患者血清炎症因子检测
评估急性痛风患者中LXA4水平与炎症标志物的关系。
收集急性痛风、间歇期痛风患者和健康对照组血清,通过ELISA检测LXA4、IL-1β和TNF-α水平,并进行相关性分析。
Lipoxin A4 attenuates MSU-crystal-induced NLRP3 inflammasome activation through suppressing Nrf2 thereby increasing TXNRD2.
包含体外细胞模型、体内大鼠模型及患者样本三个证据层级;进行了功能验证(基因敲低、抑制剂)和机制验证(ChIP、免疫共沉淀)。
THP-1巨噬细胞(PMA分化的) 骨髓来源巨噬细胞(BMDM) MSU诱导的痛风性关节炎大鼠模型 痛风患者血清样本
LXA4浓度(50-150 nM)及处理时间(1 h) MSU刺激浓度(100 μg/ml)及时间(24 h) LPS priming浓度(300 ng/ml)及时间(3 h) TXNRD2 siRNA敲低及转染试剂(Lipofectamine 2000) 大鼠模型LXA4给药剂量(10 μg/kg)及途径(关节内注射)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估急性痛风患者中LXA4水平与炎症标志物的关系。
收集急性痛风、间歇期痛风患者和健康对照组血清,通过ELISA检测LXA4、IL-1β和TNF-α水平,并进行相关性分析。
验证LXA4对MSU诱导的NLRP3炎症小体激活的影响。
PMA分化的THP-1巨噬细胞和BMDM先用LPS priming,再用不同浓度LXA4预处理,最后MSU刺激,检测IL-1β分泌、caspase-1和IL-1β成熟、GSDMD裂解、细胞死亡和LDH释放。
确定LXA4对NLRP3炎症小体组装的影响。
通过免疫荧光检测ASC斑点形成,Western blot检测ASC寡聚化,免疫共沉淀检测ASC与NLRP3和pro-caspase-1的相互作用。
探究LXA4对ROS产生的抑制作用及其来源。
使用DCFH-DA检测总ROS,使用MitoSOX检测线粒体ROS,通过lucigenin增强化学发光检测NADPH氧化酶活性,并检测线粒体膜电位和Ca2+水平。
验证LXA4抑制Nrf2激活及其下游信号。
通过Western blot和免疫荧光检测Nrf2总蛋白和核转位,并检测下游HO-1、SOD、GPx表达;使用tBHQ(Nrf2激活剂)回补实验验证。
验证LXA4对Klf9和TXNRD2表达及转录调控的影响。
通过Western blot和RT-qPCR检测Klf9和TXNRD2表达,使用ChIP检测Nrf2与Klf9启动子、Klf9与TXNRD2启动子的结合。
验证LXA4对NLRP3炎症小体的抑制依赖于TXNRD2。
通过siRNA敲低THP-1巨噬细胞TXNRD2,检测LXA4对IL-1β释放、ASC斑点、ASC寡聚化、ASC-NLRP3相互作用、ROS及NADPH氧化酶活性的影响。
评估LXA4在体内对MSU诱导的痛风性关节炎的作用。
SD大鼠通过踝关节注射MSU建立急性痛风性关节炎模型,LXA4预处理,检测关节肿胀、炎症细胞浸润、血清IL-1β和TNF-α水平,以及关节组织NLRP3、cleaved caspase-1、成熟IL-1β和Nrf2、Klf9、TXNRD2表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Boster Bio | PYG0016 | |
| 细胞分化 | 佛波酯 | Beyotime Biotechnology | S1819 |
| 细胞刺激 | 脂多糖 | Beyotime Biotechnology | S1732 |
| 药物处理 | 脂氧素A4 | GlpBio | GC18552 |
| N-乙酰半胱氨酸 | Beyotime Biotechnology | S0077 | |
| MitoTEMPO | MCE | HY-112879 | |
| 二苯基碘 | MCE | HY-100965 | |
| 叔丁基对苯二酚 | MCE | HY-100489 | |
| 金诺芬 | MCE | HY-B1123 | |
| 细胞因子检测 | TNF-α ELISA试剂盒 | NeoBioScience | EMC102a |
| IL-1β ELISA试剂盒 | NeoBioScience | EMC001b | |
| 蛋白提取 | 膜/胞浆蛋白提取试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P0033 |
| 核/胞浆蛋白提取试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P0028 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime Biotechnology | P0013B |
| ASC寡聚化检测 | 二琥珀酰亚胺辛二酸酯 | Sigma | S1885 |
| 免疫荧光 | 4',6-二脒基-2-苯基吲哚 | Solarbio Science | D8200 |
| 显微成像 | 共聚焦激光扫描显微镜 | Olympus | -- |
| 细胞凋亡检测 | Hoechst染料 | Beyotime Biotechnology | C0003 |
| LDH检测 | LDH细胞毒性检测试剂盒 | Beyotime Biotechnology | C0016 |
| 离子检测 | MQAE探针 | Beyotime Biotechnology | S1082 |
| EPG-2 AM探针 | Maokang Biotechnology | MX4513 | |
| ROS检测 | 2',7'-二氯荧光素二乙酸酯 | Beyotime Biotechnology | S0033S |
| NADPH氧化酶活性检测 | 光泽精 | GlpBio | GC33485 |
| 还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸 | GlpBio | GC34058 | |
| 线粒体ROS检测 | MitoSOX红色荧光探针 | Invitrogen | M36005 |
| 线粒体形态检测 | Mito-Track Green荧光探针 | Beyotime Biotechnology | C1048 |
| 线粒体膜电位检测 | JC-1探针 | Solarbio Science | M8650 |
| 线粒体钙检测 | Rhod-2M探针 | Yeasen | 40776ES50 |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Thermo Fisher | 15596026 |
| 逆转录 | 逆转录试剂盒 | Takara | 2690S |
| RT-qPCR | SYBR Green预混液 | Takara | 3735S |
| ChIP | ChIP-IT试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P2078 |
| 基因敲低 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | 12566014 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与刺激 | THP-1细胞和BMDM的培养条件、LPS浓度及处理时间、LXA4浓度及处理时间、MSU浓度及刺激时间。 阅读提示:见Materials and Methods中的Cell culture and stimulation,以及Figure 2 legend。 |
| NLRP3炎症小体组装检测 | ASC斑点形成、ASC寡聚化和免疫共沉淀的具体实验条件(如DSS浓度、抗体稀释比例)。 阅读提示:见Materials and Methods中的ASC oligomerization and ASC-speck formation和Co-immunoprecipitation。 |
| ROS检测 | DCFH-DA浓度、MitoSOX浓度、NADPH氧化酶活性检测条件。 阅读提示:见Materials and Methods中的Cellular ROS measure、Mitochondrial ROS detection和Measurement of NADPH oxidase activity。 |
| 基因敲低 | TXNRD2 siRNA序列、转染试剂浓度、转染时间。 阅读提示:见Materials and Methods中的Gene silencing and treatment,以及Supplementary Figure 2。 |
| 动物实验 | 大鼠品系、年龄、体重、MSU注射剂量和体积、LXA4注射剂量和体积、时间点。 阅读提示:见Materials and Methods中的MSU-crystal-induced acute gouty arthritis,以及Figure 9 legend。 |