建立区域特异性Gipr敲除小鼠模型
确定AP或下丘脑GIPR在代谢调节中的功能。
使用Giprfl/fl小鼠,通过立体定向注射AAV-Cre或AAV-GFP至AP或下丘脑,产生GiprAP-KO和Giprhypo-KO小鼠及其对照。
Distinct brain regions mediate regulation of food intake in response to GIPR agonism or antagonism
包含区域特异性基因敲除、体外脑片cAMP成像、条件性味觉厌恶、代谢笼及多种药物干预等多项独立实验,验证了GIPR在不同脑区的功能差异。
小鼠(C57BL/6背景) Giprfl/fl小鼠(后区或下丘脑特异性敲除) 饮食诱导肥胖(DIO)小鼠模型 GIPR-Cre × CAMPER报告基因小鼠
区域特异性敲除的验证:通过AAV-Cre注射实现后区或下丘脑的Gipr敲除,并通过免疫组化确认靶向。 小鼠品系和背景:所有小鼠为C57BL/6背景,Giprfl/fl、GIPR-Cre × CAMPER、Ppg-Cre等。 药物剂量:酰基GIP(100 nmol/kg s.c.),利拉鲁肽(100 nmol/kg s.c.),GIPR拮抗剂(1500 nmol/kg s.c.),卡格列肽(30 nmol/kg s.c.)。 实验条件:12小时光照/黑暗循环,暗期开始给药,代谢笼单笼饲养,IPGTT方案等。 样本量和重复数:每个实验组动物数量,如每组4-13只不等,具体见图注。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定AP或下丘脑GIPR在代谢调节中的功能。
使用Giprfl/fl小鼠,通过立体定向注射AAV-Cre或AAV-GFP至AP或下丘脑,产生GiprAP-KO和Giprhypo-KO小鼠及其对照。
评估GiprAP-KO和Giprhypo-KO对体重、脂肪/瘦肉质量、葡萄糖耐量、食物摄入等的影响。
对标准饮食或高脂饮食(HFD)喂养的小鼠进行体重、体成分(EchoMRI)、IPGTT、代谢笼监测(食物摄入、RER、能量消耗、活动)等。
确定GIP能否直接激活AP神经元,并验证敲除效果。
通过cFos免疫染色检测AP神经元激活,并使用GIPR-Cre × CAMPER小鼠进行离体脑片cAMP成像。
确定AP或下丘脑GIPR是否介导酰基GIP的食欲抑制作用。
在暗期开始或禁食后给予酰基GIP(100 nmol/kg s.c.),测量食物摄入;在代谢笼中记录12小时暗期食物摄入和RER。
确定AP GIPR是否参与GIP的止吐作用。
通过CTA范式,将新型口味与PYY(100 nmol/kg)或PYY+酰基GIP(100 nmol/kg)配对,测量口味偏好指数。
确定AP或下丘脑GIPR是否影响GLP-1R激动剂和GIPR拮抗剂的减重效果。
DIO小鼠给予利拉鲁肽(100 nmol/kg s.c.)±GIPR拮抗剂(1500 nmol/kg s.c.)每天,测量体重、食物摄入和脂肪量。
确定GIPR拮抗剂的增敏作用是否延伸到非肠促胰素类减重药物。
对WT或Giprhypo-KO小鼠给予卡格列肽(30 nmol/kg s.c.)±GIPR拮抗剂,测量体重变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物手术 | AAV-hSyn-Cre-p2a-dTomato | Addgene | 107738-AAV9 |
| AAV-hSyn-GFP | Addgene | 50465-AAV9 | |
| 体成分分析 | EchoMRI-100H | Medical Systems | -- |
| 药物处理 | 酰基GIP | -- | -- |
| 利拉鲁肽 | -- | -- | |
| GIPR拮抗剂肽 | -- | -- | |
| 卡格列肽 | Cambridge Bioscience | -- | |
| 激素测量 | 胰岛素ELISA试剂盒 | MesoScale Discovery | -- |
| 总GLP-1 ELISA试剂盒 | MesoScale Discovery | -- | |
| GIP ELISA试剂盒 | Millipore | -- | |
| 免疫组化 | Axioscan Z1切片扫描仪 | Zeiss | -- |
| 共聚焦显微镜TCS SP8 X | Leica | -- | |
| 脑片成像 | 正置显微镜BX51W1 | Olympus | -- |
| Dual Optoled LED光源 | Cairn Research | -- | |
| Evolve 512 Delta相机 | Photometrics | -- | |
| IBMX | Sigma | I7018 | |
| 毛喉素 | Sigma | F6886 | |
| 酪蛋白 | Sigma | -- | |
| CTA实验 | PYY(3-36) | Bachem | 4018880 |
| 氯化锂 | Sigma | 7447-41-8 | |
| 代谢笼 | Promethion代谢笼系统 | Sable Systems | -- |
| 数据分析 | GraphPad Prism软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型 | 小鼠品系(C57BL/6背景),Giprfl/fl、GIPR-Cre × CAMPER、Ppg-Cre等;性别;年龄;饮食(标准饲料或45% HFD) 阅读提示:Methods 动物研究部分 |
| 病毒注射 | 病毒类型(AAV-Cre vs AAV-GFP)、滴度(1x10^12 vg/ml)、注射体积(AP 35nl,PVN 100nl)、注射坐标、恢复时间(至少2周) 阅读提示:Methods 手术部分 |
| 药物处理 | 药物种类、剂量(酰基GIP 100 nmol/kg,LIRA 100 nmol/kg,GIPR-antag 1500 nmol/kg,Cagri 30 nmol/kg)、给药途径(s.c.)、给药时间(暗期开始)、周期 阅读提示:Methods 肽药物治疗部分 |
| 代谢监测 | 代谢笼系统(Promethion)、适应期(5天)、测量参数(食物摄入、RER、能量消耗、活动)、给药后监测时间 阅读提示:Methods 代谢笼部分 |
| IPGTT | 禁食时间(<16h)、葡萄糖剂量(2 g/kg i.p.)、血糖测量时间点(0, 15, 30, 60, 90, 120分钟) 阅读提示:Methods 葡萄糖耐量部分 |
| CTA实验 | 训练天数、口味配对、药物剂量、测量时间(5小时) 阅读提示:Methods CTA部分 |