GSK-J4通过激活内质网应激靶向PERK-c-Myc通路抑制结节性硬化症的肿瘤发生

GSK-J4 Suppresses Tumorigenesis by Targeting the PERK-c-Myc Pathway Through Endoplasmic Reticulum Stress Activation in Tuberous Sclerosis Complex.

作者信息Xin Lei, Tao Lang, Ping Li, Changxin Wu
PMID41977261
发布时间2026-03-27
DOI10.3390/ijms27073067

实验完整度

包含细胞实验(原代MEFs)和动物模型(Tsc1+/−和Tsc2+/−小鼠)两个独立证据层级,并进行了功能验证(细胞周期、凋亡)和机制验证(ERS通路、PERK抑制、c-Myc调控)。

主要模型

原代Tsc1+/−和Tsc2+/−小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) Tsc1+/−和Tsc2+/−小鼠(C57BL/6背景)

重点核对

GSK-J4处理浓度(如2 μM、6 μM)和处理时间(48小时) 原代MEFs分离方法(E12.5胚胎,P4-P8代) 动物模型:12-13月龄雄性Tsc1+/−和Tsc2+/−小鼠,每组n=3 联合用药方案:GSK-J4(0.4 mg/kg,皮下注射,每日一次,共10天)和雷帕霉素(1 mg/kg,腹腔注射,隔日一次,共20天) PERK抑制剂GSK2606414(10 μM)和ERS抑制剂4-PBA(3 mM)的使用

摘要

针对结节性硬化症(TSC)现有疗法的疗效有限且不一致,促使人们探索包括表观遗传调控在内的新策略。GSK-J4是一种诱导整体H3K27me3积累的药物,表现出广泛的抗肿瘤活性。然而,其在TSC中的治疗潜力仍不清楚。在本研究中,我们报道GSK-J4抑制原代Tsc1+/−和Tsc2+/−小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)的细胞周期进程并诱导凋亡。机制上,Tsc1或Tsc2缺失降低了整体H3K27me3水平,与细胞活力增加、细胞周期加速和凋亡抑制相关,而这些表型可被GSK-J4逆转。此外,GSK-J4通过激活PERK-ATF4-CHOP轴触发内质网应激(ERS),同时下调原癌基因c-Myc,勾勒出一条GSK-J4→p-PERK→c-Myc抑制通路。值得注意的是,GSK-J4与雷帕霉素协同增强细胞周期阻滞和凋亡。在体内,这种组合改善了Tsc1或Tsc2缺陷模型中的肾功能损害,提示对于对哺乳动物雷帕霉素靶蛋白复合物1(mTORC1)抑制剂应答不佳的TSC患者,这可能是一种有前景的治疗策略。我们的研究阐明了GSK-J4在Tsc缺陷背景下一种特定的ERS依赖性抗肿瘤机制,并证明了表观遗传抑制剂与mTORC1抑制剂联合的协同功效。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
GSK-J4能否通过表观遗传调控抑制TSC相关的肿瘤发生,其潜在机制是什么?
核心机制
GSK-J4通过激活内质网应激(ERS)依赖性PERK-ATF4-CHOP轴,进而下调原癌基因c-Myc,从而抑制细胞增殖并诱导凋亡。
主要证据
原代Tsc1+/−和Tsc2+/− MEFs中,GSK-J4剂量依赖性诱导细胞周期阻滞(S期积累)和凋亡,上调GRP78、p-PERK、CHOP、ATF4,下调c-Myc;使用PERK抑制剂GSK2606414逆转了c-Myc的下调及细胞效应;与雷帕霉素联用体内改善肾功能。
研究意义
研究表明GSK-J4与雷帕霉素联合可能为对mTORC1抑制剂应答不佳的TSC患者提供一种有前景的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证Tsc1或Tsc2缺陷对细胞增殖和凋亡的影响

