能量应激抑制NOD1信号
探究能量应激是否影响NOD1介导的信号传导
用葡萄糖饥饿、2-DG和二甲双胍处理BMDM和iBMDM细胞,检测NOD1激动剂C12-iE-DAP诱导的p65和p38磷酸化及IL-6释放。
Metabolic orchestration of NOD1 signaling by AMPK-mediated phosphorylation of ZDHHC5.
包含体外细胞模型(HEK293T、iBMDM、BMDM)和生化分析(免疫共沉淀、激酶实验、质谱),并进行了功能验证(NOD1棕榈酰化、膜定位及信号传导)。
小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDM) 永生化BMDM(iBMDM) HEK293T细胞 AMPKα野生型(WT)和双敲除(DKO)小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)
AMPK在Ser296和Ser380磷酸化ZDHHC5 ZDHHC5磷酸化削弱其与Golga7B结合并减少膜定位 ZDHHC5膜定位减少降低NOD1棕榈酰化及信号传导 NOD1激活抑制AMPK活性以维持ZDHHC5功能
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究能量应激是否影响NOD1介导的信号传导
用葡萄糖饥饿、2-DG和二甲双胍处理BMDM和iBMDM细胞,检测NOD1激动剂C12-iE-DAP诱导的p65和p38磷酸化及IL-6释放。
验证AMPK是否介导能量应激对NOD1信号的抑制
使用AMPK抑制剂Compound C和激活剂MK-8722,观察对NOD1信号的影响,并检测AMPK磷酸化水平。
确定能量应激是否通过AMPK影响NOD1棕榈酰化
用代谢应激处理细胞,通过点击化学和ABE检测NOD1棕榈酰化水平,并使用AMPK抑制剂和AMPKα DKO MEFs验证AMPK的作用。
验证AMPK是否与ZDHHC5直接相互作用并磷酸化
通过免疫共沉淀、GST pull-down和体外激酶实验检测AMPK与ZDHHC5的相互作用和磷酸化,并用质谱鉴定磷酸化位点。
阐明AMPK磷酸化对ZDHHC5膜定位和棕榈酰化的影响
检测代谢应激下ZDHHC5的棕榈酰化、亚细胞定位及其与Golga7B的相互作用,并使用2A突变体验证磷酸化位点的作用。
验证AMPK介导的ZDHHC5磷酸化是否影响NOD1信号
在ZDHHC5敲除或敲低的巨噬细胞中回补WT或2A突变体,比较NOD1棕榈酰化、膜定位、信号传导和细胞因子产生。
探究NOD1激活对AMPK-ZDHHC5轴的反馈调节
C12-iE-DAP刺激巨噬细胞,检测ZDHHC5磷酸化、棕榈酰化、膜定位及NOD1棕榈酰化变化,并用二甲双胍激活AMPK观察逆转效果。
初步探索AMPK-ZDHHC5轴在疾病相关NOD1突变体中的调控作用
检测克罗恩病相关NOD1 E266K突变体的棕榈酰化水平及其对葡萄糖饥饿的敏感性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | 11-965-118 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10270-106 | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 巨噬细胞集落刺激因子 | -- | -- | |
| 细胞转染 | 聚乙烯亚胺 | Polysciences Inc | 23966-2 |
| Lipofectamine™ RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher | 13778100 | |
| 药物处理 | 2-脱氧-D-葡萄糖 | MCE | HY-13966 |
| MK-8722 | MCE | HY-111363 | |
| 化合物C | -- | -- | |
| NOD1激动剂 | C12-iE-DAP | Invivogen | tlrl-c12dap |
| 棕榈酰化检测 | 炔基棕榈酸 | Click Chemistry Tools | 1165 |
| 生物素吡啶叠氮化物 | Click Chemistry Tools | 1167 | |
| 2-溴十六烷酸 | Millipore Sigma | 238422 | |
| EZ-Link BMCC-生物素 | Thermo Fisher | 21900 | |
| N-乙基马来酰亚胺 | Millipore Sigma | E3876 | |
| 羟胺溶液 | Millipore Sigma | 467804 | |
