样本收集与临床评估
收集不同民族的MDD患者和健康对照外周血样本,评估临床指标差异。
从贵州医科大学第二附属医院收集334名MDD患者和300名健康对照的临床数据;对转录组测序亚组(每组5-10人)采集外周血于PAXgene RNA管。
Transcriptomic characteristics of plasma from Chinese ethnic minority patients with major depressive disorder
具备转录组测序、RT-qPCR验证及统计分析,但缺乏功能实验和动物模型验证,样本量小,属于探索性研究。
汉族MDD患者外周血样本 苗族MDD患者外周血样本 侗族MDD患者外周血样本 健康对照外周血样本
MDD诊断标准:DSM-5,HAMD-24评分>17 样本分组:Han-MDD(n=7), Miao-MDD(n=10), Dong-MDD(n=10), Han-HC(n=5), Miao-HC(n=5), Dong-HC(n=5) RT-qPCR验证分组:Miao-MDD(n=7), Miao-HC(n=5), Dong-MDD(n=3), Dong-HC(n=5) DEG筛选阈值:|log2FC|>1,p<0.05 生物标志物筛选标准:LASSO回归,AUC>0.7,组间差异显著(P<0.05)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
收集不同民族的MDD患者和健康对照外周血样本,评估临床指标差异。
从贵州医科大学第二附属医院收集334名MDD患者和300名健康对照的临床数据;对转录组测序亚组(每组5-10人)采集外周血于PAXgene RNA管。
比较不同民族MDD患者与健康对照的差异表达基因,并鉴定民族特异性及共享通路。
提取外周血总RNA,构建RNA-seq文库,在Illumina NovaSeq 6000平台测序;通过生物信息学分析鉴定DEGs并进行GO和KEGG富集分析。
筛选并验证能区分MDD与HC的民族特异性潜在生物标志物。
利用LASSO回归、ROC分析筛选候选基因,并通过RT-qPCR在独立的苗族和侗族样本中进行表达验证。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 样本采集 | BD PAXgene® RNA管 | BD | -- |
| 转录组测序 | Trizol试剂 | -- | -- |
| NEBNext® Ultra™ RNA文库制备试剂盒 | NEB | E7530L | |
| Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- | |
| RT-qPCR | Goldenstar™ RT6 cDNA合成试剂盒Ver.2 | Tsingke | TSK302M |
| 2×T5快速qPCR预混液(SYBR Green I) | Tsingke | TSE202 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 研究对象与分组 | 样本来源、MDD诊断标准、HAMD-24评分、年龄、性别、民族分组 阅读提示:Materials and Methods, 研究人群; Table 1 |
| 样本采集 | 采血前空腹时间、PAXgene管使用体积、室温放置时间、储存温度 阅读提示:Materials and Methods, 研究人群 |
| RNA-seq测序 | RNA提取方法、文库制备试剂盒、测序平台、测序深度、比对和定量软件及参数 阅读提示:Materials and Methods, 转录组测序 |
| 差异表达与富集分析 | DEG筛选阈值、P值是否校正、GO和KEGG富集分析阈值 阅读提示:Materials and Methods, 功能富集分析 |
| 生物标志物筛选 | LASSO回归参数、交叉验证方法、AUC阈值 阅读提示:Materials and Methods, 生物标志物筛选方法 |
| RT-qPCR验证 | 样本量、引物序列、内参基因、相对定量方法 阅读提示:Materials and Methods, RT-qPCR; Table 3 |