RUNX2通过新鉴定的LncRNA-ROD促进破骨细胞分化和骨吸收:对牙槽骨重塑的启示

RUNX2 promotes osteoclast differentiation and bone resorption via the newly identified LncRNA-ROD: implications for alveolar remodeling

作者信息Jie Li, Yang Liu, Yanchun Qiao, Changqing Yan, Weiwei Zhao, Lingli Ji, Dandan Liu, Yuejiao Xin, Chenying Zhang, Xiaozhe Wang, Yixiang Wang, Shuguo Zheng
PMID42805948
发布时间2026-09-28
DOI10.1038/s41368-026-00466-z

实验完整度

高

包含患者样本、Runx2+/−与LncRNA-ROD−/−小鼠模型、OVX骨质疏松模型及RAW 264.7/BMMs体外功能与机制验证

主要模型

CCD患者牙槽骨样本 Runx2+/−小鼠及LncRNA-ROD−/−小鼠 RAW 264.7细胞及小鼠BMMs OVX诱导骨质疏松小鼠模型

重点核对

Runx2+/−小鼠在PN11和PN13下颌第一磨牙萌出高度(n=6) Runx2+/−小鼠在PN5牙槽骨TRAP阳性破骨细胞数量(n=6) LncRNA-ROD−/−小鼠在PN11和PN13下颌第一磨牙萌出高度(n=6) OVX模型中Runx2+/−与LncRNA-ROD−/−小鼠股骨micro-CT参数(BMD、BV/TV、Tb.Sp等,n=6) AAV-shQki尾静脉注射后Runx2+/−+OVX小鼠股骨micro-CT参数(n=5)及LncRNA-ROD−/−+OVX小鼠股骨micro-CT参数(n=6)

摘要

延迟萌牙是由RUNX2单倍剂量不足引起的锁骨颅骨发育不良(CCD)的标志性特征,但其潜在分子机制尚不明确。在本研究中,我们发现RUNX2调控破骨细胞介导的牙槽骨重塑,这一过程与牙齿萌出密切相关。Runx2+/−小鼠表现出破骨细胞分化受损和牙槽骨吸收减少,导致下颌磨牙萌出延迟——该表型重现了人类CCD。机制上,RUNX2转录激活LncRNA-ROD(破骨细胞分化调节因子),后者通过隔离QKI稳定Csf1r mRNA,从而促进破骨细胞生成。LncRNA-ROD−/−小鼠重现了Runx2+/−小鼠中观察到的萌出缺陷和牙槽骨吸收减少。关键的是,Runx2+/−和LncRNA-ROD−/−小鼠均显示牙槽骨中破骨细胞分化减少,这与来自骨髓来源单核/巨噬细胞的体外数据显示的破骨细胞分化受损一致。值得注意的是,在卵巢切除诱导的骨质疏松模型中的挽救实验表明,QKI敲低恢复了Runx2+/−和LncRNA-ROD−/−小鼠中的破骨细胞分化,突显了RUNX2/LncRNA-ROD/QKI轴在破骨细胞生成中的关键作用。该轴支持与牙齿萌出相关的牙槽骨重塑。这些结果为锁骨颅骨发育不良相关的牙槽骨重塑缺陷和延迟萌牙提供了机制性见解,并鉴定LncRNA-ROD为牙槽骨重塑疾病的潜在治疗靶点。此外,该轴与更广泛的骨代谢疾病相关,其在Runx2+/−和LncRNA-ROD−/−小鼠中对骨质疏松进展的影响已得到证明。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
RUNX2是否直接调控破骨细胞分化和骨吸收,以及lncRNA是否参与该调控通路,从而解释CCD中延迟萌牙的分子机制。
核心机制
RUNX2转录激活LncRNA-ROD,LncRNA-ROD通过隔离QKI-5(核内)和QKI-6(胞质)抑制QKI介导的Csf1r mRNA降解,稳定Csf1r mRNA并维持CSF1R表达,从而促进破骨细胞分化和骨吸收。
主要证据
Runx2+/−和LncRNA-ROD−/−小鼠均表现出牙槽骨破骨细胞分化受损和磨牙萌出延迟;RAW 264.7和BMMs体外实验显示RUNX2或LncRNA-ROD缺失导致破骨细胞分化和骨吸收能力下降;RNA pulldown、RIP-qPCR和RNA稳定性实验证实LncRNA-ROD与QKI互作并稳定Csf1r mRNA;AAV-shQki尾静脉注射在Runx2+/−和LncRNA-ROD−/−小鼠OVX模型中恢复破骨细胞分化和骨吸收。
研究意义
为CCD相关牙槽骨重塑缺陷和延迟萌牙提供机制性见解,鉴定LncRNA-ROD为牙槽骨重塑疾病的潜在治疗靶点,并提示该轴在更广泛的骨代谢疾病(如骨质疏松)中具有作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

