分离破骨细胞前体细胞
评估不同分离方法(红细胞裂解法和Ficoll-Paque密度梯度离心)对小鼠骨髓中破骨细胞前体细胞获得的影响。
从6周龄雄性C57BL/6小鼠(共30只)分离股骨和胫骨,离心获取骨髓细胞;红细胞裂解法(加入1 mL红细胞裂解缓冲液,室温3分钟)和Ficoll-Paque梯度离心法(450 ×g,35分钟)分别获得细胞,过夜培养后收集非贴壁细胞。
Optimizing in vitro osteoclastogenesis: bone marrow-derived macrophages differentiation and cell density as critical determinants.
包含三种方法的系统比较,使用TRAP染色、骨吸收实验、F-actin环染色、RT-qPCR、Western blot和流式细胞术等多个独立证据层级,并进行功能验证和机制验证。
小鼠骨髓来源单核/巨噬细胞(BMMs) 骨髓来源巨噬细胞(BMDM)
细胞密度:Method 1为0.84〜1.4×10⁶ cells/cm²,Method 2和3为2.8〜5.6×10⁴ cells/cm² M-CSF浓度:30 ng/mL RANKL浓度:50 ng/mL 分化时间:TRAP染色3-4天,骨吸收实验7天,F-actin环染色4天,RT-qPCR和Western blot 4天 细胞来源:6周龄雄性C57BL/6小鼠,共30只
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估不同分离方法(红细胞裂解法和Ficoll-Paque密度梯度离心)对小鼠骨髓中破骨细胞前体细胞获得的影响。
从6周龄雄性C57BL/6小鼠(共30只)分离股骨和胫骨,离心获取骨髓细胞;红细胞裂解法(加入1 mL红细胞裂解缓冲液,室温3分钟)和Ficoll-Paque梯度离心法(450 ×g,35分钟)分别获得细胞,过夜培养后收集非贴壁细胞。
将BMMs分化为骨髓来源巨噬细胞(BMDM),以富集破骨细胞前体细胞。
非贴壁细胞以2.0 × 10⁵ cells/cm²的密度接种于6孔板,在含30 ng/mL M-CSF的完全培养基中培养3天诱导BMDM分化,然后用StemPro Accutase消化收集。
比较三种方法在最佳密度下破骨细胞分化的效率。
将前体细胞或BMDM以不同密度接种于24或12孔板,在含30 ng/mL M-CSF和50 ng/mL RANKL的完全培养基中诱导分化,每两天半量换液。
评估不同条件下破骨细胞的形成、骨吸收功能和肌动蛋白环结构。
通过TRAP染色(3-4天)、骨吸收实验(7天)、F-actin环染色(4天)评估破骨细胞的形成和功能。
验证破骨细胞特异性基因(Trap、Ctsk、Mmp9、Atp6v0d2)的mRNA和蛋白表达水平。
诱导4天后提取RNA进行RT-qPCR(TRIzol法,2^−ΔΔCt法),并提取蛋白进行Western blot(RIPA裂解,BCA定量,SDS-PAGE)。
评估三种方法分离的前体细胞的活细胞比例和CD11b、F4/80表达。
对分化前的细胞进行流式分析,使用CD11b-PE-Cy7、F4/80-APC和Calcein AM-FITC染色。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-最低必需培养基 | Gibco | C12571500BT |
| 胎牛血清 | Gibco | A5669701 | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| 细胞分离 | 红细胞裂解液 | Sigma-Aldrich | R7757 |
| Ficoll-Paque | Cytiva | 17144003-1 | |
| 细胞培养 | 70 µm细胞筛网 | Corning | 431751 |
| 12孔板 | Thermo Fisher Scientific | 1506289 | |
| 24孔板 | Thermo Fisher Scientific | 142475 | |
| 6孔板 | Thermo Fisher Scientific | 140675 | |
| 重组小鼠M-CSF | BioLegend | 576406 | |
| 重组小鼠RANKL | R&D Systems | 462-TEC-010 | |
| StemPro Accutase细胞解离试剂 | Thermo Fisher Scientific | A1110501 | |
| TRAP染色 | 白细胞酸性磷酸酶(TRAP)试剂盒 | Sigma-Aldrich | 387A |
| 骨吸收实验 | 骨吸收检测板 | Cosmo Bio | CSR-BRA-24P |
| F-actin环染色 | TRITC标记鬼笔环肽 | Solarbio | CA1610 |
| Hoechst染料 | Solarbio | C0030 | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596018CN |
| DNase I | Accurate Biology | AG12001 | |
| PrimeScript RT预混液 | Takara Bio | RR036A | |
| FastStart Universal SYBR Green Master (ROX) | Roche | 4913914001 | |
| 引物 | Sangon Biotech | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Huaxingbio | HX1863 |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Huaxingbio | HX1862 | |
| BCA检测 | Thermo Fisher Scientific | A55864 | |
| 5×上样缓冲液 | Huaxingbio | HX1760 | |
| SDS-PAGE凝胶 | ACE Biotechnology | ET12412Gel | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| 快速封闭液 | Huaxingbio | HX3307 | |
| 辣根过氧化物酶标记二抗(抗兔) | Proteintech | SA00001-2 | |
| ECL底物 | NCM Biotech | P10300 | |
| 抗TRAP抗体 | Abcam | ab191406 | |
| 抗CTSK抗体 | Abcam | ab187647 | |
| 抗MMP9抗体 | -- | 24317T | |
| 抗ATP6V0D2抗体 | Novus Biologicals | NBP1-54595 | |
| 抗GAPDH抗体 | CST | 5174S | |
| 流式细胞术 | 钙黄绿素AM-FITC | Elabscience | E-CK-A354 |
| CD11b-PE-Cy7 | Elabscience | E-AB-F1081H | |
| F4/80-APC | Elabscience | E-AB-F0995E | |
| 纯化抗小鼠CD16/32 | Elabscience | E-AB-F0997A | |
| RT-qPCR | NanoDrop Eight分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 7500实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| F-actin环染色 | Leica TCS SP8共聚焦显微镜 | Leica Microsystems | -- |
| TRAP染色 | IX53光学显微镜 | Olympus | -- |
| Western blot | 化学发光成像系统 | Vilber Lourmat | -- |
| 流式细胞术 | Agilent NovoCyte流式细胞仪 | Agilent Technologies | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、性别、年龄、数量、饲养条件 阅读提示:Methods: Animals |
| 前体细胞分离 | 离心速度和时间、红细胞裂解时间、Ficoll-Paque离心参数 阅读提示:Methods: Isolation of osteoclast precursor cells |
| BMDM分化 | M-CSF浓度、接种密度、培养时间 阅读提示:Methods: Method 2 and Method 3 |
| 破骨细胞分化 | M-CSF和RANKL浓度、细胞密度、培养时间、换液频率 阅读提示:Methods: Osteoclast differentiation |
| 功能检测 | TRAP染色固定时间、骨吸收实验处理时间,F-actin染色固定时间 阅读提示:Methods: TRAP staining, Bone resorption assay, F-actin ring staining |
| 分子表达检测 | RNA提取试剂、逆转录体系、qPCR循环条件、内参基因 阅读提示:Methods: RNA isolation and qPCR, Protein extraction and western blot |