肿瘤细胞外囊泡和颗粒重编程肺间质巨噬细胞以促进血管通透性和转移

Tumoral extracellular vesicles and particles reprogram interstitial macrophages in the lung to promote vascular permeability and metastasis

作者信息Shani Dror, Inbal Wortzel, Serena Lucotti, Yura Seo, Jianlong Li, Lee Shaashua, Irina Matei, Nancy Boudreau, Haiying Zhang, Maider Astorkia-Amiama, Doron Betel, Han Sang Kim, Jai Prakash, Jacqueline Bromberg, David Lyden
PMID42557402
发布时间2026-08
DOI10.1038/s43018-026-01209-z

实验完整度

包含体外细胞实验、动物模型、患者样本和组学分析,并进行功能验证(ITGα5敲除/过表达)和机制验证(NF-κB通路)。

主要模型

B16F10黑色素瘤小鼠模型 K7M2骨肉瘤小鼠模型 间质巨噬细胞(小鼠和人) 结直肠癌患者肿瘤样本

重点核对

EVP给药剂量和途径:10μg EVPs经眶后注射 血管通透性检测:注射罗丹明-葡聚糖(70kDa)后1小时 IM耗竭:抗CSF1R(BE0213)200μg/只 ITGα5敲除或AV3抑制剂的处理浓度和时间 IL-6中和抗体剂量

摘要

肿瘤来源的细胞外囊泡和颗粒(EVPs)在肺转移前微环境形成过程中促进血管通透性的机制尚不清楚。在此,我们证明肿瘤EVPs在给予雌性小鼠后1小时内迅速诱导血管渗漏,创造了一个增强转移种子定植的允许性环境。EVPs并非直接作用于内皮细胞,而是激活间质巨噬细胞中的NF-κB和JAK–STAT信号通路,导致IL-6分泌和血管通透性增加。间质巨噬细胞耗竭显著减少EVP诱导的血管渗漏和转移。我们确定细胞外囊泡相关的整合素α5(ITGα5)是这一过程的主要功能决定因素,促进巨噬细胞活化和IL-6分泌而不影响EVP摄取。来自高表达ITGα5的结直肠癌肿瘤的EVPs同样诱导巨噬细胞IL-6分泌和血管通透性。总之,这些发现定义了一个驱动转移前微环境形成过程中血管通透性的EVP–巨噬细胞–IL-6轴,并确定EVP相关的ITGα5是转移进展的关键介质和潜在的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肿瘤来源的EVPs在肺转移前微环境形成过程中如何诱导血管通透性?
核心机制
EVP相关ITGα5激活肺间质巨噬细胞NF-κB信号,随后激活STAT3,促进IL-6分泌,IL-6作用于内皮细胞增加血管通透性。
主要证据
体外和体内实验表明,ITGα5敲除或抑制减少EVP诱导的血管通透性、IL-6分泌和转移;IM耗竭或IL-6中和减少血管渗漏和转移;患者肿瘤EVP高表达ITGα5且诱导巨噬细胞IL-6分泌和体内通透性。
研究意义
该研究定义EVP–巨噬细胞–IL-6轴,并指出EVP相关ITGα5是潜在治疗靶点和预后生物标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

肿瘤模型和EVP诱导血管通透性评估

比较不同肿瘤模型和其EVP诱导肺血管渗漏的能力

将B16F10、K7M2、4T1、67NR细胞原位植入小鼠,14天后通过静脉注射葡聚糖评估血管通透性;分离B16F10和K7M2 EVPs并注入小鼠,1小时后评估通透性。

2

急性血管通透性对转移的影响

测试EVP诱导的血管渗漏是否能促进肿瘤细胞外渗和肺转移

注射EVP(高渗漏或低渗漏)1小时后尾静脉注射肿瘤细胞(B16F10、K7M2、4T1),14天后评估转移灶;使用组胺作为阳性对照。

3

鉴定摄取EVP的肺细胞群

确定哪些肺细胞摄取主要EVP,以找出介导通透性的关键细胞

用PKH67标记EVP并注射,1小时后通过流式细胞术和免疫荧光分析肺细胞亚群,确定IM是主要摄取者。

4

验证IM在通透性和转移中的作用

测试间质巨噬细胞耗竭对EVP诱导的血管通透性和转移的影响

使用抗CSF1R抗体耗竭IM,然后评估EVP诱导的血管渗漏和转移负担,并检测生存率。

5

鉴定IM分泌的效应细胞因子

找出EVPs激活IM后介导血管通透性的关键细胞因子

对EVP处理的IM进行RNA-seq和细胞因子阵列,发现IL-6、CXCL2、CCL3和TNF上调;使用中和抗体验证IL-6是关键因子。

6

鉴定EVP中触发通透性的蛋白质

寻找EVP中负责诱导血管通透性的特定蛋白

对B16F10、K7M2、4T1和Melan-A来源的EVP进行质谱分析,比较蛋白质表达,筛选出ITGα5等候选蛋白,并通过敲除/敲低验证功能。

7

验证ITGα5对NF-κB信号和IL-6分泌的作用

阐明ITGα5如何调控巨噬细胞信号通路和IL-6产生

使用ITGα5抑制剂AV3或敲除EVP中ITGα5,检测巨噬细胞NF-κB(p-IKKβ、p65核转位)和STAT3磷酸化,以及IL-6分泌;使用NF-κB抑制剂TPCA-1验证通路。

