Endarachne binghamiae提取物通过调节NOX-iNOS串扰抑制NLRP3炎症小体激活从而缓解结肠炎

Endarachne binghamiae Extract Alleviates Colitis by Suppressing NLRP3 Inflammasome Activation via Regulation of NOX-iNOS Crosstalk.

作者信息Sang Seop Lee, Sang Hoon Lee, So Yeon Kim, Bong Ho Lee, Yung-Choon Yoo
PMID41898537
发布时间2026-03-14
DOI10.3390/ijms27062674

实验完整度

包含体外BMDM模型、体内DSS结肠炎模型及患者转录组数据,并进行了ELISA、Western blot、免疫荧光等功能和机制验证。

主要模型

骨髓来源巨噬细胞(BMDM) DSS诱导的结肠炎小鼠模型(C57BL/6) LPS刺激的RAW 264.7巨噬细胞

重点核对

EB-WE浓度:100和200 µg/mL(体外) LPS和ATP处理浓度及时间:LPS 1 µg/mL(4-5h),ATP 5 mM(30min) DSS浓度及处理时间:2.5%(w/v)自由饮水5天 EB-WE给药剂量及方式:2或5 mg/天口服灌胃 实验重复数:体外和体内实验n=3

摘要

炎症性肠病(IBD)由遗传易感性和慢性炎症触发,先天免疫复合物NLRP3炎症小体的异常激活在其发病机制中起关键作用。本研究在多种炎症模型中研究了褐藻Endarachne binghamiae热水提取物(EB-WE)对NLRP3炎症小体激活的抑制作用,重点关注其抗氧化特性。在骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)中,使用LPS和ATP诱导NLRP3炎症小体激活,EB-WE预处理(100、200 µg/mL)显著减少了IL-1β和IL-18的分泌。共聚焦免疫荧光分析进一步证实,EB-WE抑制了NLRP3-ASC/caspase-1复合物的形成。此外,使用DSS诱导的小鼠模型评估了EB-WE的体内抗IBD功效,该模型中结肠炎症和NLRP3介导的反应显著。口服EB-WE(2或5 mg/天)显著改善了临床症状,如体重减轻、腹泻和直肠出血,并显著降低了疾病活动指数(DAI)。EB-WE还降低了血清促炎细胞因子水平以及结肠组织中NLRP3炎症小体相关分子在基因和蛋白水平上的表达。在BMDMs和IBD小鼠模型中,我们进一步分析了涉及NOX2-iNOS的上游调控通路。EB-WE有效抑制了NOX-iNOS轴的激活和NF-κB磷酸化,从而减轻了与DSS诱导的氧化应激和中性粒细胞/巨噬细胞浸润相关的炎症小体激活。总之,这些结果表明EB-WE通过抗氧化机制调节NOX-iNOS轴和NF-κB通路,有效抑制NLRP3炎症小体的形成和激活。这些发现表明,EB-WE有望成为治疗慢性炎症性疾病的新型海洋来源天然治疗剂。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
本研究旨在探究褐藻Endarachne binghamiae热水提取物(EB-WE)是否通过抗氧化机制抑制NLRP3炎症小体激活,从而缓解DSS诱导的结肠炎。
核心机制
EB-WE通过抑制NOX2/NOX4表达和TXNIP水平,调节NOX-iNOS轴,减少氧化应激和过氧亚硝酸盐生成,进而抑制NF-κB磷酸化和NLRP3炎症小体组装。
主要证据
在BMDM中,EB-WE降低IL-1β和IL-18分泌及NLRP3-ASC/caspase-1复合物形成;在DSS结肠炎小鼠中,EB-WE改善临床症状并抑制炎症因子和NLRP3相关蛋白表达。
研究意义
EB-WE作为海洋来源天然产物,可能成为治疗慢性炎症性疾病的新型治疗剂。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外巨噬细胞炎症小体激活模型

评估EB-WE对NLRP3炎症小体激活的抑制作用

使用LPS和ATP刺激骨髓来源巨噬细胞(BMDM),检测IL-1β和IL-18分泌、NLRP3炎症小体复合物形成及细胞焦亡相关蛋白表达。

2

体外活性成分功能验证

验证EB-WE中主要活性成分对NOX、iNOS和XO活性的影响

在LPS刺激的RAW 264.7巨噬细胞中,检测EB-WE及化合物pyropheophorbide A和loliolide对NOX活性、iNOS源性NO产生及XO活性的影响。

