表观遗传液体活检实现高危神经母细胞瘤的通用型不依赖突变的分子监测

Epigenetic Liquid Biopsy Enables Universal Mutation-Agnostic Molecular Surveillance for High-Risk Neuroblastoma

作者信息Nurit Gal-Mark, Assaf Grunwald, Valid Gahramanov, Michal Hameiri-Grossman, Elena Shinderman-Maman, Dafna Gaas, Keren Shichrur, Jacques Mordoukh, Nino Oniashvili, Eva Chausky Barzakh, Aviv Sever, Shirah Amar, Shifra Ash, Yehudit Birger, Shai Izraeli, Yuval Ebenstein, Esther R Berko
PMID42384765
发布时间2026-09-15
DOI10.1158/1078-0432.CCR-26-0457

实验完整度

包含肿瘤组织ONT测序、cfDNA液体活检、独立队列验证及与拷贝数方法的比较验证

主要模型

7例高危神经母细胞瘤肿瘤样本 11例诊断时神经母细胞瘤cfDNA样本 7例患者的17份纵向cfDNA样本 8例健康供者cfDNA对照及3份PBL池

重点核对

肿瘤样本:7例高危神经母细胞瘤肿瘤,包含MYCN扩增和非扩增亚型 cfDNA样本:11例诊断时、17份纵向(7例患者),涵盖诊断、缓解、复发状态 对照样本:8例健康供者cfDNA(5例成人、3例儿童)和3份PBL池(各来自10人gDNA) 测序覆盖度:肿瘤中位32×,cfDNA中位2.8× 甲基化标志物:72个meNBL,其中25个整合入参考图谱用于去卷积

摘要

目的:儿童实体瘤的液体活检监测受限于低突变负荷和缺乏可追踪的基因组驱动因素。我们试图开发一种不依赖突变、基于甲基化的液体活检框架,实现对高危神经母细胞瘤的通用分子监测。实验设计:利用Oxford Nanopore Technologies对高危神经母细胞瘤肿瘤进行全基因组测序,我们将肿瘤来源的甲基化谱与涵盖正常人类细胞类型的综合图谱进行比较,鉴定出72个可在游离DNA(cfDNA)中可靠检测的神经母细胞瘤特异性差异甲基化区域(meNBL)。使用独立的神经母细胞瘤甲基化数据集验证标志物的稳健性和特异性,并与其它癌症类型的甲基化谱进行比较评估。我们通过整合一组25个meNBL将神经母细胞瘤确立为参考图谱中一个独特的甲基化实体,从而能够定量估计肿瘤来源的cfDNA。在诊断、缓解、复发和健康对照样本中评估了检测性能,并与基于突变和基于拷贝数的方法进行了比较。结果:神经母细胞瘤来源的cfDNA在诊断和复发时均可稳定检出,而在健康对照和确认缓解期间检测不到。基于甲基化的去卷积表现出高特异性,在对照中无可检测的背景信号,并且相对于基于拷贝数的肿瘤分数估计表现更优。纵向分析实现了复发的早期分子检测和可靠的疾病监测。结论:我们建立了一种稳健的、不依赖突变的基于甲基化的神经母细胞瘤液体活检策略,能够在所有高危患者(包括缺乏可追踪基因组改变的患者)中实现准确、定量的疾病监测。该方法支持基于甲基化的cfDNA去卷积作为儿童精准肿瘤学中广泛适用平台的临床转化。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否开发一种不依赖突变、基于甲基化的液体活检框架,实现对高危神经母细胞瘤的通用分子监测?
核心机制
神经母细胞瘤具有独特的DNA甲基化模式,通过整合肿瘤特异性甲基化标志物入人类细胞类型甲基化图谱,可利用去卷积定量检测cfDNA中的神经母细胞瘤来源DNA。
主要证据
在7例高危神经母细胞瘤肿瘤中通过ONT测序鉴定72个meNBL,在诊断和复发cfDNA中检出神经母细胞瘤来源cfDNA,健康对照和缓解期未检出,且与基于突变的ddPCR结果一致,性能优于ichorCNA拷贝数估计。
研究意义
该方法支持基于甲基化的cfDNA去卷积作为儿童精准肿瘤学中广泛适用的平台,可用于所有高危神经母细胞瘤患者的准确、定量疾病监测,包括缺乏可追踪基因组改变的患者。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

