CFs培养与鉴定
获取并确认小鼠心脏成纤维细胞纯度及状态。
培养小鼠CFs (FH-M187),用显微镜观察形态,免疫荧光检测vimentin阳性、α-SMA阴性以鉴定CFs。
Mechanism of sodium butyrate, a metabolite of gut microbiota, regulating cardiac fibroblast transdifferentiation via the NLRP3/Caspase-1 pyroptosis pathway.
该研究为体外细胞实验,包含细胞鉴定、功能验证(增殖迁移)和机制验证(通路抑制剂/激活剂),但缺乏动物和临床验证。
小鼠心脏成纤维细胞系FH-M187 TGFβ1诱导的CFs转分化模型
细胞系:小鼠CFs (FH-M187) 来源于富衡生物;培养条件:37°C,95%湿度,5% CO2 诱导与分组:TGFβ1 (10 ng/mL) 处理24 h;NaB (11 mg/mL);CY-09 (1 µM);NSS (5 µM) 检测指标:α-SMA、GSDMD-N、NLRP3、cleaved Caspase-1、IL-1β、IL-18、IL-6、IL-10 实验重复:Western blot、ELISA、CCK-8和划痕实验均重复三次
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并确认小鼠心脏成纤维细胞纯度及状态。
培养小鼠CFs (FH-M187),用显微镜观察形态,免疫荧光检测vimentin阳性、α-SMA阴性以鉴定CFs。
建立CFs向MFs转分化模型,并观察NaB对转分化的影响。
用TGFβ1 (10 ng/mL) 处理CFs 24 h以诱导转分化,部分细胞同时加入NaB (11 mg/mL) 处理。
评估CFs是否成功分化为MFs,并观察NaB对细胞功能的影响。
通过免疫荧光检测α-SMA表达,ELISA检测IL-6和IL-10水平,CCK-8检测细胞增殖,划痕实验检测细胞迁移。
验证NaB是否影响NLRP3/Caspase-1焦亡通路。
Western blot检测NLRP3、cleaved Caspase-1、GSDMD-N蛋白水平,ELISA检测IL-1β和IL-18水平。
验证抑制NLRP3/Caspase-1通路是否能减少CFs转分化。
TGFβ1诱导的同时,加入NLRP3抑制剂CY-09 (1 µM) 或溶剂DMSO对照,检测转分化标志物和通路蛋白。
验证激活NLRP3/Caspase-1通路是否能逆转NaB的抑制作用。
在TGFβ1和NaB处理的基础上,加入NLRP3激活剂NSS (5 µM),检测相关指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 小鼠CFs完全培养基 | Fuheng Biology | PYM188 |
| 细胞处理 | 转化生长因子β1 | MedChemExpress | P01137 |
| 丁酸钠 | Sigma-Aldrich | 303410-5G | |
| CY-09 | Abcam | ab287086 | |
| 尼日利亚霉素钠盐 | Abcam | ab120494 | |
| 免疫荧光 | α-SMA抗体 | Abcam | ab7817 |
| 抗波形蛋白抗体 | Abcam | ab92547 | |
| 山羊抗兔IgG二抗 | Abcam | -- | |
| 山羊抗小鼠IgG二抗 | Abcam | -- | |
| Western blot | BCA试剂盒 | Boster Biological Technology | AR1189 |
| cleaved caspase-1抗体 | Cell Signaling Technology | 4199 | |
| NLRP3抗体 | Abcam | ab263899 | |
| GSDMD-N抗体 | Cell Signaling Technology | #36425 | |
| 辣根过氧化物酶标记二抗 | Boster Biological Technology | BA1054 | |
| 增强化学发光工作液 | Boster Biological Technology | AR1191 | |
| β-actin抗体 | Abcam | ab179467 | |
| ELISA | IL-18 ELISA试剂盒 | NeoBioscience | EMC011.96 |
| IL-1β ELISA试剂盒 | NeoBioscience | EMC001b.96.2 | |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Abcam | ab178013 | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | Abcam | ab185986 | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Boster Biological Technology | AR1199 |
| 显微镜观察 | 奥林巴斯CKX41显微镜 | Olympus | -- |
| 尼康TS100显微镜 | Nikon | -- | |
| 微板读取 | 酶标仪 | Tecan | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞模型与培养 | 细胞系:小鼠CFs (FH-M187);培养条件:37°C,95%湿度,5% CO2;培养基:小鼠CFs完全培养基 阅读提示:见Methods中'Culture and grouping of CFs' |
| 诱导与药物处理 | TGFβ1浓度10 ng/mL;NaB浓度11 mg/mL;CY-09浓度1 µM;NSS浓度5 µM;处理时间均为24 h;溶剂对照:FBS和DMSO 阅读提示:见Methods中'Culture and grouping of CFs' |
| 检测指标与方法 | 免疫荧光检测α-SMA和vimentin;Western blot检测NLRP3、cleaved Caspase-1、GSDMD-N;ELISA检测IL-1β、IL-18、IL-6、IL-10;CCK-8和划痕实验检测增殖和迁移;重复次数均为三次 阅读提示:见Methods中'Immunofluorescence'、'Western blot'、'ELISA'、'CCK-8 assay'和'Cell scratch test' |
| 统计分析 | 数据以均值±标准差表示;多组比较用单因素方差分析,事后检验用Tukey's test;P<0.05视为显著 阅读提示:见Methods中'Statistical analysis' |