mi3-VLP表达、纯化与解离-重组装
获得可用于溶液与SLB组装实验的mi3-VLP及亚基。
将pET28a-SpyCatcher003-mi3转化E. coli BL21(DE3) RIPL表达,经高压均质、硫酸铵沉淀、透析、过滤和Sephacryl S-500 HR尺寸排阻色谱纯化;用2.5 M硫氰酸胍解离VLP,再快速稀释至组装缓冲液启动重组装。
Molecular-level observation of the self-assembly of a virus-like particle
结合溶液与SLB二维组装热力学、动态MP及单分子捕获,体外验证功能与机制
mi3-VLP(60个mi3单体组成的十二面体病毒样颗粒) mi3-monomers与mi3-trimers 支撑脂质双层(SLB)上的二维组装体系 光刻图案化SLB单分子捕获(5 µm圆形陷阱)
mi3-VLP经2.5 M硫氰酸胍解离后100倍稀释至58–350 nM mi3-monomers,室温平衡30 min,验证解离-重组装 溶液MP测得mi3-monomer 38 ± 2 kDa、mi3-trimer 108 ± 1 kDa、VLP约2,030 ± 10 kDa;两个浓度下质量分数用于质量作用拟合 6xHis标签mi3-trimers通过Ni-NTA脂质锚定于SLB,表面密度控制由孵育时间实现,2 nM标记亚基加入后洗涤并平衡30 min SLB组装实验加入44 nM无标签mi3-subunits,实时MP记录4–15 min;单分子捕获实验使用88–100 nM 单分子捕获SLB陷阱直径5 µm,平衡约30 min,加入无标签mi3-subunits后连续采集5 min
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得可用于溶液与SLB组装实验的mi3-VLP及亚基。
将pET28a-SpyCatcher003-mi3转化E. coli BL21(DE3) RIPL表达,经高压均质、硫酸铵沉淀、透析、过滤和Sephacryl S-500 HR尺寸排阻色谱纯化;用2.5 M硫氰酸胍解离VLP,再快速稀释至组装缓冲液启动重组装。
定量溶液中mi3-monomer、mi3-trimer与完整VLP的分布及相互作用亲和力。
对58 nM与350 nM总mi3-monomer平衡组装反应进行标准MP landing assay,采集质量分布并拟合质量作用定律,得到KD(1)与KD(2)。
通过降低维度提高组装中间体丰度,定量mi3-trimer–trimer二维相互作用。
将6xHis标签mi3-trimers经Ni-NTA脂质锚定到SLB上,动态MP跟踪颗粒质量与扩散,拟合不同表面密度下的寡聚体分布。
以SLB五聚环为核,在接近平衡条件下沿组装路径采样中间体。
将表面五聚环与平衡的溶液mi3-monomer/trimer/VLP混合物接触,通过连续1 min动态MP记录质量分布随时间的演化,并与计算的巨正则自由能景观比较。
实时观测单个VLP组装过程中拓扑闭合中间体的停留时间与转变顺序。
在光刻图案化SLB陷阱中形成五聚环,加入无标签mi3亚基溶液,连续MP记录单个复合物质量-时间轨迹,提取状态停留时间。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 分子克隆与蛋白表达 | pET28a-SpyCatcher003(SC003)-mi3质粒 | -- | -- |
| 蛋白表达 | 大肠杆菌BL21(DE3) RIPL细胞 | Agilent | -- |
| 卡那霉素 | -- | -- | |
| 异丙基-β-D-硫代半乳糖苷 | -- | -- | |
| 蛋白纯化 | cOmplete EDTA-free蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- |
| 溶菌酶 | -- | -- | |
| HiPrep Sephacryl S-500 HR 16/60色谱柱 | GE Healthcare | -- | |
| ÄKTA Pure 25系统 | GE Healthcare | -- | |
| 蛋白浓缩 | 100 kDa截留分子量离心过滤管 | Millipore | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Pierce, Thermo Fisher Scientific | -- |
| VLP解离 | 硫氰酸胍 | -- | -- |
| 质量光度法 | TwoMP质量光度仪 | Refeyn Ltd. | -- |
| OneMP质量光度仪 | Refeyn Ltd. | -- | |
| DiscoverMP v2024R1 | Refeyn Ltd. | -- | |
| 载玻片准备 | 显微镜玻璃盖玻片24 × 50 mm | Menzel Gläser, VWR | 630-2603 |
| 质量光度法样本池 | 3 mm硅胶垫圈 | Grace Bio-Labs | GBL103250 |
| SLB制备 | DGS-NTA磷脂 | -- | -- |
| 18:1 PEG550磷脂 | -- | -- | |
| POPC磷脂 | -- | -- | |
| Vibra-Cell探头超声仪 | Sonics & Materials | -- | |
| Zepto等离子清洗机 | Diener Electronic | -- | |
| 硅胶垫圈 | Grace Bio-Labs | GBL103280 | |
| 组氨酸标签VLP制备 | Spytag-多组氨酸肽 | -- | -- |
| 4 ml 100 kDa截留分子量离心过滤管 | Amicon | -- | |
| SLB陷阱光刻 | PLL(20)-g[3.5]-PEG(2) | SuSoS Surface Technologies | -- |
| 掩模对准光刻机 | Suss | MJB4 | |
| 质量光度法校准 | 柠檬酸合酶 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 溶液自组装与MP表征 | mi3-VLP解离用2.5 M硫氰酸胍、孵育30–60 min,重组装100倍稀释至20 mM HEPES pH 7.4、138 mM NaCl,总mi3-monomer 58–350 nM,室温平衡30 min 阅读提示:Methods中Solution self-assembly experiments及MP measurements in solution |
| 溶液MP质量与浓度关系 | mi3-monomer 38 ± 2 kDa,mi3-trimer 108 ± 1 kDa,VLP 2,030 ± 10 kDa;每浓度3次技术重复;TwoMP视场4.3 × 10.9 μm²,有效帧率250 Hz 阅读提示:Fig. 1b–d图注与Methods中MP measurements in solution |
| SLB二维组装热力学 | SLB摩尔组成0.05 mM DGS-NTA、0.1 mM 18:1 PEG550、4.85 mM POPC;标记亚基2 nM,孵育控制表面密度;表面密度0.25、0.34、0.72 μm⁻²;OneMP 270 Hz 阅读提示:Methods中SLB preparation、Preparation of the histidine tag mi3-VLPs及Dynamic MP acquisition(Figs. 2和3) |
| 驱动VLP组装整体动力学 | 表面五聚环平衡30 min;加入无标签平衡溶液总mi3-monomer 88、44、29 nM;每条件3次技术重复;1 min视频250 Hz,约40 min;分析时间4–15 min 阅读提示:Fig. 3b,c图注与Methods中Dynamic MP measurements (Fig. 3) |
| 单分子捕获组装轨迹 | 5 μm圆形SLB陷阱;五聚环平衡约30 min;加入无标签mi3亚基88–100 nM;采集5 min,250 Hz;步长检测阈值70 kDa;最长观察时间300 s 阅读提示:Fig. 4a–c图注与Methods中Single-complex assembly experiments |