OPC分离与鉴定
从炎症性和非炎症性微环境中分离高纯度OPCs并进行特征鉴定。
从铜宗和LPS模型小鼠大脑中分离OPCs,培养后通过免疫细胞化学检测PDGFRα和Olig2,RT-qPCR检测SOX10表达,验证细胞身份。
Effect of transplanted oligodendrocyte precursor cells derived from inflammatory and non-inflammatory microenvironment on remyelination in a chronic cuprizone model.
包含体外OPC分离与鉴定、体内慢性铜宗模型建立、细胞移植、归巢检测、LFB染色、IF染色及RT-qPCR等多个证据层级,并进行功能验证。
C57BL/6小鼠慢性铜宗脱髓鞘模型 脂多糖诱导的神经炎症模型 原代少突胶质前体细胞(OPCs)
OPC分离来源:铜宗模型或LPS模型 移植细胞数量:3×10^5个OPCs经尾静脉注射 慢性脱髓鞘模型建立:0.2%铜宗饮食12周 归巢检测时间:移植后24小时 关键基因表达检测:MBP、MOG、SOX10、TGFβ
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从炎症性和非炎症性微环境中分离高纯度OPCs并进行特征鉴定。
从铜宗和LPS模型小鼠大脑中分离OPCs,培养后通过免疫细胞化学检测PDGFRα和Olig2,RT-qPCR检测SOX10表达,验证细胞身份。
评估移植OPCs在胼胝体中的归巢能力及在器官中的分布。
DiI标记OPCs后经尾静脉注射至CPZ模型小鼠,24小时后通过荧光显微镜检测胼胝体及内脏器官中的DiI阳性细胞。
评估OPC移植对胼胝体髓鞘再生的影响。
通过LFB染色检测髓鞘含量,比较各组间髓鞘再生程度。
评估OPC移植对细胞外基质CSPG4水平的影响。
通过免疫荧光染色检测胼胝体中CSPG4的表达水平。
检测髓鞘相关基因和细胞因子的表达变化。
提取胼胝体组织RNA,通过RT-qPCR检测SOX10、MBP、MOG和TGFβ的mRNA表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 铜宗 | Sigma-Aldrich | -- |
| 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L2880 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Biochrom | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 血小板源性生长因子AA | PeproTech | -- | |
| 细胞鉴定 | 抗PDGFRα抗体 | Abcam | ab203491 |
| FITC标记的山羊抗兔IgG | Elabscience | E-AB-1014 | |
| 抗Olig2抗体 | Santa Cruz | sc-518069 | |
| CY3标记的山羊抗小鼠IgG | Elabscience | E-AB-1011 | |
| DAPI | -- | -- | |
| 细胞标记 | DiI | Life Technologies | -- |
| 免疫荧光 | 抗CSPG4抗体 | Santa Cruz | sc-166251 |
| 山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab6785 | |
| RNA提取 | SinaPure RNA提取试剂盒 | Sinaclon | -- |
| cDNA合成 | Easy cDNA合成试剂盒 | Parstous | -- |
| RT-qPCR | VERNER SYBER Green预混液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| NanoDrop 1000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 显微镜 | 奥林巴斯BX50荧光显微镜 | Olympus | -- |
| 奥林巴斯DP72相机 | Olympus | -- | |
| 奥林巴斯BX51荧光显微镜 | Olympus | -- | |
| 奥林巴斯CX310光学显微镜 | Olympus | -- | |
| E.30数码相机 | Olympus | -- | |
| 图像分析 | ImageJ软件 | -- | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 铜宗浓度0.2%(W/W)饮食12周;LPS剂量1 mg/kg腹腔注射5天;小鼠品系、性别、周龄、体重 阅读提示:详见Methods中的Demyelination model部分 |
| OPC分离与培养 | 分离来源:铜宗和LPS模型小鼠;培养条件:高糖DMEM+10%FBS+1%青霉素/链霉素,PDGF AA 10 ng/ml;纯化方法:摇动18-20小时 阅读提示:详见Methods中的Isolation, culture, and purification of OPCs部分 |
| 细胞移植 | 移植细胞数:3×10^5个;注射方式:尾静脉注射;细胞标记:DiI 2 μg/mL 阅读提示:详见Methods中的DiI labeling of OPCs, transplantation, homing assay部分 |
| 归巢检测 | 检测时间:移植后24小时;检测组织:胼胝体、肺、肝、脾 阅读提示:详见Methods中的DiI labeling of OPCs, transplantation, homing assay部分及图2图注 |
| 髓鞘染色 | LFB染色步骤;切片厚度5 μm;定量方法:ImageJ软件 阅读提示:详见Methods中的Luxol fast blue staining部分 |
| 免疫荧光 | CSPG4抗体:Santa Cruz sc-166251;二抗:Abcam ab6785;抗原修复条件 阅读提示:详见Methods中的Immunofluorescence staining部分 |
| RT-qPCR | 引物序列:SOX10, MBP, MOG, TGFβ;内参基因:β-Actin;数据归一化:CPZ组为对照 阅读提示:详见Methods中的Quantitative real-time PCR部分及表1引物序列 |