PYGM双等位基因致病变异损害视网膜糖原分解导致一系列表型

Biallelic Pathogenic Variants in PYGM Impair Retinal Glycogenolysis Causing a Range of Phenotypes

作者信息Rowaida Hussein, Alaa Tayyib, Siying Lin, Deepika Parameswarappa, Maanik Mehta, Aditi Mohla, Kashif Ahmed, Anupreet Tumber, Erika Tavares, Elena R Schiff, Chantal Morel, Graeme Nimmo, Ammaji Rajala, Cynthia VandenHoven, Katelyn MacNeill, Heather MacDonald, Regan Klatt, Pearse A Keane, Michel Michaelides, Neal Sondheimer, Chiara Pizzamiglio, Nicola Dowd, Anthony G Robson, Andrew R Webster, Berge A Minassian, Evgueni Ivakine, Philippe P Monnier, Rosaline Quinlivan, Kamron Khan, Mark Tarnopolsky, Raju V S Rajala, Elise Héon, Tomas Pinós, Omar A Mahroo, Ajoy Vincent
PMID42725911
发布时间2026-09-01
DOI10.1167/iovs.67.11.18

实验完整度

包含家系基因组测序、65例患者队列、人视网膜IHC、RPE-1细胞功能、小鼠模型等多层次验证,含功能与机制验证。

主要模型

HMD家系(先证者II-6及患病同胞II-3) 65例GSDV患者队列 hTERT RPE-1细胞系 PygmR50*/R50*敲入小鼠

重点核对

HMD家系:全基因组测序(40×覆盖度)鉴定PYGM纯合变异c.148C>T; p.[Arg50*] GSDV队列:65例患者视网膜表型分级(类型1-4),基于眼底照相、FAF和OCT RPE-1细胞:葡萄糖饥饿诱导糖原分解,葡萄糖释放随时间测量 PygmR50*/R50*小鼠:4月龄和1年龄视网膜PAS染色及OS/IS比值定量 TRAP assay:小鼠RPE、视杆、视锥和Müller细胞中GP同工酶翻译mRNA定量

摘要

目的:PYGM(糖原肌磷酸化酶)双等位基因致病变异导致糖原贮积病V型(GSDV),这是一种骨骼肌疾病,据报道与遗传性黄斑营养不良(HMD)相关。本研究通过临床和功能分析探讨了PYGM在HMD及更广泛视网膜疾病中的作用。方法:对一个常染色体隐性HMD家系进行了表型分析和基因组测序。另外,分析了65例GSDV患者(平均年龄=51.7岁)的数据以评估视网膜受累情况。通过免疫组织化学、RT-qPCR和翻译核糖体亲和纯化实验评估了糖原磷酸化酶(GP)同工酶在视网膜中的表达。在视网膜色素上皮(RPE-1)细胞中研究了糖原分解。还检查了PygmR50*/R50*小鼠的视网膜切片。结果:基因组测序在先证者和患病同胞中鉴定出PYGM纯合致病性终止增益变异(NM_005609.4:c.148C > T; p.[Arg50*]),重新表型分析揭示了GSDV特征。65例GSDV病例中发现30例视网膜受累(23例双侧),在>60岁参与者(约2.6倍)和男性(约2倍)中患病率更高。PYGM表达定位于Müller胶质细胞和光感受器。在小鼠视网膜和RPE-1细胞中发现了细胞类型特异性的GP同工酶表达。RPE-1细胞表现出糖原分解。PygmR50*/R50*小鼠缺乏糖原积累,但表现出光感受器外节变薄,与Pygm是小鼠光感受器中表达的主要同工酶一致。结论:GSDV与视网膜病变中度相关,可能表现为非综合征性HMD,值得对患者进行视网膜监测,并将PYGM纳入视网膜营养不良基因面板。视网膜糖原分解的冗余性可能解释了患者较低的外显率和较高的年龄相关患病率。PygmR50*/R50*小鼠中观察到的光感受器变薄加强了人类HMD与GSDV之间的关联。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PYGM双等位基因致病变异是否导致遗传性黄斑营养不良和更广泛的视网膜疾病,以及其机制如何?
核心机制
PYGM功能缺失损害视网膜糖原分解,导致葡萄糖可用性降低,可能引起光感受器外节变薄;其他GP同工酶的冗余性可能部分代偿但最终不足。
主要证据
家系基因组测序发现PYGM纯合终止变异;65例GSDV队列中30例有视网膜病变;PYGM表达于Müller胶质细胞和光感受器;RPE-1细胞表现糖原分解;PygmR50*/R50*小鼠显示光感受器外节变薄而无糖原积累。
研究意义
GSDV与视网膜病变中度相关,可能表现为非综合征性HMD,支持将PYGM纳入视网膜营养不良基因面板并对GSDV患者进行视网膜监测。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

