hADSC衰老模型的建立与表征
建立体外hADSC衰老模型并验证衰老标志物的变化。
通过连续传代(P3-P15)和H2O2处理(100、300、500 nM)诱导hADSC衰老,使用SA-β-Gal染色、qRT-PCR和Western blot检测衰老标志物P16、P21和LMNB1的表达。
LncRNA LYPLAL1-AS1 rejuvenates human adipose-derived mesenchymal stem cell senescence via transcriptional MIRLET7B inactivation.
体外细胞模型、临床样本分析、RNA-seq、ChIRP-seq、双荧光素酶实验及功能验证,多层级证据。
人脂肪间充质干细胞(hADSCs) 293T细胞
hADSCs取自健康供者脂肪组织,培养于含10% FBS的DMEM,37°C、5% CO2 复制性衰老通过连续传代至P10,H2O2诱导衰老使用100、300、500 nM处理2小时 siRNA和miRNA模拟物/抑制剂转染浓度为50 nM,使用lipofectamine 2000 LYPLAL1-AS1过表达使用慢病毒载体,MOI=10,嘌呤霉素筛选稳定株 双荧光素酶实验使用pGL4-MIRLET7B启动子和Renilla荧光素酶内参
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立体外hADSC衰老模型并验证衰老标志物的变化。
通过连续传代(P3-P15)和H2O2处理(100、300、500 nM)诱导hADSC衰老,使用SA-β-Gal染色、qRT-PCR和Western blot检测衰老标志物P16、P21和LMNB1的表达。
鉴定衰老hADSCs中差异表达的lncRNA。
对P3和P10的hADSCs(来自3个供者)进行RNA-seq,筛选差异表达基因,其中LYPLAL1-AS1显著下调,并通过qRT-PCR验证。
验证LYPLAL1-AS1表达与年龄的相关性。
收集42例健康供者外周血(年轻组n=21,中年组n=21),提取RNA,qRT-PCR检测LYPLAL1-AS1表达,并分析其与年龄的相关性。
验证LYPLAL1-AS1对hADSC衰老的调控作用。
使用siRNA敲低或慢病毒过表达LYPLAL1-AS1,检测SA-β-Gal染色、衰老标志物表达。
鉴定LYPLAL1-AS1直接结合的DNA区域及其调控的基因。
通过ChIRP-seq分析LYPLAL1-AS1在全基因组上的结合位点,发现其结合MIRLET7B启动子区域,并通过双荧光素酶实验验证其对启动子活性的抑制。
验证miR-let-7b在hADSC衰老中的功能及其与LYPLAL1-AS1的调控关系。
在hADSCs中转染miR-let-7b模拟物或抑制剂,检测衰老标志物;随后过表达LYPLAL1-AS1并同时转染miR-let-7b模拟物,观察是否逆转衰老效应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 地塞米松 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 异丁基甲基黄嘌呤 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 抗坏血酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| β-甘油磷酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 油红O | Sigma-Aldrich | -- | |
| ALP染色试剂盒 | Institute of Hematology and Blood Diseases Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | -- | -- | |
| 流式分析 | PE偶联抗体(针对CD29、CD73、CD44、CD90、CD105、CD206、CD34、CD45、CD106和HLA-DR) | BD Biosciences | -- |
| FITC偶联CD206抗体 | BD Biosciences | -- | |
| 同型对照抗体 | BD Biosciences | -- | |
| Accuri C6流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 衰老诱导 | 过氧化氢 | -- | -- |
| 衰老检测 | 衰老β-半乳糖苷酶染色试剂盒 | YEASEN | -- |
| 转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| RNA提取 | MolPure血液RNA提取试剂盒 | YEASEN | -- |
| TRIzol试剂 | Invitrogen | -- | |
| 逆转录 | M-MLV逆转录酶试剂盒 | Takara | -- |
| qPCR | SYBR-Green预混液 | YEASEN | -- |
| QuantStudio设计分析系统 | ABI | -- | |
| RNA-seq | HiSeq 4000测序平台 | Illumina | -- |
| 亚细胞分离 | NE-PER核和胞质提取试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| FISH | RNA FISH试剂盒 | RiboBio | -- |
| anti-LYPLAL1-AS1、anti-U6、anti-18S探针 | RiboBio | -- | |
| DAPI染料 | -- | -- | |
| 荧光显微镜 | Carl Zeiss | -- | |
| ChIRP-seq | BiotinTEG生物素标记 | -- | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 抗P16抗体 | Proteintech | 10883-1-AP | |
| 抗P21抗体 | Proteintech | 10355-1-AP | |
| 抗P53抗体 | Proteintech | 10442-1-AP | |
| 抗LMNB1抗体 | Proteintech | 66095-1-Ig | |
| HRP偶联抗兔IgG | NeoBioscience | -- | |
| HRP偶联抗鼠IgG | NeoBioscience | -- | |
| 双荧光素酶实验 | pGL4基础荧光素酶报告载体 | Promega | -- |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- | |
| 统计分析 | GraphPad Prism7软件 | GraphPad Prism | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与衰老诱导 | hADSC来源(健康供者脂肪组织);培养条件(含10% FBS的DMEM,37°C、5% CO2);传代比例(1:2);H2O2处理浓度(100、300、500 nM)和处理时间(2小时) 阅读提示:Methods: Cell culture and differentiation, Induction of hADSCs senescence; Figure legends 1A-F |
| RNA提取与qRT-PCR | RNA提取方法(TRIzol或MolPure Blood RNA Kit);逆转录试剂(M-MLV);qPCR试剂(SYBR-Green Master mix);内参基因(GAPDH, U6);引物序列 阅读提示:Methods: RNA extraction and quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR); Additional file 6: Table S2 |
| 细胞转染 | siRNA/miRNA模拟物/抑制剂浓度(50 nM);转染试剂(lipofectamine 2000);转染时间(24-48小时) 阅读提示:Methods: Cell transfection |
| 慢病毒过表达 | LYPLAL1-AS1全长序列插入LV5-EF1-a-EGFP-Puro载体;MOI=10;嘌呤霉素筛选 阅读提示:Methods: Cell transfection |
| 双荧光素酶实验 | MIRLET7B启动子序列(2000bp)插入pGL4载体;共转染量(0.5 μg表达载体,0.5 μg pcDNA3.1,10 ng Renilla);检测时间(48小时) 阅读提示:Methods: Dual-luciferase assay; Additional file 6: Table S3 |
| ChIRP-seq | 细胞数量(2×10^7);交联剂(1%戊二醛);探针设计(每100 bp);生物素标记;测序平台(HiSeq 4000) 阅读提示:Methods: Chromatin isolation by RNA purification (ChIRP)-sequencing |