肿瘤甲基化图谱建立

鉴定神经母细胞瘤特异性差异甲基化区域

对7例高危神经母细胞瘤肿瘤进行ONT全基因组测序,比较肿瘤甲基化谱与36种正常组织参考图谱,鉴定DMRs。

2

meNBL标志物筛选与验证

从DMRs中筛选可在cfDNA中可靠检测的神经母细胞瘤特异性标志物

从188个DMRs中筛选出72个meNBLs,排除高甲基化PBL区域和覆盖不足区域,使用TARGET EPIC阵列数据和独立ONT队列验证。

3

cfDNA去卷积检测

定量检测cfDNA中神经母细胞瘤来源DNA

将25个meNBL整合入参考图谱,使用uxmtools进行细胞来源去卷积,计算肿瘤分数,并与ichorCNA和突变VAF比较。

4

纵向疾病监测验证

评估meNBL液体活检在疾病监测中的准确性

对2例代表性患者(MYCN扩增和非扩增)进行纵向cfDNA分析,与MIBG成像、尿液儿茶酚胺和ddPCR结果比较。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
QIAamp DNA微量试剂盒QIAGEN--
Qubit Flex荧光计Invitrogen, Thermo Fisher ScientificRRID:SCR_020553
1×双链DNA高灵敏度检测试剂盒Invitrogen, Thermo Fisher Scientific--
EDTA真空采血管BD Biosciences--
PAXgene血液ccfDNA采集管QIAGEN--
QIAamp循环核酸试剂盒QIAGEN--
Qiavac 24系统QIAGEN--
4200 TapeStation系统Agilent Technologies--
连接测序试剂盒V14ONTSQK-LSK114
天然条形码试剂盒24 V14ONTSQK-NBD114.24
R10.4.1流动池ONTFLO-MIN114
QX200微滴式数字PCR系统Bio-Rad LaboratoriesRRID:SCR_019707
ALK R1275Q检测试剂 dHsaCP250606768Bio-RaddHsaCP250606768
ALK R1275Q检测试剂 dHsaCP250606769Bio-RaddHsaCP250606769
C1000热循环仪Bio-Rad Laboratories--
Oncomine儿童癌症研究检测panelIon Torrent, Thermo Fisher Scientific--
Ion Chef系统Thermo Fisher ScientificRRID:SCR_026507
SuperScript VILO逆转录酶Thermo Fisher Scientific--
Ion Torrent S5测序仪Thermo Fisher ScientificRRID:SCR_027446
CytoScan HD芯片Affymetrix--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者队列与样本
样本来源:Schneider Children’s Medical Center of Israel(2016–2025);纳入7例高危神经母细胞瘤肿瘤、11例诊断cfDNA、7例患者17份纵向cfDNA;对照:8例健康供者cfDNA(5成人3儿童)、3份PBL池(各10人gDNA)
阅读提示:见Materials and Methods中Patient cohort and samples小节及Supplementary Tables S1–S3
DNA提取与cfDNA分离
肿瘤gDNA来自新鲜冷冻组织,使用QIAamp DNA Micro Kit;cfDNA从400 μL–3.5 mL血浆中提取,使用QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit;血浆分离采用1600 g离心10分钟两次,第二次离心20000 g 10分钟;肿瘤含量≥40%
阅读提示:见Materials and Methods中DNA isolation小节
文库构建与测序
使用Ligation Sequencing Kit V14或Native Barcoding Kit 24 V14;gDNA最低输入1.5 μg,cfDNA最低8 ng;测序在P2Solo设备使用R10.4.1 Flow Cells;肿瘤中位覆盖度32×,cfDNA中位2.8×
阅读提示:见Materials and Methods中Library preparation and nanopore sequencing小节及Supplementary Tables S1–S3
甲基化标志物鉴定与去卷积
使用wgbstools进行DMR鉴定,参数–min_cpg 3 –max_bp 10000;DMR显著性阈值nominal P<0.05且Δβ在top third percentile;从188个DMRs筛选出72个meNBLs,再选择25个整合入参考图谱;使用uxmtools build和deconv进行去卷积
阅读提示:见Materials and Methods中Neuroblastoma-specific marker identification and selection及Deconvolution小节
ddPCR验证
使用QX200 ddPCR System;ALK R1275Q检测退火温度55°C,MYCN/ALK拷贝数检测退火温度58°C;每次运行包含无模板、阳性和阴性对照;使用QX Manager Software version 2.2分析
阅读提示:见Materials and Methods中ddPCR小节