PDLSCs的分离、培养与鉴定
获取并验证具有间充质干细胞特性的PDLSCs,为后续实验提供细胞模型。
从健康供者拔除的阻生第三磨牙牙周膜组织中分离PDLSCs,通过流式细胞术检测表面标志物(CD73、CD90阳性,CD14、CD34阴性),并通过成骨和成脂分化诱导验证其多向分化能力。
GelMA@ginsenoside Rb3 Targets Inflammatory Microenvironment in Periodontitis via MAPK Pathway.
包含体外细胞实验(PDLSCs鉴定、CCK-8、qRT-PCR、ELISA、Western blot)、体内动物模型(大鼠牙周炎模型、Micro-CT、组织学染色)及网络药理学分析,并进行了功能验证和机制验证。
人牙周膜干细胞(PDLSCs) 大鼠牙周炎模型(Sprague-Dawley大鼠)
PDLSCs分离自22颗拔除的阻生第三磨牙,供者年龄18-23岁,使用MEM-α培养基含20% FBS培养,实验用第3-5代。 体外实验中,PDLSCs用100或200 μM GelMA@G-Rb3预处理2小时,然后用1 μg/mL LPS刺激,共培养24小时(qRT-PCR)或48小时(Western blot和ELISA)。 大鼠牙周炎模型通过结扎左上第一磨牙诱导,21天后移除结扎线,分为对照组、牙周炎组、GelMA组和GelMA@G-Rb3组,每组注射20 μL水凝胶,光聚合(405 nm, 25 mW/cm², 30秒)。 体内实验在治疗28天后收集样本进行Micro-CT和组织学分析。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证具有间充质干细胞特性的PDLSCs,为后续实验提供细胞模型。
从健康供者拔除的阻生第三磨牙牙周膜组织中分离PDLSCs,通过流式细胞术检测表面标志物(CD73、CD90阳性,CD14、CD34阴性),并通过成骨和成脂分化诱导验证其多向分化能力。
制备并验证GelMA水凝胶的物理化学性质和生物相容性,确保其适合作为药物递送载体。
将GelMA粉末溶于含0.25%光引发剂的PBS中,通过光交联形成水凝胶。使用FESEM观察微观结构,测量溶胀率,FTIR分析化学结构,并通过活/死染色评估细胞相容性。
验证GelMA@G-Rb3对LPS诱导的PDLSCs炎症反应的影响。
用不同浓度GelMA@G-Rb3(100, 200 μM)预处理PDLSCs 2小时,再用LPS(1 μg/mL)刺激,通过qRT-PCR检测炎症因子mRNA表达,ELISA检测蛋白分泌,评估抗炎效果。
预测并验证GelMA@G-Rb3调控牙周炎炎症的潜在信号通路。
通过网络药理学分析筛选G-Rb3和牙周炎的靶点,并进行GO和KEGG富集分析。通过Western blot检测LPS刺激和GelMA@G-Rb3处理后PDLSCs中MAPK(p38、ERK1/2)和PI3K/AKT通路相关蛋白的磷酸化水平。
验证GelMA@G-Rb3在大鼠牙周炎模型中的治疗效果。
建立大鼠牙周炎模型,在牙周袋内注射GelMA@G-Rb3(200 μM)并光交联,28天后通过Micro-CT、H&E染色、Masson染色和免疫荧光染色评估牙槽骨吸收、组织再生和信号通路标志物表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | MEM-α培养基 | Yuanpei Biotechnology | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素 | Biosharp | -- | |
| 链霉素 | Biosharp | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Gibco | -- | |
| 流式分析 | CD14-FITC抗体 | BioLegend | -- |
| CD73-PE抗体 | BioLegend | -- | |
| CD90-FITC抗体 | BioLegend | -- | |
| BD FACSCanto II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 成骨分化 | 地塞米松 | Solarbio | -- |
| β-甘油磷酸 | Solarbio | -- | |
| 抗坏血酸 | Solarbio | -- | |
| BCIP/NBT染色 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 茜素红S | Sigma-Aldrich | -- | |
| 成脂分化 | 吲哚美辛 | -- | -- |
| 胰岛素 | -- | -- | |
