CSF1R抑制联合化疗缓解转移性三阴性乳腺癌患者全身免疫抑制并增强转基因乳腺肿瘤中抗PD-1疗效

CSF1R Inhibition with Chemotherapy Relieves Systemic Immune Suppression in Patients with Metastatic Triple-Negative Breast Cancer and Boosts Anti-PD-1 Efficacy in Transgenic Mammary Tumors

作者信息Amanda Poissonnier, Hope S Rugo, Wesley Horton, Tina Kim, Amy DeLuca, Eivind Valen Egeland, Tiziana Cotechini, Shamilene Sivagnanam, Motomi Mori, Yun Yu, Byung Park, Nicky Beelen, Dhaarini Murugan, Nell Kirchberger, Shivaani Kummar, Ingrid A Mayer, Kimberly Blackwell, E Shelley Hwang, Lisa M Coussens
PMID41894563
发布时间2026-07-17
DOI10.1158/1078-0432.CCR-25-4236

实验完整度

包含I期/II期临床试验(患者外周血免疫监测)和MMTV-PyMT转基因小鼠模型(肿瘤生长、免疫表型、TCR测序、抗体耗竭等)至少两个独立证据层级,并有功能验证(CD8+ T细胞依赖)和机制验证(记忆T细胞和克隆扩增)。

主要模型

转移性三阴性乳腺癌患者(II期队列) MMTV-PyMT转基因小鼠乳腺肿瘤模型

重点核对

CSF1R抑制剂PLX剂量:1,000 mg(最大耐受剂量)或800 mg(剂量调整后) 艾日布林剂量:1.4 mg/m²,第1天和第8天静脉注射,21天周期 小鼠模型中PLX剂量:40 mg/kg/天(掺入饲料) 小鼠模型中PTX剂量:10 mg/kg,每5天一次,经眼眶后静脉注射 小鼠模型中αPD-1或αPD-L1剂量:初始1.0 mg/只,之后0.5 mg/只,每5天一次,腹腔注射

摘要

目的:肿瘤内巨噬细胞的存在与三阴性乳腺癌(TNBC)的进展和不良预后显著相关,而晚期疾病可用的治疗选择有限。临床前研究表明,抑制骨髓单核细胞集落刺激因子1(CSF1)或其受体(CSF1R)联合细胞毒性化疗可通过CD8+ T细胞依赖性机制降低原发性肿瘤生长速度和肺转移。本转化研究评估了CSF1R抑制联合艾日布林在转移性TNBC中的作用,并基于临床免疫相关分析探索了与PD-1/PD-L1阻断的合理临床前联合策略。患者和方法:一项非随机、开放标签的Ib/2期试验(NCT01596751)评估了CSF1R抑制剂pexidartinib(PLX3397)联合甲磺酸艾日布林在经大量预治疗的转移性TNBC患者中的疗效。临床疗效与外周血相关指标同时评估。转基因乳腺腺癌模型中的临床前研究检验了基于生物标志物的治疗组合。结果:12周无进展生存率为36%(95%置信区间,22.2%–58.4%),44.8%的患者获得临床获益;部分患者疾病控制超过6个月。获得部分缓解或疾病稳定的患者表现出基线白细胞活化增加,包括CD8+和CD4+记忆T细胞富集以及CD4+ T细胞上PD-1表达增加。在临床前研究中,CSF1R抑制扩大了PD-1阻断的治疗指数,在约60%的小鼠中产生暂时性肿瘤消退,并暂时性扩增效应和常驻记忆T细胞。结论:这些临床和临床前发现为通过减少T细胞抑制性骨髓单核细胞来扩大αPD-1治疗的治疗指数,从而改善难治性疾病患者的预后提供了理论依据。转化相关性:我们报告了一项针对转移性三阴性乳腺癌(TNBC)患者的概念验证转化研究结果,该研究靶向骨髓单核细胞集落刺激因子-1(CSF1)/受体(CSF1R)通路并用艾日布林化疗联合治疗,并确定了表明缓解全身免疫抑制各个方面的相关生物标志物。利用临床应答生物标志物,临床前转基因乳腺肿瘤模型确定与PD-1阻断协同作用是一种有前景的三联治疗策略,有可能使难治性疾病患者获益。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CSF1R抑制联合化疗能否缓解转移性三阴性乳腺癌的全身免疫抑制,并与PD-1/PD-L1阻断协同增强抗肿瘤免疫?
核心机制
CSF1R抑制联合化疗减少T细胞抑制性骨髓单核细胞,增加CD8+ T细胞、效应和常驻记忆T细胞的活化与克隆扩增,从而增强PD-1阻断的治疗指数。
主要证据
在MMTV-PyMT模型中,CSF1R抑制联合PTX和αPD-1可诱导肿瘤暂时性消退,伴随CD8+ TRM细胞增殖和毒性增强以及TCR克隆扩增;临床研究中患者外周血显示CD4+和CD8+记忆T细胞增殖及PD-1表达增加与临床获益相关。
研究意义
为通过减少T细胞抑制性骨髓单核细胞来扩大αPD-1治疗的治疗指数提供了理论依据,支持CSF1R阻断作为增强TNBC免疫治疗疗效的免疫调节辅助策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床Ib/II期试验评估PLX联合艾日布林的安全性和疗效