家系临床表型与基因组测序

鉴定疑似非综合征性HMD家系的遗传病因

对先证者及家系成员进行眼科表型分析(BCVA、眼底照相、FAF、OCT、ERG、PERG、EOG),提取DNA进行全基因组测序,变异过滤和共分离分析。

2

GSDV队列视网膜表型分析

评估GSDV患者中视网膜受累的患病率和特征

回顾性分析65例GSDV患者的视网膜影像(眼底照相、FAF、OCT),按类型1-4分级,进行基因型-表型关联统计。

3

PYGM在视网膜中的表达定位

确定PYGM在人类视网膜中的细胞类型表达

对人供体眼视网膜切片进行免疫组织化学染色,标记cone arrestin、rhodopsin和PYGM,共染glutamine synthetase。

4

GP同工酶在RPE和视网膜中的表达分析

探究GP同工酶在视网膜不同细胞类型中的表达模式及其潜在冗余性

在hTERT RPE-1细胞中进行RT-qPCR定量PYGM、PYGB、PYGL mRNA;使用RiboTag小鼠模型进行TRAP assay,结合细胞特异性Cre驱动,分离RPE、视杆、视锥和Müller细胞中翻译mRNA。

5

RPE-1细胞糖原分解功能验证

验证RPE细胞是否具有糖原分解能力

使用商业ELISA试剂盒定量hTERT RPE-1细胞糖原含量;在无葡萄糖DMEM中饥饿诱导糖原分解,用血糖仪测量培养基中葡萄糖释放随时间变化。

6

PygmR50*/R50*小鼠视网膜表型分析

在体内模型中验证Pygm缺失对视网膜结构和糖原积累的影响

对PygmR50*/R50*和野生型小鼠视网膜进行PAS和PAS-diastase染色,定量光感受器外节/内节(OS/IS)比值。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
糖原ELISA试剂盒MyBioSourceMBS729453
实验室细胞培养血糖仪GM-100BioReactor Sciences--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
家系基因组测序
测序平台Illumina NovaSeq,覆盖度40×,参考基因组GRCh37/hg19,变异过滤频率阈值<0.5%
阅读提示:Methods: Genome Sequencing and Genetic Analysis
GSDV队列视网膜分级
视网膜表型分类标准(类型1-4),黄斑区定义(上下血管弓之间,水平约9.5mm直径),影像中央判读
阅读提示:Methods: Retinal Evaluation in GSDV Cohort, Table 1
RPE-1细胞糖原分解
细胞密度(500万细胞),饥饿培养基(无葡萄糖DMEM),饥饿时间(0-6小时),葡萄糖测量方法
阅读提示:Methods: Glycogen and Glycogenolysis Assay, Figure 6e-f
TRAP assay
RiboTag小鼠与特定Cre品系杂交,免疫沉淀使用HA抗体,RT-qPCR靶向Pygm/Pygb/Pygl,细胞特异性标记基因
阅读提示:Methods: Retinal Expression of GP Isoenzymes, Figure 6c-d
PygmR50*/R50*小鼠视网膜分析
小鼠年龄(4月龄和1年龄),PAS和PAS-diastase染色条件,OS/IS比值测量方法,统计检验
阅读提示:Methods: Glycogen and Glycogenolysis Assay, Figure 7