RAD21突变的CRISPR校正
评估校正RAD21突变对ML-DS细胞生长和基因表达的影响。
使用CRISPR-Cas9校正CMY细胞中的RAD21突变,生成同基因克隆,并通过Western blot验证RAD21蛋白水平。
The effect of cohesin mutations on HLA-class II expression in the myeloid leukemia of Down syndrome
包含基因编辑细胞系、多组学分析、患者样本验证及动物实验等多个独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
CMY细胞系(RAD21突变ML-DS患者来源) RAD21校正的CMY同基因克隆(2B10和3D11) CMK细胞系(STAG2突变建模) Kasumi-1细胞系(t(8;21)阳性AML) NSG小鼠异种移植模型 ML-DS患者样本和TAM患者样本
RAD21突变状态:CMY细胞携带RAD21 Y3*突变,校正后克隆需验证 HLA-DR、DP、DQ表面表达水平 CIITA在HLA-class II基因座的染色质占用 RAD21和STAG2表达水平与HLA-class II表达的相关性 HAT抑制剂处理剂量和时间
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估校正RAD21突变对ML-DS细胞生长和基因表达的影响。
使用CRISPR-Cas9校正CMY细胞中的RAD21突变,生成同基因克隆,并通过Western blot验证RAD21蛋白水平。
评估RAD21校正对ML-DS细胞生长的影响。
通过细胞计数和竞争性生长实验测定体外生长,通过NSG小鼠移植评估体内存活。
鉴定RAD21突变引起的染色质可及性和转录因子占用的变化。
对CMY和校正克隆进行ATAC-seq和CUT&RUN,分析差异染色质区域和蛋白占用;进行RNA-seq和GSEA分析。
验证黏连蛋白突变对HLA-II类基因和蛋白表达的影响。
使用流式细胞术检测HLA-DR、DP、DQ表面表达,并在患者样本和细胞系中分析RAD21/STAG2表达与HLA-II类表达的关系。
探究黏连蛋白如何调控HLA-II类基因表达。
通过ChIP-seq检测CIITA在HLA-II类基因座的占用,并在CIITA敲除细胞中验证其对HLA-II类表达的影响。
评估HLA-DR表达与TAM进展为ML-DS的关系。
回顾性分析诊断时的流式细胞术数据,比较TAM和ML-DS患者的HLA-DR水平,并分析其与进展风险的相关性。
寻找能逆转HLA-II类表达减少的调控因子。
在CMY和3D11细胞中进行全基因组CRISPR-Cas9敲除筛选,鉴定影响HLA-II类表达的基因,并验证候选因子如MEAF6和HAT抑制剂的作用。
检验黏连蛋白对HLA-II类表达的影响是否广泛存在于其他AML亚型。
分析panAML数据集中RAD21/STAG2表达与HLA-II类表达的关系,并在Kasumi-1细胞中校正RAD21突变后检测HLA-II类表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 基因编辑 | SpCas9蛋白 | St. Jude Protein Production Core | -- |
| sgRNA | IDT | -- | |
| pMaxGFP | Lonza | -- | |
| 4D-Nucleofector X 单位 | Lonza | -- | |
| P3溶液 | Lonza | -- | |
| 细胞培养 | MycoAlert Plus支原体检测试剂盒 | Lonza | -- |
| 细胞认证 | PowerPlex Fusion系统 | Promega | -- |
| 流式细胞术 | LSRFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| HLA-DR、DP、DQ-AF647抗体 | Biolegend | 361703 | |
| AF647同型对照 | Biolegend | 400234 | |
| 流式细胞术(诊断性) | DxFLEX 13色/三激光流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
| 染色缓冲液 | BD Pharmingen | -- | |
| Brilliant染色缓冲液 | BD Horizon | 566349 | |
| CD34-PC 5.5抗体 | BD Bioscience | 347222 | |
| CD33-APC-R700抗体 | BD Biosciences | 659122 | |
| CD45-KO抗体 | BD Biosciences | 560777 | |
| CD117-PC 7抗体 | Beckman Coulter | B49221 | |
| CD11a-BV605抗体 | BD Biosciences | 743332 | |
| CD36-FITC抗体 | Beckman Coulter | B49201 | |
| HLA-DR-PB抗体 | Beckman Coulter | 307624 | |
| CD7-PE抗体 | Beckman Coulter | IM1429U | |
| CD42b-APC抗体 | BD Biosciences | 551061 | |
| CD71-APC-H7抗体 | BD Biosciences | 655408 | |
| FACS裂解液 | BD Biosciences | 349202 | |
| 药物处理 | WM-3835 | -- | -- |
| PF-9363 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 基因编辑和细胞系生成 | CMY、CMK和Kasumi-1细胞的RNP转染条件,包括sgRNA、SpCas9、pMaxGFP和ssODN的用量;核转染程序和溶液(如P3)。 阅读提示:Materials and methods, 'Genome-edited cell lines and pools' |
| 流式细胞术检测HLA-II类表达 | 抗体克隆和荧光染料(HLA-DR、DP、DQ-AF647、AF647同型对照、诊断panel),孵育条件和洗涤缓冲液。 阅读提示:Materials and methods, 'Flow cytometry' |
| 多组学分析 | ATAC-seq、CUT&RUN、ChIP-seq和Hi-C的具体实验条件(如抗体、细胞数量、片段化条件)未在文中详细描述,需参考补充方法。 阅读提示:Materials and methods, 'Multi-omic assays'以及Supplemental Methods |
| 患者样本分析 | C3OMBAT-AML队列的纳入标准、HLA-DR MFI测量方法、TAM和ML-DS诊断标准。 阅读提示:Materials and methods, 'Diagnostic flow cytometry C3OMBAT-AML cohort'和Results 'Low HLA-DR expression is an indicator of TAM progression to ML-DS' |
| CRISPR筛选 | 筛选所用的sgRNA文库(Brunello)、MOI、筛选时间、HLA-DR分选门控和数据分析的cutoff。 阅读提示:Materials and methods, 'Genome-wide CRISPR-Cas9 screen'和Results相应部分 |
| 药物处理实验 | WM-3835和PF-9363的浓度和处理时间(如10μM WM-3835,25nM/2.5μM PF-9363),以及PDX模型的培养条件。 阅读提示:Results 'Genome-wide CRISPR-Cas9 screen uncovers regulators of HLA-class II expression'和图6图例 |