优化缺氧模拟小分子以增强人脱落乳牙干细胞血管生成特性

Optimal Hypoxia Mimetic Small Molecules for Enhancing Angiogenic Properties of Stem Cells From Human Exfoliated Deciduous Teeth

作者信息Hong Wang, Jiawei Liu, Xintao Yang, Mohamad Koohi-Moghadam, Shuting Gao, Yuanyuan Han, Dineshi Sewvandi Thalakiriyawa, James Kit Hon Tsoi, Yanqi Yang, Waruna Lakmal Dissanayaka
PMID42227314
发布时间2026-10
DOI10.1111/iej.70191

实验完整度

含体外细胞模型、体内SCID小鼠Matrigel plug模型及RNA测序,并有siRNA和venetoclax机制验证。

主要模型

SHED细胞系(AllCells LLC, passages 4–7) HUVECs(ScienCell, passages 3–6) SCID/CB17小鼠Matrigel plug模型 PHD2敲低SHED转录组数据

重点核对

SHED处理浓度:TW-37 10 μM、ML228 1 μM、CPX 7 μM,处理24 h CoCl2和DFO的浓度梯度及细胞毒性剂量 体内Matrigel plug实验:SCID小鼠,n=6 plugs/组,植入7天 HIF-1α敲低使用siRNA(4390824)转染24 h后加TW-37处理24 h 所有体外实验至少三个独立生物学重复(n=3)

摘要

目的:缺氧预处理细胞在再生治疗中具有前景,但确定有效且安全的临床方法仍具挑战。我们旨在确定能稳定缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)的最佳缺氧模拟小分子(SM)及其用于人脱落乳牙干细胞(SHED)缺氧预处理的剂量,并检查其对SHED血管生成特性的影响。方法:采用整合转录组学、生物信息学和实验验证的系统方法。将脯氨酰羟化酶结构域2敲低SHED的RNA测序数据与Connectivity Map比对,以识别最接近模拟该缺氧特征的前3种SM。为建立因果关系和机制,使用了选择性Bcl-2抑制剂venetoclax和HIF-1α siRNA。测试候选化合物和常规试剂(CoCl2、去铁胺)对HIF-1α表达、血管内皮生长因子(VEGF)分泌和细胞活力的影响。通过体外Matrigel和球体发芽实验评估促血管生成功能。使用SCID小鼠Matrigel plug实验评估体内血管生成潜力和安全性(TUNEL/Ki67)。额外RNA测序比较TW-37和CoCl2处理的SHED。结果:CoCl2和去铁胺增加HIF-1α和VEGF,但在有效剂量下表现出显著细胞毒性。TW-37、ML228和CPX在无毒剂量(分别为10 μM、1 μM和7 μM)稳定HIF-1α,并维持VEGF分泌。SM处理的SHED-CM在体外促进内皮管形成和发芽,其中TW-37表现出最强的促血管生成效应,并确认其依赖于HIF-1α且独立于Bcl-2抑制。SM预处理的SHED(24 h)产生持续VEGF释放和强劲的体外血管生成活性。体内Matrigel plug实验显示,含有TW-37、ML228或CPX预处理的SHED的plug中血管密度显著增加。特别是,TW-37预处理的SHED显示血管密度增加、Ki67阳性增殖增强,且凋亡未增加(TUNEL)。RNA测序显示,TW-37上调与血管生成、代谢适应和牙本质生成相关的基因,表明比CoCl2更有利的特征。结论:TW-37(10 μM)、ML228(1 μM)和CPX(7 μM)是该概念验证模型中有前景的缺氧模拟方案。TW-37通过特定的、可逆的HIF-1α依赖机制发挥作用,在再生牙髓学中展示出血管生成增强和初步安全之间的良好平衡。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
确定能稳定HIF-1α并增强SHED血管生成特性的最佳缺氧模拟小分子及其剂量。
核心机制
TW-37、ML228和CPX通过稳定HIF-1α,上调VEGF分泌及下游糖酵解基因(HK1、HK2、LDHA),从而促进SHED的血管生成;TW-37的作用依赖于HIF-1α且独立于Bcl-2抑制。
主要证据
体外实验:Western blot检测HIF-1α,ELISA检测VEGF,Matrigel和spheroid-sprouting实验评估血管生成;体内实验:SCID小鼠Matrigel plug实验显示血管密度增加和CD31阳性细胞增多;机制验证:siHIF-1α和venetoclax实验。
研究意义
TW-37、ML228和CPX可作为SHED缺氧预处理的潜在方案,其中TW-37表现出最佳促血管生成效果和初步安全性,支持‘hit-and-run’小分子预处理在再生牙髓学中的转化潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估常规缺氧模拟剂对SHED的效果和毒性