8

临床相关性评估

评估ITGα5在结直肠癌患者肿瘤EVP中的表达和功能

比较结直肠癌患者肿瘤和相邻组织来源的EVPs中ITGα5表达,检测其对巨噬细胞IL-6分泌和体内血管通透性的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Corning--
RPMI培养基Corning--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Thermo Fisher Scientific--
12-O-十四烷酰佛波醇-13-乙酸酯Sigma--
内皮细胞生长培养基2PromoCell--
BCA蛋白定量试剂盒Pierce, Thermo Fisher Scientific--
ZetaView纳米颗粒分析仪Particle Metrix--
NanoSight NS500纳米颗粒分析仪Malvern Instruments--
OptiPrep密度梯度介质----
PKH67荧光染料Sigma--
CellVue burgundy荧光染料eBioscience--
DAPI染色液Thermo Fisher Scientific--
ProLong Diamond防淬灭封片剂Thermo Fisher ScientificP36970
LSM 880共聚焦显微镜Zeiss--
VectaMount封片剂Vector Laboratories--
PANNORAMIC 250 Flash数字切片扫描仪3DHISTECH--
胶原酶ARoche--
分散酶Sigma-Aldrich--
脱氧核糖核酸酶ISigma-Aldrich--
Aurora流式细胞分析仪Cytek--
JEOL JEM-1400透射电子显微镜JEOL--
BD FACS Melody流式分选仪BD--
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子----
MACS CD14磁珠Miltenyi Biotec--
巨噬细胞无血清培养基Thermo Fisher Scientific--
人血清----
THP-1-NF-κB-luc2报告基因检测试剂盒InvivoGenthpl-nfkbv2
小鼠细胞因子阵列试剂盒R&D Systems--
RIPA裂解缓冲液Sigma-Aldrich--
Novex 4-12% Bis-Tris Plus预制胶Life Technologies--
硝酸纤维素膜Bio-Rad--
ChemiDoc XRS+凝胶成像系统Bio-Rad--
抗CSF1R抗体BioXCellBE0213
IgG对照抗体BioXCellBE0090
抗Ly6G抗体BioXCellBE0320
抗Ly6C抗体BioXCellBE0203
抗IL-6抗体BioXCellBE0046
抗TNF抗体BioXCellBE0058
抗CXCL2抗体R&D SystemsMAB452
抗CCL3抗体R&D SystemsAB-450-NA
CellTracker绿色CMFDA染料InvitrogenC2925
CD31-PE抗体BioLegend102408
AV3衍生物----
TPCA-1(NF-κB抑制剂)----
重组IL-6蛋白PeproTech--
组胺----
lentiCas9-Blast质粒Addgene52962
lentiGuide-Puro质粒Addgene52963
TransIT-X2转染试剂Mirus--
ON-TARGETplus小鼠CDH2 siRNAHorizonL-040206-00-0005
ON-TARGETplus非靶向siRNAHorizonD-001810-10-05
内肽酶LysCWako--
胰蛋白酶Promega--
TRIzol试剂Thermo Fisher Scientific--
RNeasy Mini RNA提取试剂盒Qiagen--
高容量cDNA反转录试剂盒----
SYBR green染料----
Illumina链特异性mRNA文库制备试剂盒IlluminaPN 20040534
NextSeq 2000测序仪Illumina--
Q-Exactive质谱仪Thermo Scientific--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
EVP给药
EVP剂量:10μg;注射途径:眶后注射;时间:1小时后检测
阅读提示:Methods: In vivo models; Fig. 1g,h
血管通透性检测
罗丹明-葡聚糖分子量:70kDa;剂量:0.5mg;注射后1小时分析
阅读提示:Methods: Permeability assays
IM耗竭
抗CSF1R剂量:200μg/小鼠;给药时间:EVP处理前18小时
阅读提示:Methods: In vivo models; Fig. 3g
体外通透性实验
HPAEC细胞;胶原包被transwell(3μm);处理时间:60分钟
阅读提示:Methods: Permeability assays
ITGα5抑制
AV3浓度:20μM;孵育时间:1小时
阅读提示:Methods: Pharmacological treatments