整合突触体多组学揭示C9ORF72-额颞叶痴呆中突触组织破坏及突触定位的隐蔽转录本

Integrative synaptosome multi-omics reveals disrupted synapse organization and localized cryptic transcripts in C9ORF72-frontotemporal dementia

作者信息Ashton M Spillman, Eric B Alsop, Lauren M Gittings, Krystine Garcia-Mansfield, Ignazio Piras, Anna Bonfitto, Melissa N Martinez, Ritin Sharma, Kim R Preller, Matthew Huentelman, Patrick Pirrotte, Kendall Van Keuren-Jensen, Rita Sattler
PMID42789089
发布时间2026-09-25
DOI10.1007/s00401-026-03084-5

实验完整度

高

包含死后脑组织突触体蛋白质组/转录组、iPSC皮层神经元突触体蛋白质组/转录组及MEA功能验证,多层级证据并含机制验证

主要模型

C9-FTD患者死后额叶皮层组织突触体 C9-FTD患者来源iPSC分化的皮层神经元 对照死后额叶皮层组织突触体 对照iPSC分化的皮层神经元

重点核对

死后额叶皮层组织样本量:对照组n=10,C9-FTD组n=10 iPSC细胞系样本量:对照组n=3,C9-FTD组n=3 iPSC皮层神经元在DiV100进行突触体分离、免疫荧光染色和MEA分析 突触体富集验证:Western blot检测突触前标记物Synaptophysin(SYP)和突触后标记物Homer1/PSD-95 MEA记录从DiV65至DiV100纵向进行,每周记录一次,每次5分钟

摘要

额颞叶痴呆(FTD)和肌萎缩侧索硬化(ALS)是相关的神经退行性疾病,以突触功能障碍和TDP-43病理为特征。C9ORF72(C9)基因中的六核苷酸重复扩增(HRE)是FTD和ALS最常见的遗传原因,但疾病发病机制中突触特异性机制仍知之甚少。在此,我们对来自死后额叶皮层和患者来源诱导多能干细胞(iPSC)皮层神经元的突触体进行了整合多组学分析,以确定与C9-FTD介导的突触功能障碍相关的分子改变。额叶皮层来源突触体的蛋白质组学分析鉴定出1,324个差异丰度蛋白(p<0.05),富集于调节突触囊泡运输和突触组织的通路,而突触体RNA测序揭示了2,835个差异表达的蛋白编码基因。C9-FTD iPSC皮层神经元表现出兴奋性和抑制性突触后标记物减少,伴随神经元网络活动的进行性损害,支持结构和功能缺陷。iPSC来源的突触体重现了患者大脑中观察到的关键分子通路,揭示了突触信号通路的趋同失调。比较分析揭示了蛋白质和RNA改变之间的差异,与疾病突触中连接RNA和蛋白质丰度的调节过程破坏一致。与TDP-43功能丧失病理一致,我们在C9-FTD额叶皮层来源的突触体内鉴定出含有隐蔽外显子(CE)的转录本,包括KALRN和STMN2,提供了异常剪接RNA定位于突触区室的证据。总之,这些发现定义了C9-FTD模型系统中突触脆弱性的趋同分子通路,并确定了含CE转录本的突触定位是TDP-43蛋白病的一个先前未被认识的特征。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
C9ORF72-FTD中突触特异性分子改变及其与TDP-43病理的关系尚不清楚,本研究旨在定义C9-FTD突触功能障碍相关的分子改变。
核心机制
C9-FTD突触中蛋白质和RNA丰度调控过程解偶联,TDP-43功能丧失导致含隐蔽外显子的异常剪接转录本(包括STMN2和KALRN)定位于突触区室。
主要证据
死后额叶皮层突触体蛋白质组鉴定1,324个差异丰度蛋白,转录组鉴定2,835个差异表达基因;iPSC皮层神经元突触体重现关键分子通路;iPSC神经元表现出兴奋性和抑制性突触后标记物减少及MEA记录的进行性网络活动降低;突触体中检测到含CE的STMN2和KALRN转录本。
研究意义
定义了C9-FTD模型系统中突触脆弱性的趋同分子通路,并确定含隐蔽外显子转录本的突触定位是TDP-43蛋白病的一个先前未被认识的特征,将突触确立为C9-FTD中亚细胞脆弱性的部位。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

