IJP的合成与表征
制备具有荧光和金半球的Janus颗粒,用于后续sEV检测
在玻璃载玻片上铺展荧光聚苯乙烯微球,沉积约10 nm金层,超声释放颗粒,过滤并浓缩,通过SEM和EDX确认Janus结构
Rapid and sensitive detection of cancer-derived small extracellular vesicles using Janus particles
含体外细胞培养基、人血浆/血清/尿液样本及87例患者队列,并有尺寸排阻、抗体封闭和正交SPR验证
DiFi人结直肠癌细胞3D培养 GBM9胶质母细胞瘤细胞 人血浆/血清/尿液样本 87例患者临床队列
IJP浓度1×10^7个/ml,样本与IJP按2:1比例混合,孵育1小时 抗体功能化使用Abcam Gold Conjugation Kit,抗体浓度0.1 mg/ml sEV浓度检测限4×10^5 sEV/ml,定量下限1×10^6 sEV/ml,动态范围>3 log10 盲法队列87例,通过aEGFR+/CEA+/GPC1+/pTau181+ sEV标志物分层检测 正交验证方法为超速离心联合表面等离子体共振
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备具有荧光和金半球的Janus颗粒,用于后续sEV检测
在玻璃载玻片上铺展荧光聚苯乙烯微球,沉积约10 nm金层,超声释放颗粒,过滤并浓缩,通过SEM和EDX确认Janus结构
在金半球上固定靶标特异性抗体,使IJP能捕获sEV
使用Abcam Gold Conjugation Kit将抗体偶联到IJP金半球,离心洗涤后重悬于PBS
通过IJP闪烁频率变化检测样本中sEV
将功能化IJP与样本按2:1比例混合,孵育1小时,取2 μl在荧光显微镜下拍摄视频,分析闪烁频率
建立IJP闪烁信号与sEV浓度的定量关系,评估检测限和精密度
使用已知浓度的sEV绘制校准曲线,测定LoB、LLOD、LLOQ、精密度和回收率
验证IJP仅对大于50 nm的颗粒产生信号,排除可溶性蛋白和脂蛋白干扰
使用220 nm、100 nm和50 nm滤膜过滤血浆,比较信号;使用isotype对照和裂解sEV验证特异性;使用模拟血浆调整sEV/非sEV比例
评估IJP平台在混合疾病队列中区分疾病类型的能力
使用aEGFR、CEA、GPC1和pTau181抗体功能化IJP,检测87例受试者血浆sEV,进行分层诊断分析
用传统方法验证IJP检测结果的可靠性
对相同样本进行超速离心分离sEV,然后用SPR检测表面标志物,与IJP结果比较
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| IJP制备 | FluoSpheres聚苯乙烯微球 | Thermo Fisher Scientific | F13081/F13083 |
| 异丙醇 | VWR | BDH7999-4 | |
| 显微镜载玻片 | VWR | 48300-026 | |
| 高频发生器 | Electro-Technic Products | Model BD-20 | |
| 电子束真空沉积/薄膜镀膜系统 | AIRCO Temescal | FC 1800 | |
| 超声波清洗器 | Bransonic | 5510R-DTH | |
| Tween 20 | Sigma-Aldrich | P9416-50ML | |
| 5 μm圆盘过滤器 | Cytiva Whatman Puradisc | 10463533 | |
| 抗体功能化 | 金偶联试剂盒 | Abcam | ab154873 |
| 10 K截留分子量离心过滤器 | Thermo Fisher Scientific | 88513 | |
| PCR管 | Axygen | PCR-02-C | |
| Fisher Accu-Spin Micro 17离心机 | Fisher | -- | |
| 荧光成像 | Olympus IX-71倒置荧光显微镜 | Olympus | -- |
| Olympus Optical 100 W高压汞灯 | Olympus | BH2-RFL-T3 | |
| Retiga EXi相机 | QImaging | 01-RET-EXI-L-M-14-C | |
| Basler ace 2 R相机 | Basler | a2A1920-160ucPRO | |
| 免疫染色对照 | 量子点功能化试剂盒 | Thermo Fisher | S10449 |
| Leica Stellaris 8 DIVE共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| 超速离心 | 超速离心管 | -- | -- |
| 水平转子 | Beckman Coulter | SW60Ti | |
| 水平转子 | Beckman Coulter | SW32.1Ti | |
| SPR | Series S CM5 SPR芯片 | Cytiva | 29149603 |
| EDC | Life Technologies | 22980 | |
| Sulfo-NHS | Life Technologies | 24510 | |
| 细胞培养 | I型胶原蛋白 | -- | -- |
| Normocin | -- | -- | |
| 高糖DMEM | Gibco | -- | |
| EquaFetal血清 | Atlas Biologicals | -- | |
| MEM | -- | -- | |
| Neurobasal培养基 | Gibco | -- | |
| GlutaMAX | -- | -- | |
| B-27补充剂 | -- | -- | |
| N-2补充剂 | -- | -- | |
| 表皮生长因子 | R&D Systems | -- | |
| 成纤维细胞生长因子 | PEPROTECH | -- | |
| NeuroCult化学解离试剂盒-小鼠 | Stemcell Technologies | -- | |
| 抗体 | CD63小鼠单克隆抗体 | Proteintech | 67605-1-Ig |
| CD81兔多克隆抗体 | Proteintech | 27855-1-AP | |
| Glypican 1兔多克隆抗体 | Proteintech | 16700-1-AP | |
| CEA兔多克隆抗体 | Proteintech | 10421-1-AP | |
| 小鼠IgG1同型对照单克隆抗体 | Proteintech | 66360-1-Ig | |
| 磷酸化Tau181单克隆抗体 | Invitrogen | MN1050 | |
| Mab806抗体 | Creative Biolabs | TAB-228CL | |
| 鼠抗人CD9抗体 | Proteintech | 60232-1-Ig |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| IJP制备 | 起始微球尺寸1.0 μm,金层厚度30 nm,沉积速率0.5 Å/s,最终IJP浓度1×10^8个/ml 阅读提示:Methods中IJP fabrication小节 |
| 抗体功能化 | 抗体浓度0.1 mg/ml,抗体与IJP混合比例,quencher反应时间 阅读提示:Methods中Antibody functionalization on IJP小节 |
| IJP与样本孵育 | IJP工作浓度1×10^7个/ml,样本与IJP比例2:1,孵育时间1小时 阅读提示:Methods中IJP fabrication和荧光成像小节 |
| 荧光成像 | 物镜10×,帧率10 Hz,视频时长60–180秒,焦距约220 μm 阅读提示:Methods中Fluorescence imaging of IJPs小节 |
| 临床样本检测 | 样本量87例,分组为健康33、AD 4、GBM 16、CRC 22、PDAC 15,检测时间<60分钟,盲法设计 阅读提示:Results中Rapid screening of different diseases using sEVs in human plasma小节及Fig 5 |
| 正交验证 | UC离心条件:12,000 × g 20分钟,167,000 × g 1.5小时,167,000 × g 4.5小时;SPR芯片型号Series S CM5,抗体浓度0.1 mg/ml 阅读提示:Methods中UC和SPR-based characterization小节 |