患者队列GWAS分析
鉴定与ICI治疗结果相关的DPYD基因变异。
对73名dMMR/MSI-H mCRC患者(67例接受ICI)进行回顾性GWAS分析,评估种系SNP与PFS和肿瘤缓解的关联。
Dihydropyrimidine dehydrogenase modulates immune response to checkpoint inhibition in mismatch repair deficient/microsatellite instability-high colorectal cancer
包含临床患者队列GWAS分析、细胞增殖实验、同基因小鼠模型体内药效实验、流式细胞术免疫浸润分析、RNA测序及药理学验证等多个独立证据层级,且包含功能验证和机制验证。
MC38小鼠结直肠癌细胞系(MSI-H) C57BL/6小鼠同基因移植瘤模型 dMMR/MSI-H mCRC患者队列(IOV-IRCCS)
DPYD rs1415683 SNP基因型与ICI治疗PFS及肿瘤缓解的关联 Dpyd敲除或过表达MC38细胞系在体外及体内的生长特性 抗PD-1(克隆RMP1-14)和抗CTLA-4(克隆9H10)的给药方案(100 μg,每周两次,持续2周) eniluracil给药剂量(2 mg/kg和0.5 mg/kg)及预处理方案(ICI治疗前5天) 流式细胞术检测肿瘤免疫细胞浸润的标记物和门控策略
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定与ICI治疗结果相关的DPYD基因变异。
对73名dMMR/MSI-H mCRC患者(67例接受ICI)进行回顾性GWAS分析,评估种系SNP与PFS和肿瘤缓解的关联。
建立Dpyd表达水平不同的同基因细胞系,用于研究DPD功能。
使用CRISPR-Cas9生成Dpyd敲除(KO)MC38克隆(T3-1和T3-18),使用慢病毒载体过表达Dpyd(克隆1和7),并通过Western blot验证。
检测Dpyd表达对MC38细胞增殖能力的影响。
使用MTS实验和克隆形成实验评估Dpyd KO、OE和WT MC38细胞的增殖能力。
评估Dpyd表达状态对肿瘤生长和对ICI治疗反应的影响。
在C57BL/6小鼠皮下接种Dpyd WT/KO/OE MC38细胞,用抗PD-1、抗CTLA-4或其组合治疗,监测肿瘤生长和总生存期。
评估Dpyd表达对肿瘤免疫细胞浸润的影响。
使用多参数流式细胞术分析Dpyd WT/KO/OE肿瘤中髓系细胞(MDSC、巨噬细胞、树突状细胞)和淋巴系细胞(CD8+T、Treg、NK)的浸润情况。
鉴定Dpyd表达变化对MC38细胞转录谱的影响。
对Dpyd OE、KO和WT MC38细胞进行总RNA测序,分析差异表达基因(DEGs)和富集通路。
验证药物抑制DPD能否增强ICI抗肿瘤疗效。
用DPD不可逆抑制剂eniluracil预处理MC38荷瘤小鼠,然后联合抗PD-1和/或抗CTLA-4治疗,评估肿瘤生长和生存期。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 患者样本基因分型 | QIAamp DNA Mini 试剂盒 | Qiagen | -- |
| Infinium OncoArray-500K 芯片 | Illumina | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Corning | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 细胞增殖检测 | CellTiter 96 水溶性One Solution细胞增殖检测试剂盒 | Promega | -- |
| 肿瘤解离 | 小鼠肿瘤解离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-096-730 |
| OctoDissociator组织处理器 | Miltenyi Biotec | -- | |
| 流式细胞术 | Live/Dead可固定Aqua染料 | Thermo Fisher | L10119 |
| Fc受体阻断剂 | BD Pharmingen | 553142 | |
| FoxP3/转录因子染色缓冲液套装 | Life Technologies | 00-5523-00 | |
| Attune NxT流式细胞仪 | Invitrogen | -- | |
| RNA测序 | RNeasy Mini 试剂盒 | Qiagen | -- |
| 动物实验 | 抗PD-1抗体(克隆RMP1-14) | Dr Alan Epstein at USC | -- |
| 抗CTLA-4抗体(克隆9H10) | Dr Alan Epstein at USC | -- | |
| 动物实验(对照) | 大鼠IgG(克隆2A3) | Bio X Cell | BE0089 |
| 多克隆叙利亚仓鼠IgG | Bio X Cell | BE0087 | |
| 药物处理 | 恩尿嘧啶 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者队列GWAS分析 | DPYD rs1415683基因型与PFS的关联(GG/TG vs TT)、rs11165845和rs6707705的关联、ICI治疗方案、样本量(n=73)、基因分型芯片、统计方法(Cox回归、Firth惩罚) 阅读提示:详见Methods中'Genome-wide association study in dMMR/MSI-H mCRC treated with ICI'部分及Figure 1。 |
| 细胞系生成 | Dpyd敲除效率(gRNA序列T3)、克隆筛选(T3-1, T3-18)、过表达克隆(1和7)的验证结果 阅读提示:详见Methods中'Generation of Dpyd knock out and overexpressed MC38 cell lines'部分及补充图S2。 |
| 体外细胞增殖实验 | MTS实验的细胞数(2000)、时间点(24h, 48h)和克隆形成实验的细胞数(500)、重复数(3)及染色条件 阅读提示:详见Methods中'In vitro studies'部分。 |
| 体内肿瘤模型及ICI治疗 | 细胞接种量(1×10^6)、小鼠品系(C57BL/6雌性,7-8周龄)、ICI剂量(100 μg)、给药方案(每周两次,持续2周)、每组样本量(n=10)、肿瘤测量频率(每周三次) 阅读提示:详见Methods中'In vivo studies'部分及Figure 2。 |
| 肿瘤免疫浸润分析 | 流式抗体克隆/标记物(如Ly6G, Ly6C, CD86, CD206, CD103, NKp46等)、细胞采集时间(d21/d15)、肿瘤解离方法 阅读提示:详见Methods中'Tumor immune infiltration studies'、'Tumor dissociation and collection'、'Flow cytometry'部分及补充表格S8。 |
| RNA测序分析 | RNA起始量(1 μg)、测序平台(Illumina HiSeq)、比对参考基因组(GRCm39)、差异表达阈值(|log2FC|>1,padj<0.05) 阅读提示:详见Methods中'RNA sequencing'部分。 |
| 药理学验证(eniluracil) | eniluracil剂量(2 mg/kg和0.5 mg/kg)、给药频率(每日一次)、预处理时间(5天)、ICI联合方案(抗PD-1和/或抗CTLA-4)及给药周期 阅读提示:详见Methods中'In vivo studies'部分及Figure 5。 |