提示:Methods中TRAP staining和Bone resorption assay小节及Fig. 3b, c, e, f等图注 |
| OVX骨质疏松模型 | 小鼠基因型、手术方式(双侧卵巢切除或假手术)、术后分析时间(8周)、micro-CT参数(BMD、BV/TV、Tb.Th、Tb.N、Tb.Sp)、n=6、TRAP染色 阅读提示:Methods中Micro-CT analysis小节及Fig. 3g–i、Fig. 7g–i图注 |
| AAV-shQki体内挽救实验 | 注射途径(尾静脉)、注射后分析时间(2周)、EGFP成像确认AAV分布、免疫组化验证QKI敲低、Runx2+/−+OVX小鼠n=5、LncRNA-ROD−/−+OVX小鼠n=6、micro-CT参数和TRAP染色 阅读提示:Results中QKI knockdown reverses osteoclast differentiation defects小节及Fig. 9a–f图注、Fig. S15–S18 |