MPXV分支IIb基因组BAC克隆
获得完整MPXV基因组的可操作克隆,以便在细菌中进行遗传修饰。
利用STAR克隆方法,在BSL-3条件下感染MA-104细胞并收获HMW DNA,经Cas9切割后与线性化载体(含BAC和酵母着丝粒序列、同源臂和eGFP报告基因)共转化酵母,随后转移至E. coli,通过限制性酶切和测序验证克隆完整性。
Molecular cloning of a monkeypox virus clade IIb genome and construction of an attenuated mutant for basic and translational research
包含体外细胞培养复制动力学、CAST/EiJ小鼠体内感染模型、器官病毒载量及T细胞免疫应答(ELISpot)等多个独立证据层级,且包含功能验证(复制、毒力)与机制关联(TK基因功能)。
MA-104细胞 Vero细胞 HaCaT细胞 CAST/EiJ小鼠皮内感染模型
MPXV分支IIb分离株MPXV-BY-IMB25241作为病毒亲本,BAC克隆中载体插入位点(OPG084和OPG085之间)及loxP位点介导的载体切除 TK基因(OPG101)缺失:400 bp(75% ORF),保留3'端25%以避免影响下游OPG102表达 病毒感染剂量:2×10^5 PFU/鼠,经尾皮划痕途径接种 动物模型:CAST/EiJ小鼠,感染后12天或8天观察体重、临床评分和皮肤病变,并在第8天检测器官病毒滴度 人血清中和实验和抗病毒药物测试(brincidofovir和acyclovir)的应用
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得完整MPXV基因组的可操作克隆,以便在细菌中进行遗传修饰。
利用STAR克隆方法,在BSL-3条件下感染MA-104细胞并收获HMW DNA,经Cas9切割后与线性化载体(含BAC和酵母着丝粒序列、同源臂和eGFP报告基因)共转化酵母,随后转移至E. coli,通过限制性酶切和测序验证克隆完整性。
构建减毒突变体,为研究提供致病性降低的病毒工具。
通过en passant BAC重组工程在E. coli中删除OPG101基因(TK)的400 bp序列(75% ORF),并验证缺失和序列正确性。
确认BAC克隆和TK缺失不影响病毒在培养细胞中的复制能力。
使用FPXV辅助病毒拯救病毒,然后比较WT和TK缺失病毒在MA-104、Vero和HaCaT细胞中的多步复制动力学,并进一步评估载体切除前后的复制情况。
评估TK缺失突变体相对于野生型病毒在体内的减毒程度和疾病进程差异。
通过尾皮划痕感染CAST/EiJ小鼠,监测体重、临床症状和尾部皮肤病变,并在感染后第8天分析器官病毒滴度和病毒基因组拷贝,以及第12天分析T细胞免疫应答。
证明减毒病毒可用于诊断中和抗体检测和抗病毒药物筛选。
利用WT和TK缺失病毒进行噬斑减少中和试验(PRNT50)检测人血清样本中的中和抗体,并进行噬斑减少试验评估药物敏感性(brincidofovir和acyclovir)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Sigma | -- |
| MEM培养基 | Sigma | -- | |
| 胎牛血清 | Capricorn | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 基因组编辑 | Cas9核酸酶 | IDT | -- |
| 质粒构建 | pCC1BAC-his3载体 | -- | -- |
| pEPkan-S质粒 | Addgene | 41017 | |
| pLIX-402慢病毒载体 | Addgene | 41394 | |
| DNA提取 | NucleoBond Xtra Midi试剂盒 | Macherey-Nagel | -- |
| NucleoMag组织试剂盒 | Machery-Nagel | -- | |
| 转染 | X-tremeGENE HP DNA转染试剂 | Sigma | -- |
| 病毒拯救 | 鸡痘病毒(辅助病毒) | -- | -- |
| 动物实验 | CAST/EiJ小鼠 | Jackson Laboratories | -- |
| 免疫检测 | 泛痘病毒肽池 | JPT Peptide Technologies | -- |
| 小鼠IFN-γ ELISpot试剂盒 | Mabtech | -- | |
| ELISpot分析 | ELISpot读板仪 | Cellular Technology Ltd. | -- |
| 免疫检测 | VACV(Lister株)兔多克隆抗体 | OriGene | -- |
| HRP标记的山羊抗兔抗体 | Biozol | -- | |
| TrueBlue过氧化物酶底物 | SeraCare | -- | |
| qPCR | Luna通用探针qPCR预混液 | New England Biolabs | -- |
| CFX96 Touch实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- | |
| 测序 | NextSeq2000测序平台 | Illumina | -- |
| 纳米孔长读长测序 | Eurofins | -- | |
| 抗病毒药物测试 | 布林西多福韦 | MedChemExpress | -- |
| 阿昔洛韦 | MedChemExpress | -- | |
| 动物组织匀浆 | TissueLyser-II组织匀浆器 | Qiagen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| STAR克隆 | HMW DNA来源(MPXV感染的MA-104细胞) 阅读提示:Materials and Methods, STAR cloning of the MPXV genome |
| BAC修饰 | E. coli菌株GS1783,en passant mutagenesis方法 阅读提示:Materials and Methods, BAC recombineering |
| 病毒拯救 | MA-104细胞,FPXV辅助病毒(MOI 0.05),X-tremeGENE HP转染试剂,BAC DNA用量 阅读提示:Materials and Methods, Virus reconstitution and vector excision |
| 细胞培养复制动力学 | MOI=0.05,感染时间点,细胞类型(MA-104、Vero、HaCaT) 阅读提示:Materials and Methods, Replication kinetics |
| 动物感染 | CAST/EiJ小鼠,尾皮划痕接种,病毒剂量2×10^5 PFU,PBS对照,感染后12天或8天观察 阅读提示:Materials and Methods, Infection of mice |
| 器官病毒载量检测 | 器官采样(尾皮肤、肝、脾、肺),组织匀浆,噬斑测定方法 阅读提示:Materials and Methods, Infection of mice |
| 中和试验 | 人血清样本来源(感染、接种MVA、阴性对照),血清稀释,补体(6%兔补体),病毒量200 PFU 阅读提示:Materials and Methods, Neutralization assay |
| 抗病毒药物敏感性试验 | 药物浓度范围,MOI=100 PFU/孔,MA-104细胞,48小时处理 阅读提示:Materials and Methods, Plaque reduction assay |