罗伊氏粘液乳杆菌LR08的安全性与免疫调节作用:来自随机对照试验的临床前和临床证据

Safety and immune-regulating effects of Limosilactobacillus reuteri LR08: Preclinical and clinical evidence from a randomized controlled trial

作者信息Mei Han, Fei Xu, Yao Dong, Jianguo Zhu, Shuguang Fang, Liming Zhao
PMID41650801
期刊Clin Nutr
发布时间2026-03
DOI10.1016/j.clnu.2026.106582

实验完整度

包含全基因组测序、体外安全性评估、14天小鼠急性毒性试验以及随机双盲安慰剂对照临床试验等多层级验证,并含有功能与机制验证。

主要模型

Caco-2细胞 SPF级ICR小鼠 健康成人(随机对照试验)

重点核对

LR08菌株编号为DSM 35055,由Wecare Probiotics Co., Ltd.提供 随机双盲安慰剂对照试验,48例健康成人,1:1分组,LR08剂量为30 billion CFU/天 干预持续8周,主要终点为血清LL-37和钙卫蛋白 16S rRNA V3-V4区测序,使用QIIME2和DADA2 统计显著性设为p < 0.05,微生物组多重检验采用Benjamini-Hochberg FDR,q < 0.10

摘要

本研究旨在系统评估罗伊氏粘液乳杆菌LR08的基因组安全性,并评估其对健康成人代谢健康、免疫功能及肠道菌群组成的影响。通过全基因组测序和生物信息学分析,评估了与致病性、抗生素耐药性和生物胺合成相关的基因存在情况。体外实验和动物研究评估了溶血活性、细胞毒性和整体生物安全性。在一项随机、双盲、安慰剂对照试验中,48名健康成人分别接受LR08(每天300亿CFU)或安慰剂,持续8周。测量了临床、生化和免疫参数,并使用16S rRNA测序评估肠道菌群变化。基因组分析确认不存在致病性、抗生素耐药性或生物胺合成相关基因。体外和动物试验证实其无溶血、无细胞毒性以及整体安全性。临床上,与基线相比,LR08显著降低血清尿酸(p < 0.001)和LDL-C水平(p = 0.007)。与安慰剂相比,LR08补充显著增加了唾液IgA(p = 0.039)、IgM(p = 0.029)和钙卫蛋白水平(p < 0.05)。肠道菌群分析显示α多样性增加,有益菌属如Blautia和Romboutsia富集,碳水化合物代谢和遗传信息处理相关通路上调。L. reuteri LR08表现出可靠的基因组安全性,并对健康成人的代谢、免疫和肠道菌群谱具有良好影响。这些发现支持其作为安全益生菌在代谢调节、免疫增强和菌群调节方面的潜在应用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
本研究旨在系统评估罗伊氏粘液乳杆菌LR08的基因组安全性及其对健康成人代谢健康、免疫功能和肠道菌群组成的影响。
核心机制
LR08可能通过菌群-代谢物-宿主免疫轴调节免疫平衡,即增强黏膜IgA/IgM分泌,同时降低促炎因子LL-37,并富集产短链脂肪酸的菌属(如Blautia、Romboutsia),从而调节宿主免疫和代谢。
主要证据
支持证据包括:全基因组测序确认无致病性、耐药或生物胺合成基因;体外实验显示无溶血、无细胞毒性;临床试验显示LR08显著降低血清尿酸和LDL-C,增加IgA、IgM和钙卫蛋白,并提高肠道菌群α多样性。
研究意义
作者认为LR08作为安全有效的功能性益生菌,在肠道健康管理和免疫支持方面具有潜力,尤其在亚健康人群及具有特定代谢或免疫调节需求的个体中。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

全基因组测序与安全性分析

评估LR08的遗传安全性和功能潜力。

对LR08进行短读长测序(MGI G99 PE150平台),组装基因组,并利用CARD、ResFinder、VFDB等数据库筛选耐药基因和毒力因子,预测生物胺合成基因和次级代谢产物基因簇。

2

体外益生特性和安全性评估

评估LR08在模拟胃肠道条件下的生存适应性、代谢安全性及细胞/血液相容性。

测定LR08的耐酸、耐胆盐、耐胃肠液、生长温度适应性、黏蛋白降解能力、Caco-2细胞黏附、BSH活性、D-/L-乳酸产量、与商业益生菌共培养拮抗作用、生物胺含量、溶血活性及细胞毒性。

3

抗生素敏感性测试

评估LR08对抗生素的敏感性,判断其表型耐药性。

使用肉汤微量稀释法测定LR08对15种抗生素的最低抑菌浓度(MIC),并与EFSA临界值比较。

4

14天急性口服毒性试验

评估LR08在动物体内的急性毒性。

对20只6周龄SPF级ICR小鼠(雌雄各10只)单次灌胃LR08(2×10^10 CFU/kg体重),观察14天,记录临床中毒迹象、死亡、体重变化,并解剖检查主要器官。

