模型构建与表型分析
建立DSP-R451G相关心肌病的体外和体内模型,并验证其表型是否与患者一致。
使用iPSC分化来源的工程心脏组织(EHT)分别表达WT/WT、WT/R451G、R451G/R451G;同时使用DspWT/R451G小鼠和患者心肌样本。检测蛋白表达、组织收缩力等。
Desmoplakin Loss Leads to PKC- and Src-Mediated Contractile Dysfunction in Cardiomyocytes
涵盖iPSC来源EHT、小鼠心肌细胞、人类心脏样本等三个独立证据层级,并进行功能验证(收缩力)和机制验证(信号通路及药物挽救)。
iPSC来源工程心脏组织(EHT) DspWT/R451G小鼠 人类左心室活检样本
DSP-R451G突变导致蛋白降解和单倍剂量不足 工程心脏组织的收缩力降低和肌节长度缩短 PKC和Src磷酸化水平升高 达沙替尼处理可恢复肌节长度和收缩力
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立DSP-R451G相关心肌病的体外和体内模型,并验证其表型是否与患者一致。
使用iPSC分化来源的工程心脏组织(EHT)分别表达WT/WT、WT/R451G、R451G/R451G;同时使用DspWT/R451G小鼠和患者心肌样本。检测蛋白表达、组织收缩力等。
评估DSP突变导致的收缩功能障碍表型。
对EHT进行等长收缩力测量(频率1.5 Hz),检测峰值力、收缩动力学;对小鼠心肌细胞进行功能分析。
排除钙处理异常和电生理缺陷作为收缩功能障碍的原因。
使用Fura-2对EHT进行钙成像,使用Rhod-2对小鼠心肌细胞进行钙成像;对小鼠心脏进行光学标测。
检查肌节结构及静息肌节长度是否改变。
对EHT进行鬼笔环肽染色共聚焦成像,测量肌节长度;对小鼠心肌细胞和患者组织进行类似测量。
鉴定调节肌节长度的上游信号通路。
在2D心肌细胞中用PKC抑制剂(staurosporine、bisindolylmaleimide VIII)、激动剂(PMA)和Src抑制剂(dasatinib)处理,测量肌节长度;在EHT中检测PKC和Src磷酸化水平。
验证发现是否在携带DSP突变的患者中成立。
检测患者心肌样本中Src磷酸化水平,并与肌节长度进行相关性分析。
验证抑制Src能否恢复收缩功能异常。
用dasatinib处理DSPR451G EHT,测量肌节长度和收缩力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 基质胶 | -- | -- | |
| 药物处理 | 星形孢菌素 | -- | -- |
| 双吲哚马来酰亚胺VIII | -- | -- | |
| 佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯 | -- | -- | |
| 达沙替尼 | -- | -- | |
| 鲁伯斯塔林 | -- | -- | |
| 地法替尼 | -- | -- | |
| 奥美卡替尼 | -- | -- | |
| 钙成像 | Fura-2钙离子荧光探针 | -- | -- |
| Rhod-2钙离子荧光探针 | -- | -- | |
| 染色 | 鬼笔环肽 | -- | -- |
| Hoechst染料 | -- | -- | |
| 免疫荧光 | 抗α18-连环蛋白抗体 | -- | -- |
| 抗N-钙粘蛋白抗体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 工程心脏组织(EHT)制备 | 心肌细胞分化方案、EHT构建方法、基因型(WT/WT、WT/R451G、R451G/R451G)、培养时间 阅读提示:补充方法及参考文献16、17 |
| 收缩力测量 | 刺激频率(1.5 Hz)、培养基组成(DMEM或RPMI)、温度、刺激电压、组织预负荷 阅读提示:图1D-E及其图注 |
| 钙瞬变测量 | 染料(Fura-2或Rhod-2)浓度、负载时间、起搏频率(1 Hz)、细胞数量 阅读提示:图2及图S1-S3 |
| 肌节长度测量 | 固定方法、染色(phalloidin)、成像方式(共聚焦)、测量软件(Matlab) 阅读提示:图4E-F、图5 |
| 药物处理 | 药物浓度、溶剂对照、处理时间(4小时或过夜) 阅读提示:图5C-E、图7B-E |
| 信号通路检测 | 抗体特异性(phospho-PKC Ser660、phospho-Src Y416)、蛋白提取方法、内参(如Histone H3) 阅读提示:图6A-F |