CCD患者临床样本分析

验证RUNX2突变是否影响牙槽骨破骨细胞分化和骨吸收

收集CCD患者牙槽骨样本,进行micro-CT扫描、HE染色和TRAP染色,与年龄和性别匹配的对照比较

2

Runx2+/−小鼠模型建立与表型分析

验证RUNX2单倍剂量不足是否导致磨牙萌出延迟和破骨细胞分化受损

通过同源重组生成Runx2+/−小鼠,使用micro-CT分析PN11和PN13下颌第一磨牙萌出水平,TRAP染色分析PN5牙槽骨破骨细胞数量,PN21分析M1、M2和M3萌出高度

3

RAW 264.7细胞Runx2敲除及功能验证

验证RUNX2缺失对破骨细胞分化和骨吸收的直接细胞自主效应

使用CRISPR/Cas9生成Runx2 KO RAW 264.7细胞,Sanger测序确认移码突变,RT-qPCR和Western blot检测破骨细胞相关基因表达,TRAP染色和骨吸收陷窝实验评估分化和吸收功能

4

Runx2+/− BMMs分离及功能验证

验证RUNX2单倍剂量不足对原代破骨细胞前体分化和吸收功能的影响

从Runx2+/+和Runx2+/−小鼠分离BMMs,诱导破骨细胞分化,RT-qPCR和Western blot检测基因表达,TRAP染色和骨吸收实验评估功能

5

OVX诱导骨质疏松模型中RUNX2功能验证

验证RUNX2单倍剂量不足对雌激素缺乏诱导的骨丢失的影响

对Runx2+/+和Runx2+/−小鼠进行双侧卵巢切除或假手术,8周后micro-CT扫描股骨,HE和TRAP染色分析骨形态和破骨细胞分化

6

RNA-seq筛选RUNX2调控的lncRNAs

鉴定RUNX2调控的参与破骨细胞分化的lncRNAs

在RAW 264.7细胞中过表达WT-RUNX2或MUT-RUNX2(c.199C>T, Q67X; c.514delT, 172 fs; c.674G>T, R225L),第0天和第3天进行RNA测序,差异表达分析鉴定lncRNAs

7

LncRNA-ROD鉴定与特征分析

鉴定RUNX2直接转录激活的lncRNA并表征其特征

RT-qPCR验证候选lncRNA表达,RACE确定全长序列,编码潜力分析确认非编码性质,ChIP-qPCR和双荧光素酶报告实验验证RUNX2直接结合和转录激活

8

LncRNA-ROD在骨组织中的表达定位

验证LncRNA-ROD在体内破骨细胞中的表达及其与RUNX2的共定位

在P5牙槽骨和8周龄股骨切片中进行RUNX2和CTSK免疫荧光共定位,LncRNA-ROD RNA FISH联合CTSK免疫荧光,以及RUNX2免疫荧光联合LncRNA-ROD RNA FISH

9

LncRNA-ROD在Runx2+/− BMMs中的挽救实验

验证LncRNA-ROD是否介导RUNX2依赖的破骨细胞生成

在Runx2+/− BMMs中过表达LncRNA-ROD,诱导破骨细胞分化,Western blot检测破骨细胞标志物和CSF1R,TRAP染色和骨吸收实验评估功能

10

LncRNA-ROD−/−小鼠模型建立与表型分析

验证LncRNA-ROD缺失是否重现Runx2+/−小鼠的萌出延迟和破骨细胞分化受损表型

使用CRISPR/Cas9生成LncRNA-ROD−/−小鼠,Alizarin red-Alcian blue染色分析骨骼表型,micro-CT分析PN11和PN13磨牙萌出,TRAP染色分析PN5牙槽骨破骨细胞

11

LncRNA-ROD在RAW 264.7细胞中的过表达和敲除功能验证

剖析LncRNA-ROD在破骨细胞生成中的功能

建立LncRNA-ROD过表达(OE-LncRNA-ROD)和敲除(LncRNA-ROD KO)RAW 264.7细胞,Western blot检测破骨细胞相关蛋白,TRAP染色和骨吸收实验评估分化和吸收功能

12

LncRNA-ROD−/− BMMs功能验证

验证LncRNA-ROD缺失对原代破骨细胞前体融合和吸收功能的影响

从LncRNA-ROD−/−小鼠分离BMMs,诱导破骨细胞分化,Western blot检测CD44、ITGB3、CTSK、MMP9表达,TRAP染色和骨吸收实验评估功能

13

OVX模型中LncRNA-ROD功能验证

验证LncRNA-ROD缺失对雌激素缺乏诱导的骨丢失的保护作用

对LncRNA-ROD+/+和LncRNA-ROD−/−小鼠进行OVX或假手术,8周后micro-CT扫描股骨,HE和TRAP染色分析,免疫荧光检测CTSK和MMP9