3

DSS诱导结肠炎小鼠模型

评估EB-WE在体内对DSS诱导结肠炎的治疗效果

给予小鼠2.5% DSS饮水诱导急性结肠炎,同时口服EB-WE,监测临床评分、组织病理、细胞因子和蛋白表达。

4

临床和组织学评估

评估EB-WE对DSS结肠炎临床严重程度和组织损伤的影响

每日记录体重、粪便粘稠度和便血评分,计算DAI;结肠组织进行H&E染色评估组织损伤。

5

氧化还原通路分析

探究EB-WE对氧化应激和抗氧化防御系统的影响

在结肠组织中检测NOX2、NOX4、TXNIP等促氧化蛋白和NQO1、NRF2、HO-1等抗氧化蛋白表达,测定NAD+/NADH和NADP+/NADPH比值及血清3-硝基酪氨酸水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI培养基----
胎牛血清----
L929细胞条件培养基----
脂多糖Sigma-Aldrich--
三磷酸腺苷Sigma-Aldrich--
焦脱镁叶绿酸ASanta Cruz Biotechnology24533-72-0
洛利奥利德Sigma-Aldrich5989-02-6
APX-115----
1400 W----
别嘌呤醇----
超氧化物比色法试剂盒ElabscienceE-BC-K815-M
抑制剂筛选试剂盒ElabscienceE-BC-D019
小鼠IL-1β/IL-18 DuoSet ELISA试剂盒R&D Systems--
NAD+/NADH检测试剂盒ElabscienceE-BC-K804-M
NADP+/NADPH检测试剂盒ElabscienceE-BC-K803-M
NLRP3抗体Abcam--
ASC抗体Cell Signaling Technology--
caspase-1 p20抗体Cell Signaling Technology--
DCF-DA----
DAPI----
Zeiss LSM共聚焦显微镜Carl Zeiss--
RIPA裂解液----
PVDF膜----
ImageJ软件National Institutes of Health--
葡聚糖硫酸钠MP Biomedicals--
TNF-α ELISA试剂盒R&D Systems--
IFN-γ ELISA试剂盒R&D Systems--
IL-2 ELISA试剂盒R&D Systems--
IL-4 ELISA试剂盒R&D Systems--
GraphPad Prism 9GraphPad Software--
SAS软件9.4版SAS Institute Inc.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外BMDM炎症小体实验
BMDM分化条件(3月龄雄性C57BL/6小鼠、RPMI+L929条件培养基7天);LPS浓度(1 µg/mL)和处理时间(4-5小时);ATP浓度(5 mM)和处理时间(30分钟);EB-WE预处理浓度(100/200 µg/mL)及预处理时间(1小时)
阅读提示:Materials and Methods 4.2和4.3节
NOX/iNOS/XO活性实验
RAW 264.7细胞接种密度(1×10^5/孔);LPS浓度(0.5 µg/mL)和处理时间(12小时);EB-WE及化合物浓度(EB-WE 100/200 µg/mL、pyropheophorbide A和loliolide 10 µM);抑制剂浓度(APX-115 10 µM、1400W 100 µM、别嘌呤醇 100 µM)
阅读提示:Materials and Methods 4.4节
DSS诱导结肠炎小鼠模型
动物品系、性别、周龄(8周龄雄性C57BL/6小鼠);DSS浓度(2.5% w/v)和暴露时间(5天+2天恢复);EB-WE给药剂量(2或5 mg/天)和方式(口服灌胃);分组(n=10/组)
阅读提示:Materials and Methods 4.8节
临床和组织学评估
DAI评分标准(体重减轻、粪便粘稠度、出血);结肠组织固定和切片条件(10%中性福尔马林,7 µM切片)
阅读提示:Materials and Methods 4.9和4.10节
氧化还原通路分析
Western blot抗体列表及稀释度;NAD+/NADH和NADP+/NADPH检测试剂盒(Elabscience);血清3-NT测量方法
阅读提示:Materials and Methods 4.7节和4.10节