间歇性他克莫司治疗延缓荷黑色素瘤小鼠CD8+肿瘤浸润淋巴细胞耗竭并增强PD1阻断疗法

Intermittent Tacrolimus Treatment Delays CD8+ Tumor-Infiltrating Lymphocyte Exhaustion and Enhances PD1 Blockade Therapy in Melanoma-Bearing Mice.

作者信息Darong Chen, Sisi Feng, Zhaolong Chen, Zhisheng Weng, Shu Zhang, Junjin Lin, Zili Wang
PMID41811893
发布时间2026
DOI10.1155/jimr/8444562

实验完整度

高

包含体外细胞培养、小鼠体内肿瘤模型、流式细胞术检测、功能验证及机制分析(耗竭表型、记忆标志物)等多个独立证据层级。

主要模型

小鼠B16F10黑色素瘤模型 C57BL/6小鼠 CD8+肿瘤浸润淋巴细胞

重点核对

他克莫司给药剂量:2.25 mg/kg,腹腔注射,每5天一次 PD1阻断抗体给药剂量:200 μg,腹腔注射,在他克莫司治疗前1天 肿瘤细胞接种数量:1×10^6 B16F10细胞皮下注射 流式细胞术检测时间:他克莫司首次给药后4天 Trp2180–188肽刺激浓度:10 μg/mL

摘要

持续的抗原暴露启动了CD8+ T细胞耗竭的发育过程,伴随着抑制性受体(IRs)表达的逐渐增加。我们先前的研究将T细胞耗竭视为慢性抗原刺激诱导的过度活化状态。为了干预CD8+ T细胞耗竭的发育过程,我们通过间歇性阻断T细胞活化信号,使用T细胞活化抑制剂他克莫司来调节过度活化状态。荷黑色素瘤小鼠接受间歇性他克莫司(IT)和/或程序性细胞死亡1(PD1)阻断抗体治疗。通过流式细胞术检测CD8+肿瘤浸润淋巴细胞(CD8+TILs)的耗竭表型。利用IRs(PD1和CD223)以及记忆标志物(Ly108和CD127)的表达水平来界定CD8+TILs耗竭的程度。然后,使用酪氨酸酶相关蛋白2肽(Trp2180–188)检测肿瘤特异性CD8+TILs。此外,还评估了肿瘤生长速率和肿瘤重量。我们发现IT和/或PD1阻断增强了功能性CD8+TILs的浸润。研究结果表明,IT治疗和PD1阻断均增强了抗肿瘤免疫。联合IT和PD1阻断导致肿瘤生长速率和肿瘤重量更大幅度的降低。IT治疗还改善了CD8+TILs对黑色素瘤特异性Trp2180–188肽的反应。对CD8+TILs的详细分析显示,随着PD1表达的增加,Ly108和CD127急剧减少。与PD1阻断相比,联合治疗(IT加PD1阻断)显著增加了表达中等水平IRs的CD8+TILs数量,同时减少了表达高水平IRs的CD8+TILs数量。这些结果表明,联合治疗增强了CD8+TILs的功能并减缓了其IRs表达的增加,从而延缓了CD8+TILs耗竭的发育过程。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
间歇性他克莫司(IT)治疗能否延缓荷黑色素瘤小鼠CD8+TILs的耗竭并增强PD1阻断疗法的抗肿瘤效果?
核心机制
IT治疗通过间歇性阻断TCR信号调节过度活化状态,与PD1阻断联合可增强CD8+TILs功能,减缓其IRs表达增加,从而延缓耗竭进程。
主要证据
在B16F10黑色素瘤小鼠模型中,通过流式细胞术检测CD8+TILs的IRs(PD1、CD223)和记忆标志物(Ly108、CD127)表达,以及肿瘤生长和重量变化,证明联合治疗显著增加中等IRs表达的CD8+TILs比例,减少高IRs表达比例。
研究意义
本研究为通过调节T细胞活化信号来干预CD8+T细胞耗竭提供了潜在策略,可能改善现有免疫检查点阻断疗法的疗效。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立黑色素瘤小鼠模型

构建B16F10黑色素瘤小鼠模型以研究CD8+TILs耗竭及其干预

C57BL/6小鼠皮下注射1×10^6 B16F10细胞,待肿瘤可触及后随机分组。

2

治疗分组与药物干预

评估IT和/或PD1阻断对CD8+TILs及肿瘤生长的影响

小鼠随机分为四组:载体(V)、间歇性他克莫司(IT)、PD1阻断(P)和联合治疗(ITP)。他克莫司腹腔注射2.25 mg/kg每5天一次;PD1阻断抗体200 μg在他克莫司前1天腹腔注射。

3

流式细胞术检测CD8+TILs表型

分析CD8+TILs的耗竭相关标志物(PD1、CD223、Tim3、Ly108、CD127)和功能标志物(CD107a)

治疗开始后4天取肿瘤,消化成单细胞悬液,进行表面染色和胞内染色,通过流式细胞术检测。

4

检测细胞因子产生

评估CD8+TILs的功能状态

肿瘤单细胞悬液用PMA/离子霉素或Trp2180–188肽刺激4小时,然后进行胞内细胞因子染色。

5

评估肿瘤生长和重量

评估治疗对肿瘤生长的抑制效果

每2-3天测量肿瘤体积,治疗开始后15天称量肿瘤重量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证分子表达变化
验证免疫效应
评估体内效果

产品清单

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
B16F10细胞培养条件:DMEM培养基添加10% FBS,37°C、5% CO2
阅读提示:见Methods 2.1节
动物模型
8-10周龄雌性C57BL/6小鼠,皮下注射1×10^6 B16F10细胞
阅读提示:见Methods 2.1和2.3节
药物处理
他克莫司给药剂量2.25 mg/kg,腹腔注射,每5天一次;PD1阻断抗体200 μg,腹腔注射,在他克莫司前1天
阅读提示:见Methods 2.3节
流式细胞术
肿瘤消化酶浓度(胶原酶A 2 mg/mL,DNase I 1 mg/mL)和消化时间(15分钟);检测时间为首次他克莫司给药后4天
阅读提示:见Methods 2.4节
肽刺激
Trp2180-188肽浓度10 μg/mL,刺激4小时
阅读提示:见Methods 2.4节
统计设计
样本量(每组n值),至少三次独立实验,肿瘤生长曲线用双因素方差分析
阅读提示:见Methods 2.5节