14

LncRNA-ROD互作蛋白鉴定

鉴定LncRNA-ROD相互作用的蛋白

RNA pulldown联合质谱鉴定LncRNA-ROD结合蛋白,Western blot和RIP-qPCR验证QKI为直接互作蛋白,免疫荧光验证核内共定位

15

QKI功能验证

验证QKI在破骨细胞分化和骨吸收中的调控作用

建立QKI敲低RAW 264.7细胞(shQki),Western blot检测破骨细胞相关基因,TRAP染色和骨吸收实验评估功能。使用isoform特异性siRNA(si-Qki-5)验证QKI-5功能

16

LncRNA-ROD调控Csf1r mRNA稳定性机制验证

验证LncRNA-ROD通过隔离QKI稳定Csf1r mRNA

Western blot检测LncRNA-ROD过表达或敲除后QKI和CSF1R蛋白表达,RIP-qPCR验证QKI结合Csf1r mRNA,RNA稳定性实验检测QKI过表达和LncRNA-ROD共过表达对Csf1r mRNA稳定性的影响

17

QKI isoform特异性互作分析

确定哪些QKI isoforms与LncRNA-ROD和Csf1r mRNA互作

使用isoform特异性抗体(QKI-5、QKI-6、QKI-7)进行RIP-qPCR,检测各isoform对LncRNA-ROD和Csf1r mRNA的富集

18

AAV-shQki体内挽救实验

验证QKI敲低能否在体内挽救RUNX2或LncRNA-ROD缺失导致的破骨细胞分化缺陷

通过尾静脉注射AAV-shQki至Runx2+/−或LncRNA-ROD−/−小鼠(sham或OVX手术),2周后EGFP成像确认AAV分布,免疫组化验证QKI敲低,micro-CT和TRAP染色评估骨参数和破骨细胞

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基----
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
红细胞裂解液SolarbioR1010
重组小鼠RANKLR&D Systems462-TEC-010
重组小鼠M-CSFBioLegend576404
白细胞酸性磷酸酶(TRAP)试剂盒Sigma-Aldrich387A
骨吸收板Cosmo BioCSR-BRA-24P
RNA FISH试剂盒GenePharma--
DAPISigma-AldrichD9542
Pierce磁性RNA-蛋白pull-down试剂盒Thermo Fisher Scientific20164
RIP试剂盒BersinBioBes5101
QKI特异性抗体Abcamab126742
兔IgGCST2729S
BeyoChIP酶法ChIP试剂盒BeyotimeP2083S
RUNX2特异性抗体CST12556S
双荧光素酶报告基因检测系统PromegaE1910
Inveon微型CT系统Siemens--
GraphPad Prism 8.0.1GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
Runx2+/−小鼠磨牙萌出分析
小鼠基因型、PN11和PN13时间点、n=6、micro-CT扫描参数(电压60 kV,电流220 µA,曝光时间1500 ms,有效像素8.89 µm)、萌出高度定量方法(从最高牙尖到牙槽嵴最高点的垂直距离)
阅读提示:Methods中Micro-CT analysis小节及Fig. 2b, c图注
破骨细胞分化诱导
RAW 264.7细胞接种密度(3.5×10^4 cells/mL)、RANKL浓度(10 ng/mL)、诱导时间(3-6天,每2天换液);BMMs接种密度(5×10^6 cells/mL)、M-CSF浓度(30 ng/mL)、RANKL浓度(50 ng/mL)、诱导时间(4-7天,每2天换液)
阅读提示:Methods中Osteoclast differentiation小节
TRAP染色和骨吸收实验
TRAP染色固定时间(4% PFA,室温5 min)、染色条件(37°C,40 min)、阳性细胞定义(≥3核)、计数视野(5个预定义视野)、骨吸收实验NaClO处理浓度(10%)和时间(10 min)、n=3
阅读提示:Methods中TRAP staining和Bone resorption assay小节及Fig. 3b, c, e, f等图注
OVX骨质疏松模型
小鼠基因型、手术方式(双侧卵巢切除或假手术)、术后分析时间(8周)、micro-CT参数(BMD、BV/TV、Tb.Th、Tb.N、Tb.Sp)、n=6、TRAP染色
阅读提示:Methods中Micro-CT analysis小节及Fig. 3g–i、Fig. 7g–i图注
AAV-shQki体内挽救实验
注射途径(尾静脉)、注射后分析时间(2周)、EGFP成像确认AAV分布、免疫组化验证QKI敲低、Runx2+/−+OVX小鼠n=5、LncRNA-ROD−/−+OVX小鼠n=6、micro-CT参数和TRAP染色
阅读提示:Results中QKI knockdown reverses osteoclast differentiation defects小节及Fig. 9a–f图注、Fig. S15–S18