SpA样关节炎的诱导与DAC治疗
建立类似于人类SpA的SKG小鼠模型,并评估DAC的疗效。
雌性SKG小鼠(7-10周龄)在第0周和第2周腹腔注射3mg curdlan(悬浮于1mL PBS)或PBS作为对照。DAC(1 mg/kg)或溶剂对照每周腹腔注射一次,监测至12周。
DNA methylation inhibitor decitabine ameliorates spondyloarthritis by suppressing Th17 responses and epigenetically upregulating VIPR1 in SKG mice
研究包含体外细胞实验、体内动物模型和组学分析等多个独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
SKG/Jcl小鼠 CD4⁺ T细胞 跟腱附着点组织
SKG小鼠模型:雌性BALB/c SKG/Jcl小鼠,7-10周龄,腹腔注射3mg curdlan诱导关节炎,每周给予DAC(1 mg/kg)或溶剂对照,监测至12周 体外T细胞处理:脾脏CD4⁺ T细胞(5×10⁵细胞/孔)用CD3/CD28和IL-2刺激48小时,再加DAC(5 µM)共培养48小时 组织学评估:关节炎评分每2周评估,组织病理学评分(HE和TB染色)在12周进行,附着点炎评分1-4级 分子分析:RRBS和RNA-seq分析使用含附着点的跟腱组织,每组3-4个样本,整合分析鉴定差异甲基化和表达基因 免疫组化:定量分析未进行,仅定性评估VIPR1和IL-17A表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立类似于人类SpA的SKG小鼠模型,并评估DAC的疗效。
雌性SKG小鼠(7-10周龄)在第0周和第2周腹腔注射3mg curdlan(悬浮于1mL PBS)或PBS作为对照。DAC(1 mg/kg)或溶剂对照每周腹腔注射一次,监测至12周。
评估DAC对关关节炎严重程度和组织病理学变化的影响。
每两周评估临床关节炎评分(0-1分制)。12周后安乐死小鼠,取手足关节和脊柱(含尾椎)组织,固定、脱钙、石蜡包埋,进行HE和TB染色,评估滑膜增生、炎性细胞浸润、骨侵蚀、软骨丢失和附着点炎评分。
评估DAC对脾脏T细胞活化、Th17反应和Treg功能的影响。
在第4、8、12周收集脾脏,分离脾细胞,用抗体染色进行表面和胞内染色,流式细胞术分析CD4⁺、CD8⁺ T细胞、Treg(CD4⁺CD25⁺Foxp3⁺)的频率和PD-1表达,以及IL-17A、IFN-γ、TNF-α的产生。
验证DAC对CD4⁺ T细胞IL-17A和Treg分化的直接影响。
从curdlan注射后8周的小鼠脾脏中通过阴性选择分离CD4⁺ T细胞,用CD3/CD28和IL-2刺激48小时,然后加或不加DAC(5 µM)共培养48小时。收集上清液检测TGF-β和IL-17A水平,分析Treg频率和FOXP3表达。
鉴定DAC治疗作用下附着点组织中的DNA甲基化和基因表达变化,寻找DAC作用的表观遗传靶点。
从DAC和溶剂对照处理的SKG小鼠中分离含附着点的跟腱组织,提取DNA进行RRBS,提取RNA进行RNA-seq,整合分析差异甲基化区域和差异表达基因。
在蛋白水平验证DAC对附着点局部IL-17A和VIPR1表达的影响。
收获小鼠踝关节,固定、脱钙、包埋,切片,用抗IL-17A抗体(1:100)和抗VIPR1抗体(1:200)进行免疫组织化学染色,DAB显色,观察附着点区域的表达变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型诱导 | 可得然胶 | Wako | -- |
| 药物治疗 | 地西他滨 | Apollo Scientific | -- |
| 细胞培养 | Dynabeads™ 小鼠T细胞激活剂 CD3/CD28 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 重组小鼠IL-2 | Roche Holding AG | -- | |
| TEX Max培养基 | Miltenyi Biotec | -- | |
| 流式细胞术 | 抗CD3ε-BV605抗体 | BioLegend | -- |
| 抗CD4-FITC抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD8-BV421抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD45-BV510抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD69-Alexa700抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD62L-PE抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗PD-1-PerCP抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD185 (CXCR5)-BV785抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗ICOS-BV785抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD25-APC抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗IL-17 A-PE/Cy7抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗TNFα-APC抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗IFNγ-Alexa700抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗FOXP3-BV421抗体 | eBioscience | -- | |
| BD LSRFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| FlowJo软件 | Tree Star Inc | -- | |
| 体外细胞培养 | CD4⁺ T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | -- |
| ELISA | TGF-β ELISA试剂盒 | Proteintech | -- |
| IL-17 A ELISA试剂盒 | Proteintech | -- | |
| 体外刺激 | PMA/离子霉素 | BioLegend | -- |
| RRBS | Zymo-Seq RRBS文库制备试剂盒 | Zymo Research | -- |
| 测序 | Illumina NovaSeq X Plus测序平台 | Illumina | -- |
| RNA-seq | NEBNext Ultra II 定向RNA文库制备试剂盒 | New England Biolabs | -- |
| 免疫组化 | 抗IL-17 A抗体 | Abcam | -- |
| 抗VIPR1抗体 | Proteintech Group | -- | |
| ImmPRESS® HRP抗兔IgG | Vector Laboratories | MP-7401 | |
| HS All-in-One荧光显微镜 (BZ-9000) | KEYENCE | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立与DAC给药 | 小鼠品系(雌性BALB/c SKG/Jcl),年龄(7-10周龄),curdlan剂量(3mg,腹腔注射,第0和2周),DAC剂量(1 mg/kg,每周一次),给药途径(腹腔注射),对照组(溶剂对照),监测时长(12周) 阅读提示:Methods: Mice, Experimental schedule |
| 关节炎和组织病理学评估 | 关节炎评分系统(0-1),组织病理学评分(0-4分制),附着点炎评分(1-4分制),染色方法(HE和TB),样本量(n=5每组) 阅读提示:Methods: Peripheral arthritis scoring, Histopathological scoring; Figure legends 1 and 2 |
| 流式细胞术分析 | 时间点(第4、8、12周),脾细胞获取,抗体组合,样本量(第4/8周n=8,第12周n=4或10),Treg定义(CD4⁺CD25⁺Foxp3⁺) 阅读提示:Methods: Flow cytometric analysis of splenocytes; Supplementary Figure 1 |
| 体外CD4⁺ T细胞培养 | 细胞数量(5×10⁵/孔),刺激条件(CD3/CD28和IL-2,48h),DAC浓度(5 µM,额外48h),检测指标(TGF-β、IL-17A水平,Treg频率) 阅读提示:Methods: In vitro co-culture of splenic CD4⁺ with DAC; Figure 4 legend |
| 表观基因组和转录组分析 | 组织来源(跟腱附着点),RRBS和RNA-seq方法,样本量(对照n=3,DAC组n=4),差异甲基化阈值(≥25%,p<0.05),差异表达阈值(|log2FC|>1,p<0.05) 阅读提示:Methods: Epigenomic and transcriptomic analysis; Figure 5 legend |
| 免疫组化分析 | 组织(踝关节附着点),固定、脱钙方法,抗体浓度(IL-17A 1:100,VIPR1 1:200),显色方法(DAB),定性分析 阅读提示:Methods: Immunohistochemistry of mouse ankle entheses; Figure 6 legend |