死后额叶皮层组织突触体分离与验证

从C9-FTD患者和对照死后额叶皮层中分离突触体,验证突触体富集和结构完整性。

使用差速离心法从死后额叶皮层组织(60–75 mg)中分离粗突触体(P2)组分;通过Western blot检测突触前标记物Synaptophysin和突触后标记物Homer1验证富集;通过透射电子显微镜(TEM)评估突触体超微结构完整性;通过PCA和热图比较H0和P2组分的蛋白质和RNA分布。

2

死后额叶皮层突触体蛋白质组和转录组分析

鉴定C9-FTD额叶皮层突触体中差异丰度蛋白和差异表达基因及其富集通路。

对额叶皮层突触体(P2)和匀浆(H0)组分进行质谱蛋白质组学和RNA测序;鉴定DAPs和DEGs;使用SYNGO数据库进行基因本体论生物学过程富集分析;比较RNA和蛋白质log2FC的相关性。

3

iPSC皮层神经元分化与突触表型表征

利用患者来源iPSC分化的皮层神经元在体外重现C9-FTD突触结构和功能缺陷。

将C9-FTD患者和对照来源iPSC通过双SMAD抑制分化为前脑兴奋性皮层神经元,培养至DiV100;通过免疫荧光染色定量兴奋性(VGLUT1/Homer1)和抑制性(VGAT/Gephyrin)突触标记物斑点密度;通过多电极阵列(MEA)记录从DiV65至DiV100评估神经元网络活动。

4

iPSC皮层神经元突触体多组学分析

确定iPSC皮层神经元来源突触体是否重现死后脑组织中观察到的突触分子改变。

从DiV100 iPSC皮层神经元(2×10^6细胞)中分离突触体;通过Western blot检测SYP和PSD-95验证富集;进行质谱蛋白质组学和RNA测序;鉴定DAPs和DEGs;SYNGO富集分析;比较RNA和蛋白质相关性。

5

跨模型多组学整合分析

鉴定死后脑组织和iPSC模型之间共享的突触分子改变和保守生物学过程。

对四个数据集(额叶皮层蛋白质组、额叶皮层转录组、iPSC蛋白质组、iPSC转录组)进行DAP和DEG重叠分析;鉴定在至少三个数据集中一致改变的基因和蛋白质;SYNGO BP富集分析;生成整合热图展示前25个基因的表达模式。

