优化体外破骨细胞生成:骨髓来源巨噬细胞分化和细胞密度是关键决定因素。

Optimizing in vitro osteoclastogenesis: bone marrow-derived macrophages differentiation and cell density as critical determinants.

作者信息Jie Li, Xinyi Sun, Changqing Yan, Weiwei Zhao, Dandan Liu, Yang Liu, Shuguo Zheng
PMID41907475
期刊PeerJ
发布时间2026-03-25
DOI10.7717/peerj.20995

实验完整度

包含三种方法的系统比较,使用TRAP染色、骨吸收实验、F-actin环染色、RT-qPCR、Western blot和流式细胞术等多个独立证据层级,并进行功能验证和机制验证。

主要模型

小鼠骨髓来源单核/巨噬细胞(BMMs) 骨髓来源巨噬细胞(BMDM)

重点核对

细胞密度:Method 1为0.84〜1.4×10⁶ cells/cm²,Method 2和3为2.8〜5.6×10⁴ cells/cm² M-CSF浓度:30 ng/mL RANKL浓度:50 ng/mL 分化时间:TRAP染色3-4天,骨吸收实验7天,F-actin环染色4天,RT-qPCR和Western blot 4天 细胞来源:6周龄雄性C57BL/6小鼠,共30只

摘要

背景:破骨细胞是骨吸收和骨重塑所必需的多核细胞。在健康的骨重塑中,破骨细胞活性与成骨细胞活性紧密偶联,但在多种病理条件下这种偶联被破坏,例如佩吉特骨病和疲劳性骨折延迟愈合。因此,体外破骨细胞生成模型对于研究破骨细胞分化和相关骨疾病的机制至关重要。优化这些模型对于推进骨代谢研究和治疗策略具有重要意义。方法:在本研究中,我们比较了三种从小鼠骨髓来源的单核/巨噬细胞(BMMs)诱导破骨细胞分化的方法。方法1涉及直接分离BMMs,方法2将BMMs分化为骨髓来源的巨噬细胞(BMDM),方法3在M-CSF诱导BMDM分化之前加入Ficoll-Paque密度梯度离心。对于破骨细胞分化,所有三种方法均使用含有30 ng/mL M-CSF和50 ng/mL RANKL的完全培养基。首先使用TRAP染色、骨吸收实验、F-actin环染色、定量逆转录聚合酶链反应(RT-qPCR)和Western blot确定每种方法的最佳铺板密度,然后应用相同的检测方法比较三种方法在其最佳密度下的破骨细胞生成效率。结果:我们发现,方法2(将BMMs分化为BMDM)产生了最高比例的活细胞和破骨细胞前体细胞,并表现出最有效的破骨细胞分化。方法2和3的最佳破骨细胞生成细胞密度为2.8 ∼ 5.6 × 10⁴ cells/cm²。相比之下,方法3尽管有额外的纯化步骤,但其前体细胞纯度与方法2相比没有显著提高,表明额外的纯化并未增强分化效率。结论:本研究强调了前体细胞纯度和铺板密度在破骨细胞分化中的重要性。方法2(BMMs至BMDM)为体外破骨细胞生成提供了一种简化而有效的方法,优化了研究骨吸收和相关疾病的条件。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何优化体外破骨细胞生成,特别是评估不同分离和分化方法以及细胞密度对破骨细胞分化效率和功能的影响。
核心机制
M-CSF介导的BMMs预分化富集了破骨细胞前体细胞,而铺板密度是决定分化效率的主导因素,过高密度可能通过抑制细胞融合能力而损害破骨细胞分化。
主要证据
流式细胞术显示Method 2产生最高比例的活细胞(79.5%)和CD11b+F4/80+前体细胞(87.4%);TRAP染色、骨吸收、F-actin环、RT-qPCR和Western blot一致证明Method 2在最佳密度下破骨细胞生成效率最高。
研究意义
提供了标准化和可重复的体外破骨细胞生成策略,有助于骨相关疾病的基础研究和药物发现。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

分离破骨细胞前体细胞

评估不同分离方法(红细胞裂解法和Ficoll-Paque密度梯度离心)对小鼠骨髓中破骨细胞前体细胞获得的影响。

从6周龄雄性C57BL/6小鼠(共30只)分离股骨和胫骨,离心获取骨髓细胞;红细胞裂解法(加入1 mL红细胞裂解缓冲液,室温3分钟)和Ficoll-Paque梯度离心法(450 ×g,35分钟)分别获得细胞,过夜培养后收集非贴壁细胞。

