骨髓来源巨噬细胞中Irf5敲低有利于M1向M2转化

Irf5 Knockdown in Bone Marrow-Derived Macrophages Favors M1-to-M2 Transition.

作者信息Elizaveta Petrova, Ekaterina Sherstyukova, Snezhanna Kandrashina, Vladimir Inozemtsev, Alexandra Tsitrina, Viktoriya Fedorova, Mikhail Shvedov, Artem Kuzovlev, Maxim Dokukin, Yuri Kotelevtsev, Arsen Mikaelyan, Viktoria Sergunova
PMID41677605
期刊Cells
发布时间2026-01
DOI10.3390/cells15030238

实验完整度

包含体外细胞模型(BMDM)的极化、siRNA敲低、Western blot、免疫荧光、线粒体染色、原子力显微镜等多层级验证,并进行了功能验证。

主要模型

小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDM) RAW 264.7巨噬细胞系

重点核对

siRNA敲低Irf5的序列及浓度(10 nM) M1极化条件:100 ng/mL LPS;M2极化条件:20 ng/mL IL-4和20 ng/mL IL-10 siLuc作为非靶向对照 AFM测量采用球形探针(SD-Sphere-CONT-L-10)的Young's modulus 样本量:AFM成像每组10个细胞,力学测量每组50个细胞

摘要

转录因子IRF5维持巨噬细胞处于促炎性M1状态。我们评估了siRNA介导的Irf5敲低对小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDM)在M0、M1和M2状态下的影响。M1巨噬细胞中Irf5敲低使其表型上类似于M2巨噬细胞,这反映在M1标志物iNOS表达降低、M2标志物CD206表达增加、线粒体含量增加以及相应的形态学变化。有趣的是,M2表型也受到Irf5减少的影响。使用原子力显微镜(AFM),我们表明Irf5敲低增加了质膜粗糙度,特别是在M2巨噬细胞中。基于AFM的刚度测量表明,Irf5敲低改变了巨噬细胞的弹性,可能影响其功能行为。我们的数据提示IRF5在巨噬细胞极化中具有复杂作用,支持其在M1和M2状态下作为转录激活因子和抑制因子的双重角色,并强调IRF5在维持巨噬细胞代谢和功能特性中的重要性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
IRF5在巨噬细胞极化中如何影响M1和M2表型的标志物表达、线粒体含量和生物力学特性?
核心机制
IRF5作为转录因子,在M1状态下激活iNOS表达,抑制CD206表达;在M2状态下则相反,从而调控巨噬细胞极化。
主要证据
siRNA介导的Irf5敲低导致M1巨噬细胞中iNOS表达降低,CD206表达升高,线粒体含量增加,细胞形态向M2转变,同时增加了质膜粗糙度和Young's modulus。
研究意义
研究提出通过敲低Irf5将巨噬细胞极化为促修复的M2表型,可能为炎症相关疾病提供新的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

BMDM分离与分化

获得原代巨噬细胞用于极化实验。

从FVB小鼠骨髓中分离细胞,并在含LCCM的生长培养基中培养7天诱导分化为BMDM。

2

极化与转染

将BMDM极化为M1和M2表型,并进行Irf5敲低。

BMDM用LPS(M1)或IL-4+IL-10(M2)处理24小时诱导极化,然后使用siRNA(siIrf5或siLuc)转染24小时。

3

蛋白表达验证

验证Irf5敲低效率及M1/M2标志物蛋白表达变化。

通过Western blot检测IRF5蛋白水平,通过免疫荧光检测iNOS和CD206的表达。

4

线粒体含量检测

评估Irf5敲低对巨噬细胞线粒体含量的影响。

使用MitoFlamma Green染料对活细胞进行染色,并通过荧光显微镜成像和定量。

5

细胞形态分析

评估Irf5敲低对巨噬细胞形态的影响。

通过鬼笔环肽染色和AFM成像测量细胞圆形度、伸长因子、最大长度和高度。

6

质膜纳米结构分析

评估Irf5敲低对质膜粗糙度的影响。

通过AFM成像获取细胞表面形貌,并计算平均粗糙度。

7

力学性能测量

评估Irf5敲低对巨噬细胞弹性(Young's modulus)的影响。

使用AFM力曲线测量细胞弹性模量,采用球形探针。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Thermo Fisher Scientific--
胎牛血清Thermo Fisher Scientific--
GlutaMax添加剂Thermo Fisher Scientific--
青霉素-链霉素Gibco--
DMEM-F12培养基Thermo Fisher Scientific--
脂多糖Sigma-Aldrich--
白细胞介素-4Miltenyi Biotec--
白细胞介素-10Miltenyi Biotec--
Lipofectamine RNAi Max转染试剂Invitrogen--
RIPA裂解缓冲液Thermo Fisher Scientific--
蛋白酶抑制剂混合物Roche--
硝酸纤维素膜Bio-Rad--
抗IRF5抗体ElabscienceE-AB-19512
抗β-肌动蛋白抗体Sigma-AldrichA5541
HRP偶联抗小鼠IgGInvitrogen31430
HRP偶联抗兔IgGInvitrogen31466
SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物Thermo Fisher Scientific34577
Vilber Lourmat Fusion Solo S成像系统Vilber--
MitoFlamma Green染料BioActsRMS1101
10%缓冲福尔马林Biovitrum--
牛血清白蛋白文中未明确说明--
Triton X-100文中未明确说明--
抗iNOS抗体Abcam--
抗CD206抗体Abcam--
Alexa Fluor偶联驴抗兔二抗InvitrogenA-31573
FSD Fluor 555鬼笔环肽BioActs--
Hoechst染料Thermo Fisher Scientific--
Abberior固体抗淬灭封片剂Abberior--
NTEGRA Prima原子力显微镜NT-MDT SI--
NTEGRA BIO原子力显微镜NT-MDT SI--
NSG01悬臂NT-MDT SI--
SD-R150-T3L450B探针Nanosensors--
SD-Sphere-CONT-L-10探针Nanosensors--
QuPath软件文中未明确说明--
Cell Profiler软件文中未明确说明--
Image Analysis软件NT-MDT SI--
Gwyddion软件文中未明确说明--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
BMDM分化
小鼠品系和年龄:12-16周龄FVB小鼠
阅读提示:2.2节
极化
M1:100 ng/mL LPS;M2:20 ng/mL IL-4和20 ng/mL IL-10;极化时间24小时
阅读提示:2.3节
转染
siRNA浓度10 nM;转染时间24小时;siLuc作为对照
阅读提示:2.3节
线粒体染色
MitoFlamma Green染料浓度1:1000;染色时间50分钟
阅读提示:2.6节
AFM力学测量
探针类型:球形探针;每组测量细胞数50个
阅读提示:2.9节和2.11节