| 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 油红O | Solarbio | -- | |
| 水凝胶合成 | 甲基丙烯酰化明胶粉末 | EFL | -- |
| PDMS模具 | MicroX Medical Technology | -- | |
| 水凝胶表征 | Apreo场发射扫描电子显微镜 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Nicolet iS50傅里叶变换红外光谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞毒性 | 钙黄绿素AM/碘化丙啶 | Beyotime | -- |
| CCK-8试剂 | Dojindo | -- | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Accurate Biotechnology (Hunan) Co., Ltd. | -- |
| EVo M-MLV反转录试剂盒(含gDNA去除) | Accurate Biotechnology | -- | |
| 2×SYBR Green Pro Taq HS预混液 | Accurate Biotechnology | -- | |
| 基因特异性引物 | Sangon Biotech | -- | |
| Bio-Rad CFX96实时荧光定量PCR仪 | Bioer technology | -- | |
| ELISA | IL-6、IL-8、TGF-β ELISA试剂盒 | Neobioscience | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | -- |
| 蛋白酶/磷酸酶抑制剂 | Solarbio | -- | |
| 4×上样缓冲液 | Solarbio | -- | |
| 10% SDS-PAGE凝胶 | Biosharp | -- | |
| PVDF膜 | Merck Millipore | -- | |
| 快速封闭液 | Affinity LifeScience | -- | |
| 一抗(ERK1/2、p-ERK1/2、p38、p-p38、Akt、p-Akt、PI3K、p-PI3K) | Cell Signaling Technology | -- | |
| GAPDH抗体 | Bioprimacy | -- | |
| ECL化学发光试剂 | Biosharp | -- | |
| ChemiDoc MP成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 动物实验 | 4-0非吸收性外科缝线 | Ming'an Kang | -- |
| Micro-CT | Skyscan 1172微型CT系统 | Bruker MicroCT | -- |
| 组织学 | Masson三色染色 | -- | -- |
| 免疫荧光 | p-p38抗体 | CST | -- |
| p-ERK1/2抗体 | CST | -- | |
| Alexa Fluor 488偶联二抗 | Beyotime | -- | |
| DAPI | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| PDLSCs分离与培养 | 供者年龄范围、牙齿来源、组织处理、培养基成分、培养条件、使用代数。 阅读提示:Methods 4.1 |
| PDLSCs鉴定 | 流式抗体选择(CD73, CD90, CD14, CD34)、成骨成脂诱导条件(诱导剂浓度、时间)。 阅读提示:Methods 4.2, Figure 1 |
| GelMA水凝胶制备 | GelMA浓度、光引发剂浓度、光交联条件(波长、功率、时间)。 阅读提示:Methods 4.3 |
| 体外抗炎实验 | GelMA@G-Rb3处理浓度(100, 200 μM)、LPS浓度(1 μg/mL)、预处理时间(2 h)、共培养时间(24 h for qPCR, 48 h for ELISA/WB)。 阅读提示:Methods 4.4, 4.5, 4.6, 4.8; Results 2.3, 2.4 |
| 动物模型建立与给药 | 大鼠品系、周龄、体重、结扎方法、结扎持续时间、分组、给药体积和浓度、光聚合参数、治疗周期。 阅读提示:Methods 4.9, Figure 7A |
| Micro-CT分析 | 扫描参数、分析软件、测量指标(CEJ-AC距离)。 阅读提示:Methods 4.10 |
| 组织学和免疫荧光 | 固定、脱钙、切片厚度、染色方法、一抗稀释比例、二抗稀释比例、DAPI浓度。 阅读提示:Methods 4.11 |