TANGO2敲除hiPSC模型构建
生成携带TANGO2外显子3-9缺失的hiPSC-CMs,用于模拟TDD的细胞模型。
使用CRISPR/Cas9双sgRNA删除TANGO2外显子3-9,筛选两个克隆系,通过Western blot确认TANGO2蛋白缺失,并分化成心肌细胞。
Metabolic crisis and TRPM4 activation cause QT prolongation in TANGO2 deficiency disorder
包含临床病例、hiPSC-CM模型、代谢与电生理功能验证、机制验证(TRPM4敲低/抑制)及药物干预,证据层级多且含功能与机制验证。
人诱导多能干细胞心肌细胞(hiPSC-CMs)TANGO2-/-模型 TDD临床病例(6岁男孩,TANGO2外显子3-9缺失)
TANGO2基因敲除(外显子3-9缺失)细胞系的纯度与多能性验证 hiPSC-CMs分化成熟度(T3和Dex处理)确认 代谢底物条件(5.6 mmol/L葡萄糖、0.1 mmol/L棕榈酸、24小时禁食) 药物处理浓度(维拉帕米100 nmol/L、400 nmol/L,9-苯蒽酚10 µmol/L)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
生成携带TANGO2外显子3-9缺失的hiPSC-CMs,用于模拟TDD的细胞模型。
使用CRISPR/Cas9双sgRNA删除TANGO2外显子3-9,筛选两个克隆系,通过Western blot确认TANGO2蛋白缺失,并分化成心肌细胞。
评估不同代谢底物(葡萄糖和棕榈酸)对TANGO2-/- hiPSC-CMs线粒体功能和ATP产生的影响。
在含5.6 mmol/L葡萄糖或0.1 mmol/L棕榈酸条件下,测量细胞内ATP/ADP比值、Seahorse耗氧率(OCR)和ATP产生率,并进行24小时禁食处理。
验证维生素B5和B9组合补充能否纠正TANGO2-/- hiPSC-CMs中受损的棕榈酸氧化和ATP缺乏。
用维生素B5(0.05 mmol/L)、B9(0.05 mmol/L)或组合(各0.025 mmol/L)处理2周,然后测定棕榈酸依赖性OCR和ATP产生率。
研究不同代谢条件对TANGO2-/- hiPSC-CMs电活动的影响,表征QT延长和心律失常表现。
记录在葡萄糖、棕榈酸及禁食后棕榈酸条件下的场电位(EFP)和单细胞动作电位(AP),量化FPD、APD90、交替等参数。
通过补充ATP或肌酸激酶,验证ATP缺乏是否是AP延长的直接原因。
在膜片钳记录时,通过电极内液递送2.5单位肌酸激酶和2 mmol/L磷酸肌酸,或10 mmol/L Mg-ATP,观察AP变化。
评估维拉帕米和地尔硫卓对TANGO2-/- hiPSC-CMs中AP延长和钙异常的改善作用。
急性给予400 nmol/L维拉帕米或500 nmol/L地尔硫卓,记录AP;并单独用100 nmol/L维拉帕米预处理1小时,测量细胞内钙瞬变和钙处理参数。
验证TRPM4在代谢危机中上调,并通过药理学抑制或基因敲低确认其介导AP延长。
RT-qPCR检测TRPM4 mRNA表达;使用TRPM4抑制剂9-苯蒽酚(10 µmol/L)和siRNA敲低,测量APD90和能量参数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞模型 | TANGO2-/- hiPSC细胞系的敲除效率及克隆选择;分化方案中T3和Dex的浓度和时间 阅读提示:Methods中hiPSC生成与分化部分,补充材料图S1 |
| 代谢应激条件 | 培养基中葡萄糖(5.6 mmol/L)和棕榈酸(0.1 mmol/L)浓度;禁食24小时;检测ATP/ADP比值和OCR 阅读提示:Results 3.3节,图2及其图注 |
| 电生理记录 | 场电位记录时的刺激频率(1 Hz)和温度(37°C);动作电位记录时的刺激频率(0.5 Hz)和电极内液组成 阅读提示:Results 3.5节,图3和图4的图注及相关方法 |
| 药物干预 | 维拉帕米处理浓度(100 nmol/L预处理1小时,400 nmol/L急性)及时间 阅读提示:Results 3.5和3.7节,图5和图6图注 |
| 维生素B处理 | 维生素B5和B9的浓度(各0.05 mmol/L或组合各0.025 mmol/L)及处理时间(2周) 阅读提示:Results 3.4节,补充图S7 |
| TRPM4功能研究 | TRPM4抑制剂9-苯蒽酚浓度(10 µmol/L)及孵育时间;siRNA转染条件(浓度和时间) 阅读提示:Results 3.8节,图7及补充图S14-S15 |