确定PLX联合艾日布林在转移性乳腺癌中的最大耐受剂量,并评估12周无进展生存率和临床获益。

开放标签、非随机Ib/II期试验,Ib期采用3+3剂量递增设计,II期采用Simon两阶段设计。患者接受PLX联合艾日布林治疗,评估安全性、耐受性、12周PFS、客观缓解率和外周血免疫指标。

2

临床患者外周血免疫监测

评估PLX联合艾日布林对全身免疫细胞和可溶性介质的影响,并寻找与临床获益相关的生物标志物。

通过多参数流式细胞术分析外周血单个核细胞,使用Luminex和ELISA检测血浆细胞因子和趋化因子。结果显示非经典单核细胞减少,NK细胞、效应记忆和中枢记忆T细胞增加,PD-1和PD-L1表达变化等。

3

临床前模型验证CSF1R抑制联合PTX的免疫调节作用

在MMTV-PyMT小鼠模型中验证CSF1R抑制联合化疗是否增加PD-1/PD-L1表达,并评估免疫细胞组成变化。

MMTV-PyMT小鼠在80日龄开始接受PLX(40 mg/kg/天)或对照饲料,85日龄开始PTX(10 mg/kg,每5天一次)治疗,105日龄分析肿瘤、肺和血液。通过流式细胞术和ELISA检测免疫细胞组成和细胞因子。

4

临床前三联疗法评估PD-1/PD-L1阻断的协同作用

评估在CSF1R抑制联合PTX的基础上加入αPD-1或αPD-L1能否诱导肿瘤消退,并确定效应免疫机制。

MMTV-PyMT小鼠接受单药、双药或三联治疗(PLX/PTX + αPD-1或αPD-L1),评估原发肿瘤体积、生长动态、免疫微环境和肺转移负担。进行T细胞耗竭实验和TCR测序等。

5

T细胞受体库分析

评估三联疗法对T细胞克隆扩增和肿瘤浸润淋巴细胞多样性的影响。

从肿瘤、肺和外周血中提取基因组DNA,进行TCRβ CDR3区域深度测序,分析克隆指数、Shannon多样性指数和克隆型共享。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
BD LSRFortessa流式细胞仪BD--
FACSDiva软件BD--
FlowJo软件----
Aperio AT2扫描仪Leica Biosystems--
ImageScope软件Leica Biosystems--
ImageJ软件----
FIJI软件----
CellProfiler v3.5.1软件----
FCS Express 7图像细胞术RUO软件De Novo Software--
nCounter小鼠泛癌免疫肿瘤学360 NanoString基因表达panelNanoString--
RNeasy Micro试剂盒Qiagen--
SuperScript VILO反转录酶Thermo Fisher Scientific--
DNeasy Mini试剂盒Qiagen--
Illumina NextSeq 500测序仪Illumina--
小鼠IFNγ ELISA试剂盒----
小鼠CXCL9 ELISA试剂盒----
小鼠CXCL10 ELISA试剂盒----
小鼠CXCL11 ELISA试剂盒----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床试验设计
患者入组标准(mTNBC定义、既往治疗线数)、PLX剂量调整方案、艾日布林给药方案、12周PFS主要终点评估方法。
阅读提示:Patients and Methods: 患者、临床试验设计和程序;Results: 结果部分
外周血免疫监测
血液样本采集时间点(基线、C1D1、C2D1、C4D1)、流式细胞术抗体panel、PBMC分离和冷冻保存方法、统计模型(线性混合效应模型)及多重检验校正方法。
阅读提示:Patients and Methods: 实验室研究;Figure 2图例
临床前小鼠模型
MMTV-PyMT小鼠年龄和性别(80日龄雌性)、PLX剂量(40 mg/kg/天饲料)、PTX剂量(10 mg/kg静脉注射)、抗体剂量(αPD-1/αPD-L1初始1.0 mg/只,后0.5 mg/只)、治疗开始和终止时间(d80-d105)。
阅读提示:Patients and Methods: 动物饲养和临床前小鼠研究;Figure 3A和4A图例
流式细胞术分析
组织消化方案(胶原酶A浓度、DNAse I浓度、消化时间)、抗体克隆号和荧光标记、Live/Dead染色、数据获取和分析软件(BD LSRFortessa、FlowJo)。
阅读提示:Patients and Methods: 流式细胞术(小鼠部分);补充材料S1关键资源表
TCRβ测序
DNA提取量(PBMC约600 ng,肿瘤和肺约1,500 ng)、TCRβ扩增和测序平台(Illumina NextSeq 500)、生信分析流程(MiXCR、免疫库分析)。
阅读提示:Patients and Methods: TCRβ深度测序;Figure 6图例