2

M-CSF诱导BMDM分化

将BMMs分化为骨髓来源巨噬细胞(BMDM),以富集破骨细胞前体细胞。

非贴壁细胞以2.0 × 10⁵ cells/cm²的密度接种于6孔板,在含30 ng/mL M-CSF的完全培养基中培养3天诱导BMDM分化,然后用StemPro Accutase消化收集。

3

破骨细胞分化

比较三种方法在最佳密度下破骨细胞分化的效率。

将前体细胞或BMDM以不同密度接种于24或12孔板,在含30 ng/mL M-CSF和50 ng/mL RANKL的完全培养基中诱导分化,每两天半量换液。

4

功能检测

评估不同条件下破骨细胞的形成、骨吸收功能和肌动蛋白环结构。

通过TRAP染色(3-4天)、骨吸收实验(7天)、F-actin环染色(4天)评估破骨细胞的形成和功能。

5

分子表达检测

验证破骨细胞特异性基因(Trap、Ctsk、Mmp9、Atp6v0d2)的mRNA和蛋白表达水平。

诱导4天后提取RNA进行RT-qPCR(TRIzol法,2^−ΔΔCt法),并提取蛋白进行Western blot(RIPA裂解,BCA定量,SDS-PAGE)。

6

流式细胞术分析

评估三种方法分离的前体细胞的活细胞比例和CD11b、F4/80表达。

对分化前的细胞进行流式分析,使用CD11b-PE-Cy7、F4/80-APC和Calcein AM-FITC染色。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-最低必需培养基GibcoC12571500BT
胎牛血清GibcoA5669701
青霉素/链霉素Gibco15140-122
红细胞裂解液Sigma-AldrichR7757
Ficoll-PaqueCytiva17144003-1
70 µm细胞筛网Corning431751
12孔板Thermo Fisher Scientific1506289
24孔板Thermo Fisher Scientific142475
6孔板Thermo Fisher Scientific140675
重组小鼠M-CSFBioLegend576406
重组小鼠RANKLR&D Systems462-TEC-010
StemPro Accutase细胞解离试剂Thermo Fisher ScientificA1110501
白细胞酸性磷酸酶(TRAP)试剂盒Sigma-Aldrich387A
骨吸收检测板Cosmo BioCSR-BRA-24P
TRITC标记鬼笔环肽SolarbioCA1610
Hoechst染料SolarbioC0030
TRIzol试剂Invitrogen15596018CN
DNase IAccurate BiologyAG12001
PrimeScript RT预混液Takara BioRR036A
FastStart Universal SYBR Green Master (ROX)Roche4913914001
引物Sangon Biotech--
RIPA裂解液HuaxingbioHX1863
蛋白酶抑制剂混合物HuaxingbioHX1862
BCA检测Thermo Fisher ScientificA55864
5×上样缓冲液HuaxingbioHX1760
SDS-PAGE凝胶ACE BiotechnologyET12412Gel
PVDF膜MilliporeIPVH00010
快速封闭液HuaxingbioHX3307
辣根过氧化物酶标记二抗(抗兔)ProteintechSA00001-2
ECL底物NCM BiotechP10300
抗TRAP抗体Abcamab191406
抗CTSK抗体Abcamab187647
抗MMP9抗体--24317T
抗ATP6V0D2抗体Novus BiologicalsNBP1-54595
抗GAPDH抗体CST5174S
钙黄绿素AM-FITCElabscienceE-CK-A354
CD11b-PE-Cy7ElabscienceE-AB-F1081H
F4/80-APCElabscienceE-AB-F0995E
纯化抗小鼠CD16/32ElabscienceE-AB-F0997A
NanoDrop Eight分光光度计Thermo Fisher Scientific--
7500实时荧光定量PCR系统Applied Biosystems--
Leica TCS SP8共聚焦显微镜Leica Microsystems--
IX53光学显微镜Olympus--
化学发光成像系统Vilber Lourmat--
Agilent NovoCyte流式细胞仪Agilent Technologies--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、性别、年龄、数量、饲养条件
阅读提示:Methods: Animals
前体细胞分离
离心速度和时间、红细胞裂解时间、Ficoll-Paque离心参数
阅读提示:Methods: Isolation of osteoclast precursor cells
BMDM分化
M-CSF浓度、接种密度、培养时间
阅读提示:Methods: Method 2 and Method 3
破骨细胞分化
M-CSF和RANKL浓度、细胞密度、培养时间、换液频率
阅读提示:Methods: Osteoclast differentiation
功能检测
TRAP染色固定时间、骨吸收实验处理时间,F-actin染色固定时间
阅读提示:Methods: TRAP staining, Bone resorption assay, F-actin ring staining
分子表达检测
RNA提取试剂、逆转录体系、qPCR循环条件、内参基因
阅读提示:Methods: RNA isolation and qPCR, Protein extraction and western blot