确认Tsc1或Tsc2杂合缺失是否促进增殖并抑制凋亡。

使用原代Tsc1+/−和Tsc2+/− MEFs,通过CCK-8、EdU、流式细胞术和Western blot检测增殖、细胞周期和凋亡标志物。

2

检测Tsc1或Tsc2缺陷对H3K27me3水平的影响

探究Tsc1或Tsc2缺失是否导致H3K27me3水平降低。

通过免疫荧光和Western blot检测WT、Tsc1+/−和Tsc2+/− MEFs中H3K27me3水平。

3

评估GSK-J4对细胞周期和凋亡的影响

探究GSK-J4是否能逆转Tsc缺陷细胞的促增殖和抗凋亡表型。

用不同浓度GSK-J4处理原代Tsc1+/−和Tsc2+/− MEFs及WT MEFs,通过流式细胞术和Western blot检测细胞周期和凋亡。

4

验证GSK-J4诱导内质网应激

确定GSK-J4是否通过激活ERS发挥抗肿瘤作用。

检测GSK-J4处理后GRP78表达,并使用ERS抑制剂4-PBA共处理,评估细胞周期和凋亡变化。

5

阐明GSK-J4激活PERK通路并下调c-Myc

探究GSK-J4是否通过PERK-ATF4-CHOP轴抑制c-Myc表达。

通过qPCR检测ERS相关转录因子,Western blot检测p-PERK、CHOP、c-Myc,免疫荧光检测ATF4和c-Myc,并使用PERK抑制剂GSK2606414验证。

6

评估GSK-J4与雷帕霉素联合的协同效应及体内疗效

检验GSK-J4与雷帕霉素联用是否协同抑制肿瘤生长并改善肾功能。

体外:CCK-8、流式检测联合用药对细胞活力和凋亡的影响,CompuSyn分析协同指数。体内:Tsc1+/−和Tsc2+/−小鼠给药后检测BUN和CRE水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基BOSTER--
胎牛血清SORFA--
胰蛋白酶-EDTA----
200目尼龙膜Solarbio--
CCK-8试剂盒NCM Biotech--
BeyoClick™ EdU-555细胞增殖试剂盒Beyotime Biotech IncC0075S
DNA定量分析试剂盒Solarbio--
Annexin V-AbFluor™ 488凋亡检测试剂盒Abbkine--
TRIzol试剂Invitrogen--
Prime Script RT Master MixTAKARA--
iQ SYBR Green SupermixMei5 Bioservices Co., Ltd--
qPCR引物Sangon Biotech--
PAGE凝胶快速制备试剂盒EpiZyme--
PVDF膜GE--
Western blot设备Bio-Rad--
CyclinD1抗体Zenbio--
GRP78抗体Zenbio--
p-PERK抗体Zenbio--
PERK抗体Zenbio--
CHOP抗体Zenbio--
ATF4抗体Zenbio--
c-Myc抗体Zenbio--
Cleaved-caspase3抗体Wanleibio--
PCNA抗体Elabscience--
TSC1抗体Proteintech--
TSC2抗体Proteintech--
P70S6K抗体Proteintech--
p-P70S6K抗体Proteintech--
H3抗体Solarbio--
H3K27me3抗体Solarbio--
Tubulin抗体Servicebio--
二抗Proteintech--
Amersham Imager 600----
Triton X-100----
牛血清白蛋白Solarbio--
DAPISolarbio--
激光扫描共聚焦显微镜Zeiss--
BUN检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute--
CRE检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute--
GSK-J4----
雷帕霉素----
4-苯基丁酸----
GSK2606414----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
MEFs来源(Tsc1+/−和Tsc2+/−原代细胞,来自Peking Union Medical College)
阅读提示:Materials and Methods, 4.1. Cell Cultures
药物处理
GSK-J4浓度(如2、4、6 µM)和处理时间(48小时)
阅读提示:Figure legends 3, 5, 6
药物处理
ERS抑制剂4-PBA浓度(3 mM)与GSK-J4(6 µM)联用
阅读提示:Figure 4 legend
药物处理
PERK抑制剂GSK2606414浓度(10 µM)与GSK-J4(6 µM)联用
阅读提示:Figure 5 legend
动物实验
小鼠基因型(Tsc1+/−和Tsc2+/−,C57BL/6背景),年龄12-13月龄,雄性,每组n=3
阅读提示:Materials and Methods, 4.12. In Vivo Animal Models
动物实验
给药方案:GSK-J4(0.4 mg/kg,s.c.每日一次,10天);雷帕霉素(1 mg/kg,i.p.隔日一次,20天)
阅读提示:Materials and Methods, 4.12. In Vivo Animal Models
统计
统计方法:t-test或one-way ANOVA,p<0.05为显著
阅读提示:Materials and Methods, 4.13. Statistical Analysis