蛋白质生产与表达系统验证
为ChIP–seq和SELEX实验生成特异表达的转录因子蛋白,确保其功能活性。
使用三种系统表达蛋白质:FLiP-in HEK293细胞系(强力霉素诱导24小时)、PURExpress T7 IVT系统(基于麦胚提取物的SP6驱动IVT系统)。
An expanded codebook of human transcription factor DNA-binding specificity
包含多平台体外与体内实验(HT-SELEX、SMiLE-seq、PBM、ChIP–seq、GHT-SELEX),鉴定基序并验证其与细胞结合位点和保守性,功能验证充分。
HEK293细胞系 体外蛋白质表达系统(PURExpress T7重组IVT系统;SP6驱动的麦胚提取物IVT系统) 人类基因组位点 FANTOM5组织与细胞样本
332个等位基因表达数量性状位点,其中74%的等位基因特异性结合与PWM预测一致 HT-SELEX、GHT-SELEX、ChIP–seq和SMiLE-seq等实验平台 对177个成功转录因子进行多平台一致性验证以确定代表性PWM
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
为ChIP–seq和SELEX实验生成特异表达的转录因子蛋白,确保其功能活性。
使用三种系统表达蛋白质:FLiP-in HEK293细胞系(强力霉素诱导24小时)、PURExpress T7 IVT系统(基于麦胚提取物的SP6驱动IVT系统)。
利用随机序列或基因组DNA片段,在体外测定转录因子的内在DNA序列偏好。
进行HT-SELEX、GHT-SELEX、SMiLE-seq和PBM实验,每种实验根据TF类型和标签选择适当的表达系统。
在活细胞环境中确定转录因子的实际结合位点,评估基序在体内的应用。
在HEK293细胞中进行ChIP–seq实验,使用诱导型GFP标记的转基因,并结合GHT-SELEX和基序匹配分析。
通过跨平台一致性验证,选择高准确性、可复现的转录因子基序作为代表。
从多个实验平台产生候选PWM,使用AUROC和Jaccard指数等指标评估其预测能力,并进行专家评审。
确定转录因子结合位点的进化保守性及其与基因组特征、基因表达的关系。
将ChIP–seq峰、GHT-SELEX峰和PWM匹配进行三重优化重叠(TOP)分析,计算位点保守性,并与启动子、CpG岛和其他功能元件进行关联分析。
评估转录因子结合位点中的序列变异对等位基因偏好、疾病关联及基因表达的影响。
分析ChIP–seq和GHT-SELEX中的等位基因特异性结合,鉴定疾病相关SNP及表达QTL,通过MARA分析基序对基因表达的预测作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白表达 | 多西环素 | -- | -- |
| 染色质免疫沉淀测序 | 抗eGFP抗体 (ab290) | Abcam | -- |
| Dynabeads蛋白G磁珠 | ThermoFisher | 10004D | |
| HT-SELEX | 蛋白G琼脂糖珠 | Cytiva | 28-9670-70 |
| 蛋白表达 | PURExpress体外蛋白质合成试剂盒 | NEB | E6800L |
| 麦胚提取物 | Promega | L3260 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 蛋白表达 | 表达系统类型,诱导条件(如强力霉素浓度和时间) 阅读提示:Methods: Protein production |
| DNA结合基序鉴定 | 实验平台,蛋白质标签(如GST、eGFP),DNA库类型 阅读提示:Methods: DNA-binding assays; Figure 1 |
| ChIP-seq实验 | 细胞系,抗体类型和用量,免疫沉淀条件 阅读提示:Methods: DNA-binding assays |
| 数据分析峰集处理 | 峰检出方法、用于合并评估的随机背景生成、亚阈值 阅读提示:Methods: Post-evaluation peak processing and other sections |
| 基序保守性分析 | TOP位点的定义(各数据集阈值)、用于保守性计算的物种数、统计检验类型 阅读提示:Methods: TOP and CTOP peak set analyses; Figure 3 |
| 变异分析 | 有关人类参考基因组或变异检测参数和等位基因读段计数的具体实现 阅读提示:Methods: Variant calling and ASB calling |