5

随机双盲安慰剂对照临床试验

评估LR08对健康成人代谢、免疫和肠道菌群的影响。

48名健康成人随机分配至LR08组或安慰剂组,每天摄入一袋含30 billion CFU的LR08冻干粉或安慰剂(麦芽糊精),持续8周。在基线和第8周收集血、尿、粪便样本,测定代谢、免疫指标及肠道菌群。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MRS肉汤----
MRS琼脂----
磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.4)Life Technologies Ltd.--
DNeasy 血液和组织试剂盒Qiagen--
Qubit 1.0荧光计Thermo Fisher Scientific--
Caco-2细胞----
CCK-8溶液----
LDH-Glo 细胞毒性试剂盒Promega--
R-Biopharm D-/L-乳酸试剂盒R-Biopharm--
SPF级ICR小鼠----
LL-37 ELISA试剂盒Hycult BiotechHK321
钙卫蛋白免疫测定----
IgA ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H6002
IgG ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H6001
IgM ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H6003
QIAamp 快速粪便DNA微型试剂盒QIAGEN--
Sysmex XE-5000分析仪Sysmex--
Dirui H-500分析仪Dirui--
Roche Cobas 8000模块化分析仪Roche--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
菌株制备
菌株来源、保存条件(-80°C,40%甘油)、传代数(不超过3代)、菌液浓度(1×10^8 CFU/mL用于体外、2×10^10 CFU/kg用于小鼠、3.0×10^10 CFU/3g用于临床)。
阅读提示:2.1 Strain source and preparation
全基因组测序
测序平台(MGI G99 PE150)、组装参数、数据库版本及筛选阈值(AMR基因identity≥80%,coverage≥70%;生物胺基因e-value≤1e-6,coverage≥70%)。
阅读提示:2.2.1 WGS analysis, 3.1 WGS and bioinformatics analysis results
体外功能与安全评估
酸耐受pH梯度(2.0,2.5,3.0)、胆盐浓度(0.1%)、孵育时间(2h)、黏蛋白浓度(0.3%)、Caco-2细胞密度(1.5×10^4/孔)、处理浓度与时间(10%/20%上清24h;活菌10^7-10^9 CFU/mL 4/8h)、CCK-8和LDH检测条件。
阅读提示:2.2.2 In vitro probiotic properties and physicochemical safety assessment, 3.2 Probiotic properties and safety assessment
抗生素敏感性测试
测试抗生素种类及浓度范围、菌液浓度(3×10^5 CFU/mL)、培养条件(厌氧37°C 48h)、质控菌株(L. paracasei ATCC 334)及EFSA cut-off值。
阅读提示:2.2.3 Antibiotic susceptibility testing, Table 2
动物急性毒性试验
小鼠品系、周龄、体重、剂量、给药途径(灌胃)、观察期(14天)、观察参数,无处理相关死亡或异常,且LD50 > 2×10^10 CFU/kg。
阅读提示:2.2.4 The 14-day acute oral toxicity test in mice, Table S5
临床试验设计
受试者年龄(18-45岁)、健康定义、排除标准、随机化方法(R 4.3.2)、盲法实施、样本量(48例)、干预剂量(每天30 billion CFU)、时长(8周)、随访(基线、第8周)、主要终点(LL-37和calprotectin)。
阅读提示:2.3 Clinical trial design, Fig. 2
临床样本检测
样本采集时间(早晨空腹)、保存条件(血清-80°C;粪便-80°C)、检测方法(LL-37、钙卫蛋白、IgA/IgG/IgM ELISA试剂盒货号)、生化指标检测平台。
阅读提示:2.3.4 Clinical observation timepoints and data collection plan
肠道菌群分析
DNA提取试剂盒(QIAamp Fast DNA Stool Mini Kit)、引物序列(F1/R2)、测序平台(Illumina MiSeq 2×300bp)、分析流程(QIIME2、DADA2、SILVA数据库)、α/β多样性指标、差异分析(LEfSe,LDA>2.0,p<0.05)、功能预测(PICRUSt2)及多重检验FDR设置。
阅读提示:2.3.4 Clinical observation timepoints and data collection plan, 3.3.3 Effects of LR08 intervention on gut microbiota composition and function
统计分析
统计软件(R 4.3.2)、正态性检验(Shapiro-Wilk)、组间比较(t或Mann-Whitney U)、组内比较(配对t或Wilcoxon)、分类变量(卡方或Fisher)、显著性阈值(p<0.05),微生物组多重检验采用FDR(q<0.10)。
阅读提示:2.4 Statistical analysis