数据非依赖采集揭示尿毒症瘙痒患者血清蛋白质组的深度变化

Data independent acquisition reveals in-depth serum proteome changes in uremic pruritus.

作者信息Zhao Wen-Jing, Tan Rui-Zhi, He Si-Yuan, Du Xiao-Mei, Hu Qiong-Dan, Zhang Xiao-Qian, Huang Wen-Hua, Su Hong-Wei, Liu Jian, Zhang Qiong, Wang Li
PMID38577622
发布时间2024-03-21
DOI10.3389/fphys.2024.1287072

实验完整度

本研究包含临床样本的蛋白质组学发现(DIA定量)和ELISA验证,但缺乏动物模型或细胞功能实验,仅涉及生物信息学分析。

主要模型

DKD-UP患者血清 HN-UP患者血清 GN-UP患者血清 非瘙痒尿毒症患者血清 CKD患者血清

重点核对

样本分组:DKD-UP、HN-UP、GN-UP、Negative、CKD各18例 瘙痒程度:FIIQ评分11-15(严重瘙痒) DIA定量筛选差异蛋白阈值:FC>2,p<0.05 ELISA验证COMP在HN-UP和GN-UP组显著升高 质谱平台:DIA模式,Q-Exactive HF X

摘要

引言:尿毒症瘙痒(UP)是尿毒症患者中常见的症状,但其病因和机制仍未完全阐明。鉴于UP的高发病率,识别UP患者血液中蛋白质的特异性变化可能为探索与UP相关的潜在生物学通路提供见解,并有助于生物标志物的探索。方法:本研究采用基于LC-MS/MS的数据非依赖采集(DIA)模式分析血清样本,这些样本来自54名UP患者,分为DKD-UP、HN-UP和GN-UP三个亚组(每组n=18),以及18名无瘙痒的尿毒症患者(Negative)和18名无瘙痒的慢性肾脏病(CKD)患者。通过DIA模式分析,共定量了7075个肽段和959个蛋白质。在这些蛋白质中,DKD-UP与Negative比较时鉴定出4个上调和13个下调的差异表达蛋白(DEPs),HN-UP与Negative比较时鉴定出5个上调和22个下调的DEPs,GN-UP与Negative比较时鉴定出3个上调和23个下调的DEPs。此外,我们对这三个比较组的DEPs进行了交集分析,以获得一组共同的DEPs(COMP)。随后,与CKD组相比,三个UP组总共鉴定出67个共同的DEPs,其中40个DEPs上调,27个DEPs下调。结果:经过基因本体论(GO)、京都基因与基因组百科全书(KEGG)和蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)分析,我们观察到区分UP与CKD的DEPs主要与线粒体功能(MT-CYB、PRDX2、TOMM22)、炎症(CD59、CSF1)、肾损伤(WFDC2)和神经功能(CAP1、VGF)相关。讨论:我们的发现有助于对UP发病机制的分子理解,并揭示这些DEPs可作为UP的潜在生物标志物。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
尿毒症瘙痒患者血清中是否存在与瘙痒相关的特定蛋白质变化,以及这些变化可能涉及的生物学通路。
核心机制
差异表达蛋白涉及线粒体功能障碍、炎症、肾损伤和神经功能异常,其中COMP可能通过与Smad3通路相互作用促进瘙痒发生。
主要证据
通过DIA定量分析比较UP患者与尿毒症无瘙痒患者及CKD患者,鉴定出差异蛋白,并经ELISA验证COMP显著升高。
研究意义
为理解UP的发病机制提供分子基础,并可能为UP的诊断和治疗提供候选生物标志物和新靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者招募与血清样本收集

获取尿毒症瘙痒患者及对照的血清样本,用于蛋白质组学分析。

收集90例患者血清,包括DKD-UP、HN-UP、GN-UP、Negative和CKD组各18例,记录临床指标。

2

血清蛋白提取与质量控制

从血清样本中提取总蛋白并进行质量评估。

采用SDS裂解液裂解,DTT还原,碘乙酰胺烷基化,SPE C18柱富集,定量和凝胶电泳质控。

3

DDA和DIA质谱分析

构建光谱库并进行蛋白质组定量,识别差异表达蛋白质。

使用nanoLC-MS/MS在DDA和DIA模式下分析肽段,采用Q-Exactive HF X质谱仪。

4

蛋白质鉴定与定量分析

基于DDA数据构建光谱库,并对DIA数据进行定量和差异分析。

使用MaxQuant处理DDA数据构建光谱库,DIA数据通过iRT校准和FDR 1%控制,MSstats进行差异分析。

5

生物信息学分析

分析差异蛋白的生物学功能和通路富集。

对差异蛋白进行GO、KEGG和PPI分析,并构建网络图。

6

ELISA验证COMP表达

验证候选蛋白COMP在各组血清中的表达差异。

使用ELISA试剂盒检测各组血清中COMP水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
SDS裂解液----
二硫苏糖醇----
固相萃取C18柱----
Pierce荧光肽定量试剂盒Pierce--
岛津LC-20AB高效液相色谱系统Shimadzu--
Gemini C18色谱柱Phenomenex--
赛默飞UltiMate 3000超高效液相色谱Thermo Fisher Scientific--
Q-Exactive HF X质谱仪Thermo Fisher Scientific--
COMP ELISA试剂盒Neobioscience--
Synergy2多功能酶标仪Bio-Tek--
Cytoscape 3.9.1软件----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者纳入与分组
各组样本量(n=18),瘙痒组FIIQ评分范围(11-15),透析质量参数(Kt/V>1.2, URR>70%)
阅读提示:Materials and methods: Clinical characteristics of patients and controls
蛋白质提取
血清体积、裂解液量、DTT浓度、碘乙酰胺浓度及孵育温度和时间
阅读提示:Materials and methods: Total protein extraction from serum samples
质谱分析
DIA窗口数、扫描范围、梯度条件、质谱参数(分辨率、HCD能量等)
阅读提示:Materials and methods: DDA and DIA analysis by nano-LC-MS/MS
差异蛋白筛选
差异筛选阈值(FC>2, p<0.05),统计模型(线性混合效应模型)
阅读提示:Materials and methods: MSstats differential analysis; Statistical analysis
ELISA验证
试剂盒品牌、检测波长、样本稀释方法
阅读提示:Materials and methods: ELISA