| 三[(1-苄基-1H-1,2,3-三唑-4-基)甲基]胺 | Millipore Sigma | 678937 | |
| 五水硫酸铜(II) | Millipore Sigma | 469130 | |
| 三(2-羧乙基)膦 | Millipore Sigma | C4706 | |
| 免疫沉淀 | ANTI-FLAG® M2亲和凝胶 | Millipore Sigma | A2220 |
| EZview™ 红色抗HA亲和凝胶 | Millipore Sigma | E6779 | |
| 蛋白A/G琼脂糖珠 | -- | -- | |
| 链霉亲和素琼脂糖 | Thermo Fisher | SA10004 | |
| 蛋白质检测 | 预染蛋白质标准品 | Thermo Fisher | 26616 |
| 免疫荧光 | DAPI | -- | -- |
| 山羊血清 | -- | -- | |
| 皂苷 | -- | -- | |
| 显微镜 | 尼康A1R荧光共聚焦显微镜 | Nikon | -- |
| ELISA | QuantiCyto®小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | NeoBioscience Technology | EMC004 |
| QuantiCyto®小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | NeoBioscience Technology | EMC102a | |
| 质谱分析 | 质谱仪 | -- | -- |
| 细菌培养 | 大肠杆菌TOP10 | Tiangen | CB104 |
| 大肠杆菌BL21 | Tiangen | CB105 | |
| 大肠杆菌Stbl3 | Thermo Fisher | C739601 | |
| 分子克隆 | pGEX-4T-2载体 | GE healthcare | 28-9545-50 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | 细胞类型(BMDM/iBMDM/HEK293T/MEF),葡萄糖饥饿持续时间(6小时),2-DG浓度(25 mM),二甲双胍浓度(2 mM or 5 mM),MK-8722浓度(2 μM),C12-iE-DAP浓度(1 μg/mL或5 μg/mL)和刺激时间(30分钟或7小时) 阅读提示:STAR Methods 'Cell culture',图1图注,图2图注 |
| AMPK活性调控 | AMPK激活剂MK-8722 (2 μM, 8小时),抑制剂Compound C (5 μM)预处理时间,AMPKα DKO MEFs的使用 阅读提示:STAR Methods 'Cell culture',图1H,图2F,图3G |
| 棕榈酰化检测 | alk-C16浓度(100 μM)和标记时间(8小时),点击化学试剂顺序和浓度,ABE方法中NEM、TCEP、羟胺、生物素-BMCC浓度和孵育时间 阅读提示:STAR Methods 'Click chemistry reaction for palmitoylation' 和 'Acyl-biotin exchange' |
| 蛋白互作与磷酸化 | 免疫沉淀使用的抗体和beads(FLAG M2、HA、Protein A/G),GST pull-down使用的GST融合蛋白和glutathione sepharose,λ磷酸酶处理条件(30°C, 30分钟),体外激酶缓冲液组成(ATP 125 μM, AMP 150 μM, 30°C 30分钟) 阅读提示:STAR Methods 'Immunoprecipitation', 'GST-pull down assay', 'In vitro kinase assay' |
| 亚细胞定位 | 免疫荧光固定和通透条件(4% PFA, 0.1% saponin),抗体浓度和孵育时间,共聚焦显微镜型号(Nikon A1R),亚细胞分级分离的离心步骤(720g, 10,000g, 100,000g)和缓冲液组成(蔗糖缓冲液) 阅读提示:STAR Methods 'Immunofluorescent staining' 和 'Subcellular fractionations assays' |
| 信号传导检测 | p65和p38磷酸化检测抗体(CST 3033, CST 4511),IL-6检测ELISA试剂盒(QuantiCyto,NeoBioscience),刺激时间(30分钟或7小时),统计方法(Student's t test) 阅读提示:图1, 图5, STAR Methods 'ELISA' 和 'Quantification and statistical analysis' |