TKI筛选与ICD标志物检测
从临床使用的TKIs中筛选出能有效诱导HCC细胞ICD的候选药物。
使用不同浓度的五种TKIs处理MHCC97-H和Hepa1-6细胞,通过免疫荧光、流式细胞术、ELISA和免疫印迹检测细胞表面CALR暴露、HMGB1释放、ATP释放等ICD标志物。
Autophagy-promoted immunogenic cell death elicited by tyrosine kinase inhibitor orchestrates a synergistic immunotherapeutic microenvironment in hepatocellular carcinoma
包含体外细胞系筛选、PDOTS患者样本验证、机制研究、多种体内模型及CyTOF等多层级验证。
MHCC97-H 细胞系 Hepa1-6 细胞系 患者来源类器官肿瘤球体(PDOTS) 小鼠皮下及原位HCC模型
安罗替尼剂量:5 mg/kg,灌胃给药 抗PD-1抗体剂量:200 μg,腹膜内注射 3-MA剂量:文中未明确说明 二甲双胍剂量:文中未明确说明 小鼠模型:6周龄雄性C57BL/6J小鼠,皮下注射5×10⁶ Hepa1-6细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从临床使用的TKIs中筛选出能有效诱导HCC细胞ICD的候选药物。
使用不同浓度的五种TKIs处理MHCC97-H和Hepa1-6细胞,通过免疫荧光、流式细胞术、ELISA和免疫印迹检测细胞表面CALR暴露、HMGB1释放、ATP释放等ICD标志物。
在患者来源的异质性样本中验证安罗替尼的ICD诱导效果。
从20例原发性和15例新辅助治疗HCC样本制备PDOTS,并用安罗替尼处理,检测上清中HMGB1、HSP70、HSP90释放水平。
阐明安罗替尼诱导ICD的分子机制,验证ER应激与自噬通路的作用。
通过RNA-seq、GSEA、Western blot、免疫荧光及药理学/遗传学干预,检测ER应激和自噬标志物,并评估抑制或敲低这些通路对DAMP释放的影响。
验证安罗替尼诱导的ICD是否能促进DC迁移、活化和CD8+ T细胞启动。
建立肿瘤细胞-BMDC-CD8+ T细胞三重共培养系统,使用安罗替尼或阿霉素预处理的Hepa1-6条件培养基处理BMDCs,检测DC迁移、激活标志物以及后续CD8+ T细胞的激活和IFN-γ产生。
评估安罗替尼单药及联合治疗在体内的抗肿瘤疗效及其对免疫微环境的影响。
在皮下和原位HCC模型中,给予安罗替尼及/或抗PD-1、二甲双胍等治疗,通过免疫组化、多重免疫荧光、CyTOF等检测肿瘤生长、免疫细胞浸润和功能状态。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 药物处理 | 3-甲基腺嘌呤 | MedChemExpress | HY-19312 |
| 巴弗洛霉素A1 | MedChemExpress | HY-100558 | |
| Azoramide | MedChemExpress | HY-18705 | |
| ISRIB | MedChemExpress | HY-12495A | |
| 动物实验 | 抗小鼠PD-1体内抗体 | BioXCell | BE0146 |
| 抗小鼠CD8α体内抗体 | BioXCell | BE0061 | |
| 细胞色素c | Aladdin | C301837-100 mg | |
| 阳性对照 | 阿霉素 | MedChemExpress | HY-15142 |
| PDOTS制备 | IV型胶原酶 | STEMCELL | -- |
| 分散酶I | Sigma-Aldrich | -- | |
| 红细胞裂解液 | Solarbio | -- | |
| BMDC培养 | 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | -- | -- |
| 白细胞介素-4 | -- | -- | |
| MojoSort™ 小鼠CD11c纳米磁珠 | BioLegend | -- | |
| 流式分析 | CellTrace CFSE细胞增殖染料 | -- | -- |
| CyTOF分析 | 小鼠肿瘤解离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-096-730 |
| Helios质谱流式细胞仪 | Fluidigm | -- | |
| 免疫荧光 | Leica共聚焦荧光显微镜 | Leica | -- |
| Olympus FV-3000共聚焦显微镜 | Olympus | -- | |
| 切片扫描 | Leica VERSA8荧光切片扫描仪 | Leica | -- |
| qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| SYBR Green预混液试剂盒 | Takara | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 细胞增殖检测 | 细胞计数试剂盒-8(CCK-8) | Yeasen | -- |
| ELISA | Quantikine人ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- |
| 蛋白免疫印迹 | 抗ATG5抗体 | Cell Signaling Technology | 12994 |
| 抗LC3A/B抗体 | Cell Signaling Technology | 12741 | |
| 抗HMGB1抗体 | Abcam | ab79823 | |
| 免疫组化 | 抗CD8抗体 | Proteintech | 66868-1-Ig |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞系培养 | MHCC97-H和Hepa1-6细胞的培养条件(培养基、血清浓度) 阅读提示:Materials and methods: Cell culture |
| 药物处理 | 安罗替尼浓度、处理时间、溶剂 阅读提示:Materials and methods: Antibodies and reagents; Results: ICD induction in HCC |
| ER应激/自噬抑制 | Azoramide、ISRIB、3-MA、Bafilomycin A1的浓度及预处理时间 阅读提示:Materials and methods: Antibodies and reagents; Results: The ER stress-autophagy axis |
| 体外共培养系统 | BMDC培养时间、细胞因子浓度、共培养比例、血清来源 阅读提示:Materials and methods: Bone marrow-derived dendritic cell (BMDC) culture and stimulation |
| 动物模型 | 小鼠品系、周龄、性别、细胞接种数量、给药剂量与途径、处理时间点 阅读提示:Materials and methods: Animal models |
| CyTOF分析 | 抗体面板、固定和透化条件、细胞染色方案 阅读提示:Materials and methods: CyTOF analyses; Supplementary Table S2 |