临床前大鼠模型建立与验证
评估吸入式siRNA在哮喘、COPD和急性肺损伤大鼠模型中的RAGE沉默效果及抗炎作用
使用Sprague-Dawley、Brown Norway和Wistar大鼠,通过吸入或气管内给药siRNA,然后以Alternaria alternata提取物、猪胰弹性蛋白酶(PPE)或LPS进行攻击,评估BALF炎症细胞、细胞因子、sRAGE及肺组织RAGE mRNA和蛋白水平。
Inhaled siRNA therapy targeting RAGE for pulmonary inflammation: a first-in-human randomized trial
包含大鼠、小鼠、猕猴等多种动物模型及人体临床试验,涵盖基因沉默、功能验证和机制验证。
Sprague-Dawley大鼠 Brown Norway大鼠 Wistar大鼠 C57BL/6NTac小鼠及RAGE基因敲除小鼠 食蟹猴(Macaca fascicularis) 健康志愿者 哮喘患者
大鼠吸入0.5 mg kg−1 PDD siRNA后肺RAGE mRNA沉默>90%持续超过8周,血清sRAGE下降至接近检测不到 食蟹猴吸入ARO-RAGE (1 mg kg−1 PDD)后肺组织RAGE mRNA沉默>90% 健康志愿者单次吸入ARO-RAGE (184 mg)后血清sRAGE最大平均降低76.6%±6.5%,BALF sRAGE降低90.2%±4.2% 哮喘患者重复吸入ARO-RAGE (184 mg)后血清sRAGE最大平均降低76.2%±12.0% 临床前和临床研究均未观察到临床相关的安全性问题
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估吸入式siRNA在哮喘、COPD和急性肺损伤大鼠模型中的RAGE沉默效果及抗炎作用
使用Sprague-Dawley、Brown Norway和Wistar大鼠,通过吸入或气管内给药siRNA,然后以Alternaria alternata提取物、猪胰弹性蛋白酶(PPE)或LPS进行攻击,评估BALF炎症细胞、细胞因子、sRAGE及肺组织RAGE mRNA和蛋白水平。
验证部分RAGE缺失对肺部炎症的保护作用
使用野生型、RAGE杂合敲除和纯合敲除小鼠,通过鼻内攻击Alternaria alternata提取物、屋尘螨提取物或重组IL-33,评估BALF炎症细胞和介质。
评估ARO-RAGE在非人灵长类中的药效学和靶点结合
成年食蟹猴通过面罩、头盔或气管内管吸入ARO-RAGE,检测肺组织RAGE mRNA、mRAGE蛋白和血清/BALF sRAGE水平。
评估ARO-RAGE在健康志愿者和哮喘患者中的安全性、耐受性、药代动力学和药效学
1/2a期随机双盲安慰剂对照试验,健康志愿者和哮喘患者接受单次或多次递增剂量ARO-RAGE吸入,监测不良事件、肺功能、PK参数和血清/BALF sRAGE水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型诱导 | 猪胰弹性蛋白酶 | Worthington Biochemical | LS00667 |
| 大肠杆菌0111:B4血清型脂多糖 | Sigma-Aldrich | L4391 | |
| 链格孢提取物 | Stagrallergy; Greer | XPM1D3A25 | |
| 屋尘螨提取物 | Stallergenes-Greer | XPB82D3A2.5 | |
| 重组小鼠IL-33 | Biolegend | 580506 | |
| ELISA | 大鼠RAGE酶联免疫吸附测定试剂盒 | R&D systems | DY1616 |
| 大鼠HMGB1酶联免疫吸附测定试剂盒 | Novus | NBP3-06661 | |
| 大鼠MMP2酶联免疫吸附测定试剂盒 | R&D systems | MMP200 | |
| 大鼠MMP12酶联免疫吸附测定试剂盒 | Novus | NBP3-06764 | |
| 大鼠MMP9酶联免疫吸附测定试剂盒 | Novus | RMP900 | |
| 蛋白质印迹 | 兔抗RAGE单克隆IgG克隆EPR21171 | Abcam | ab216329 |
| 小鼠抗大鼠中性粒细胞弹性蛋白酶单克隆IgG1克隆6B6G6 | Novus | NBP2-61657 | |
| 多克隆兔抗组蛋白H3(瓜氨酸R2+R8+R17) | Abcam | ab5103 | |
| RT–qPCR | TaqMan探针大鼠Ager | -- | Rn01525753_gl |
| TaqMan探针大鼠Muc5ac | -- | Rn01451252_m1 | |
| TaqMan探针大鼠Chi3l1 | -- | Rn01490608_m1 | |
| TaqMan探针大鼠B2M | -- | Rn00560865_m1 | |
| TaqMan探针食蟹猴AGER | -- | Mf02837619_g1 | |
| TaqMan探针食蟹猴ACTB | -- | Mf04354341_g1 | |
| 蛋白质定量 | Pierce BCA蛋白测定 | Thermo Scientific | A55865 |
| 蛋白质印迹 | No-stain蛋白标记试剂 | ThermoFisher Scientific | A44717 |
| 蛋白质定量 | 总蛋白定量试剂 | Invitrogen | A44449 |
| 细胞培养 | RNeasy Mini柱 | Qiagen | -- |
| cDNA合成 | Super Script IV VILO | Life Technologies | -- |
| qPCR | QuantStudio 7 Pro | ThermoFisher | -- |
| 细胞计数 | LUNA II自动细胞计数器 | Logos Biosystem | -- |
| 细胞染色 | Hemacolor | Sigma-Aldrich | -- |
| ELISA读板 | VersaMax酶标仪 | Molecular Devices | -- |
| 组织处理 | Excelsior AS组织处理器 | Epredia | -- |
| 免疫组化检测 | HRP偶联抗兔聚合物 | Leica Biosystems | DS9800 |
| 免疫组化显色 | DAB | Leica Biosystems | DS9800 |
| 临床给药 | PARI eFlow雾化器 | PARI | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 大鼠哮喘模型 | siRNA剂量(3 mg kg−1气管内给药,第1、8、29天)、Alternaria alternata提取物剂量(400 μg,第49天)、样本收集时间(第51天) 阅读提示:Methods中Rat studies部分及Fig. 1c–e图注 |
| 大鼠COPD/肺气肿模型 | siRNA剂量(0.5 mg kg−1 PDD吸入,第1、34天)、PPE剂量(20 U kg−1气管内给药,第81天)、样本收集时间(第83天) 阅读提示:Methods中Rat studies部分及Fig. 1f–k图注 |
| 大鼠急性肺损伤模型 | siRNA剂量(0.34 mg kg−1 PDD吸入,第1天)、LPS剂量(2.5 mg kg−1气管内给药,第42天)、样本收集时间(第43天) 阅读提示:Methods中Rat studies部分及Extended Data Fig. 4图注 |
| 食蟹猴药效学研究 | ARO-RAGE剂量(0.13–1.2 mg kg−1 PDD)、给药方式(面罩、头盔或气管内管)、检测时间点(给药后14–120天) 阅读提示:Methods中Pharmacology studies in cynomolgus macaques部分及Fig. 2图注 |
| 首次人体临床试验 | 受试者分组(健康志愿者和哮喘患者)、剂量水平(10–184 mg)、给药方案(单次或第1、29天重复)、主要终点(TEAE发生率) 阅读提示:Methods中First-in-human clinical trial部分及Fig. 3研究设计图 |