6

隐蔽外显子分析

检测C9-FTD额叶皮层突触体中TDP-43相关的含隐蔽外显子转录本。

使用regtools和LeafCutter从RNA-seq数据中鉴定剪接连接;通过IGV sashimi图可视化STMN2、KALRN和UNC13A的CE包含情况;计算PSI值量化CE包含比例;比较突触体(P2)和匀浆(H0)组分中CE转录本的分布。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
mTeSR™ Plus培养基StemCell Technologies100–0276
Matrigel基质胶CorningB003T18
ACCUTASE™细胞消化液StemCell Technologies07922
ROCK抑制剂(Y-27632)StemCell Technologies72,302
StemPro EZPassage一次性干细胞传代工具Gibco23,181,010
成纤维细胞生长因子StemCell Technologies78,003
多聚-L-鸟氨酸Sigma-AldrichP4957
层粘连蛋白StemCell Technologies200–0117
蛋白酶抑制剂混合物Roche--
4× Laemmli缓冲液ThermoScientificJ60015-AD
10×还原剂InvitrogenNP0009
4–20% Novex Tris–Glycine Plus Midi蛋白凝胶InvitrogenWXP42026BOX
Trans-Blot Turbo硝酸纤维素膜BioRad12,023,955
Revert 700总蛋白染色试剂盒LiCOR926–11,016
LiCOR Intercept(TBS)封闭缓冲液LiCOR927–60,003
抗突触素抗体Abcam16,659
抗Homer1抗体Abcam184,955
抗PSD-95抗体Abcam18,258
HRP偶联驴抗兔IgG(H+L)二抗Invitrogen31,458
SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物ThermoFisher34,580
Pierce BCA蛋白定量试剂盒ThermoScientific23,225
胰蛋白酶GoldPromega--
RNeasy Plus Micro试剂盒Qiagen74,034
Qubit检测InvitrogenQ33265
Heat&Run gDNA去除试剂盒ArcticZymes Technologies80,200–250
SMARTer链特异性总RNASeq Pico Input v3试剂盒Takara Bio Inc634,487
TapeStation高灵敏度D1000检测Agilent Technologies5067–5584
DAPIInvitrogenD1306
ProLong Glass抗淬灭封片剂InvitrogenP36980
CytoView MEA 48孔板Axion BiosystemsM768-tMEA-48B
Maestro Middleman记录仪Axion BiosystemsMAESTRO768D, 1,000,589
Leica Ultra cut UCT超薄切片机Leica--
FEI Tecnai 12透射电子显微镜FEI--
Gatan OneView CMOS相机Gatan--
ASI圆形玻璃盖玻片,12 mmASISM032

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
死后额叶皮层组织样本
样本量(对照组n=10,C9-FTD组n=10)、性别分布、发病年龄、死亡年龄、疾病持续时间、组织PMI、病理诊断(FTLD–TDP-43 Type A)、临床诊断
阅读提示:Methods中Postmortem tissue samples小节及Table 1
iPSC细胞系与皮层神经元分化
细胞系来源(对照组PBMC,C9-FTD组成纤维细胞)、样本量(n=3/组)、分化方案(双SMAD抑制)、成熟时间(DiV100)、培养基和添加剂
阅读提示:Methods中iPSC culture and cortical neuron differentiation小节及Table 2
突触体分离
组织重量(60–75 mg)、iPSC神经元数量(2×10^6)、离心速度和时间(500×g 5 min,10,000×g 15 min)、缓冲液组成
阅读提示:Methods中Biochemical fractionation of synaptosomes小节
蛋白质组学
上样量(组织25 µg,iPSC 5 µg)、酶切比例(1:25)、质谱仪器型号、色谱梯度(30 min)、数据采集模式(diaPASEF)
阅读提示:Methods中Proteomics sample preparation, data acquisition and analysis小节
RNA测序
RNA input量(10 ng)、文库制备试剂盒、测序平台(Illumina NovaSeq X)、读长配置(151–9–9–151)
阅读提示:Methods中RNA isolation, library preparation, and sequencing小节
免疫荧光染色与斑点定量
固定方法(100%甲醇)、一抗和二抗信息(Supplemental Table S2)、成像物镜(63×)、z-stack参数(5–6张,0.5 µm间隔)、定量软件(Imaris v10.1.1)
阅读提示:Methods中Immunofluorescent staining of synaptic markers and puncta quantification小节及Supplemental Table S2
MEA记录
接种密度(50,000细胞/孔)、记录起始时间(DiV65)、记录时长(5 min)、滤波器参数(200 Hz高通,3000 Hz低通,5.5 SD)
阅读提示:Methods中Microelectrode array (MEA) recordings of iPSC-cortical neurons小节
隐蔽外显子分析
分析基因(STMN2、KALRN、UNC13A)、比对参数、连接提取参数、LeafCutter参数、PSI计算方法
阅读提示:Methods中Cryptic exon junction analysis小节