确定CoCl2和DFO是否能有效稳定HIF-1α并促进VEGF分泌,同时评估其细胞毒性。

用不同浓度CoCl2和DFO处理SHED,通过Western blot检测HIF-1α,ELISA检测VEGF,CCK-8检测细胞活力。

2

通过生物信息学筛选最佳缺氧模拟小分子

识别能模拟PHD2敲低SHED转录组特征的候选小分子。

对PHD2敲低SHED进行RNA测序,差异表达基因与cMAP数据库比对,根据连接分数排序。

3

验证候选小分子对HIF-1α和VEGF的剂量效应

确定TW-37、ML228和CPX稳定HIF-1α和促进VEGF分泌的最佳浓度。

用不同浓度小分子处理SHED 6 h和24 h,Western blot检测HIF-1α,ELISA检测VEGF,并收集条件培养基用于后续实验。

4

评估小分子对SHED细胞活力和死亡的影响

确定小分子在有效浓度下的细胞毒性及安全性。

用CCK-8检测细胞活力,Live/Dead assay检测细胞死亡,观察24 h、48 h、72 h时间点。

5

体外评估小分子预处理SHED的条件培养基对血管生成的影响

验证小分子处理的SHED是否能通过旁分泌作用促进内皮细胞管形成和发芽。

收集小分子处理或预处理SHED的条件培养基,用于HUVECs的Matrigel管形成实验和纤维蛋白球体发芽实验。

6

体内评估小分子预处理SHED的血管生成潜力

验证小分子预处理的SHED在体内是否促进血管生成并评估安全性。

SHED经小分子预处理24 h后与Matrigel混合注射到SCID小鼠皮下,7天后 harvest plugs,进行H&E、CD31免疫组化、TUNEL和Ki67染色。

7

比较TW-37与CoCl2处理的SHED转录组差异

探究TW-37是否具有优于CoCl2的促血管生成和代谢适应特性。

用10 μM TW-37或0.5 mM CoCl2处理SHED 3 h和24 h,进行RNA测序和生物信息学分析(ssGSEA、GO、KEGG)。

8

验证TW-37促血管生成效应的HIF-1α依赖性和Bcl-2独立性

确定TW-37的作用是否通过HIF-1α而非Bcl-2抑制。

用venetoclax(Bcl-2抑制剂)和siHIF-1α处理SHED,检测HIF-1α蛋白、下游基因(HK1、HK2、LDHA)mRNA和VEGF分泌。

9

评估TW-37预处理的洗脱效应和体内安全性

检查TW-37预处理是否为可逆的细胞静止效应,并评估体内安全性。

SHED用10 μM TW-37预处理24 h,洗脱后培养7天,CCK-8检测细胞活力;体内Matrigel plug进行TUNEL和Ki67染色。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-改良Eagle培养基----
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
内皮细胞培养基ScienCell--
内皮细胞生长补充剂----
去铁胺Sigma Aldrich--
环吡酮胺Sigma Aldrich--
ML228R&D Systems--
TW-37Beyotime--
维奈托克Selleck--
RIPA裂解液Thermo Fisher Scientific--
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物Thermo Fisher Scientific--
BCA蛋白检测试剂盒Thermo Fisher Scientific--
PVDF膜GE Healthcare Life Science--
HIF-1α一抗BD Biosciences--
GAPDH一抗Cell Signalling Technology--
Bcl-2一抗Santa Cruz--
β-actin一抗Santa Cruz--
ECL化学发光HRP底物试剂盒WesternBrightTM, Advansta--
人VEGF DuoSet ELISA试剂盒R&D Systems--
CCK-8试剂APExBIO--
活/死细胞检测试剂盒Thermo Fisher Scientific--
Matrigel基质胶Corning--
μ-Slide 15孔板Ibidi--
纤维蛋白原Sigma Aldrich--
抑肽酶Sigma Aldrich--
凝血酶Sigma Aldrich--
兔抗人CD31Abcam--
兔抗小鼠CD31Abcam--
Ki67抗体Proteintech China--
小鼠和兔特异性HRP/DAB检测IHC试剂盒Abcam--
RNAfast200试剂盒Fastagen--
TB Green Premix试剂盒Takara--
预制备siRNAThermo Fisher Scientific4390824
Lipofectamine RNAiMAX试剂Invitrogen--
Trizol试剂Thermo Fisher Scientific--
原位细胞死亡检测试剂盒Roche--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小分子处理SHED
TW-37浓度10 μM、ML228浓度1 μM、CPX浓度7 μM;处理时间24 h;细胞汇合度80%
阅读提示:参见Methods 2.2和2.4小节,以及Figure 2C
体内Matrigel plug实验
SCID/CB17小鼠,雄性,6周龄,20-40 g,n=12;每组6个plug;SHED数量3×10^6;Matrigel体积400 μL;植入7天;随机分组
阅读提示:参见Methods 2.11小节和Figure 5
HIF-1α敲低
siRNA序列4390824,阴性对照4390843;转染后24 h加TW-37处理24 h;Lipofectamine RNAiMAX用量未明确
阅读提示:参见Methods 2.15小节和Figure 7D-F
细胞活力检测
CCK-8检测时间点24、48、72 h;活/死染色时间点24、48、72 h;阳性对照70%乙醇
阅读提示:参见Methods 2.6、2.8小节及Figure 1I,J和Figure 3
体外管形成和发芽实验
HUVECs种子密度未明确;Matrigel体积10 μL;观察时间点2、6、12、24 h;发芽实验HUVECs 8×10^4 cells/mL,spheroid培养24 h
阅读提示:参见Methods 2.9和2.10小节及Figure 4