队列筛选和HER2分类
确定符合分析条件的男性乳腺癌样本,并根据HER2表达状态进行分类。
从15247例经Caris Life Sciences分子检测的乳腺癌样本中筛选出214例可分类HER2状态的男性乳腺癌,基于ASCO-CAP 2023标准通过IHC和CISH确定HER2零表达、超低表达、低表达和阳性。
Molecular and immune profiling of HER2-low, HER2 ultra-low, and HER2-null male breast cancer
包含多组学分析(NGS、WTS、TMB、IHC)和免疫细胞反卷积,以及多个独立证据层级(基因组、转录组、免疫微环境),并进行了功能相关基因表达验证。
214例男性乳腺癌FFPE肿瘤样本 HER2零表达男性乳腺癌 HER2超低表达男性乳腺癌 HER2低表达男性乳腺癌
HER2表达状态分类标准(ASCO-CAP 2023指南,IHC 4B5抗体和CISH) PIK3CA突变频率比较(HER2超低表达39.2% vs HER2零表达22.6%,p≤0.05) 免疫细胞浸润反卷积(B细胞和中性粒细胞分数差异) 干性相关基因和CEACAM1表达差异 TMB-high和PD-L1表达频率
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定符合分析条件的男性乳腺癌样本,并根据HER2表达状态进行分类。
从15247例经Caris Life Sciences分子检测的乳腺癌样本中筛选出214例可分类HER2状态的男性乳腺癌,基于ASCO-CAP 2023标准通过IHC和CISH确定HER2零表达、超低表达、低表达和阳性。
描述不同HER2亚组的突变景观和转录组特征。
对肿瘤样本进行DNA和RNA测序,分析基因突变(特别是PIK3CA)、基因表达和TMB。
比较不同HER2亚组之间的免疫细胞浸润和免疫检查点基因表达。
使用quanTIseq反卷积RNA-seq数据估计免疫细胞分数,并分析免疫检查点基因(如CEACAM1)的表达。
识别不同HER2亚组之间差异富集的生物学通路。
利用GSEA分析基因表达数据,比较HER2零表达与超低表达、HER2零表达与低表达等亚组间的通路富集。
评估AR、HER2、PD-L1蛋白表达,验证HER2分类并补充蛋白水平信息。
对FFPE切片进行IHC染色,检测AR、HER2和PD-L1表达,并根据标准判读。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| DNA测序 | NextSeq测序仪 | Illumina, Inc. | -- |
| NovaSeq 6000测序仪 | Illumina, Inc. | -- | |
| RNA测序 | Qiagen RNA FFPE组织提取试剂盒 | Qiagen | -- |
| RNA质量评估 | Agilent TapeStation | Agilent | -- |
| 免疫组织化学 | HER2抗体克隆4B5 | Roche | -- |
| PD-L1抗体克隆22c3 | Dako | -- | |
| AR抗体克隆AR441 | Agilent Dako | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本收集和HER2分类 | FFPE样本来源,HER2分类标准(ASCO-CAP 2023)和具体阈值(如超低表达≤10%细胞),IHC和CISH方法 阅读提示:Materials and methods 2.1和2.4节,Table 1,Fig. 1 |
| 测序和变异分析 | 测序平台(NextSeq/NovaSeq 6000),基因panel(592或720基因),变异分类标准,TMB阈值(>10突变/Mb) 阅读提示:Materials and methods 2.1和2.3节 |
| 转录组和免疫分析 | RNA提取试剂盒,测序平台,定量方法(Salmon),反卷积方法(quanTIseq),免疫细胞分数比较 阅读提示:Materials and methods 2.2节,Results 3节,Fig. 4 |
| 通路富集分析 | GSEA软件版本,参考基因集,FDR显著性阈值(<0.25) 阅读提示:Materials and methods 2.2节,Results 3节,Fig. 7 |
| 统计比较 | 比较的亚组,统计检验(卡方、Fisher、Mann-Whitney U),多重检验校正(BH),HR分层分析 阅读提示:Materials and methods 2.5节 |