植物乳杆菌LPPerfectus001通过调节肠道菌群和NF-κB信号通路缓解小鼠肠易激综合征

Lactiplantibacillus plantarum LPPerfectus001 Alleviating Irritable Bowel Syndrome in Mice by Modulating Gut Microbiota and NF-κB Signaling Pathway.

作者信息Yue Wang, Xiaoyue Bai, Yizhi Jing, Xin Feng, Yajuan Guo, Yanling Hao, Dun Su, Zhengyuan Zhai
PMID41683005
期刊Foods
发布时间2026-01-23
DOI10.3390/foods15030417

实验完整度

包含体外细胞抗炎实验、体内动物模型、转录组测序、16S rRNA测序及RT-qPCR验证,多层次功能与机制验证。

主要模型

LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞 C57BL/6J小鼠IBS模型(柠檬酸杆菌感染联合避水应激)

重点核对

LPS诱导RAW264.7细胞炎症模型预处理和刺激浓度 小鼠IBS模型诱导:柠檬酸杆菌DBS100感染剂量1×10^10 CFU LP001灌胃剂量2×10^9 CFU/天 避水应激暴露时间 结肠组织形态学和免疫荧光分析

摘要

肠易激综合征(IBS)是一种常见的胃肠道疾病,常伴有低度炎症、内脏高敏感和肠道菌群失调。本研究探讨了植物乳杆菌LPPerfectus001(L. plantarum 001)缓解IBS症状的治疗潜力。在脂多糖(LPS)诱导的RAW264.7巨噬细胞模型中,L. plantarum 001通过抑制一氧化氮产生和下调促炎细胞因子表现出显著的抗炎特性。此外,在由啮齿类柠檬酸杆菌感染和避水应激诱导的小鼠IBS模型中,L. plantarum 001干预降低了粪便含水量,通过上调ZO-1和MUC2改善肠道屏障完整性,并减轻内脏高敏感。转录组分析结合RT-qPCR显示,L. plantarum 001调节了NF-κB信号通路和Th1/Th2细胞分化,降低了关键炎症基因的表达。此外,16S rRNA测序显示,L. plantarum 001恢复了肠道菌群多样性,富集了有益产丁酸的Odoribacter,并抑制了促炎的变形菌门。这些发现表明,L. plantarum 001通过涉及屏障修复、菌群调节和抗炎信号的多靶点机制缓解IBS,突出了其作为IBS益生菌疗法的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
植物乳杆菌LPPerfectus001能否通过调节肠道菌群和NF-κB信号通路缓解肠易激综合征症状及其潜在机制。
核心机制
通过上调肠道屏障蛋白ZO-1和MUC2改善屏障功能,抑制NF-κB信号通路及Th1/Th2免疫应答,调节肠道菌群(抑制促炎变形菌门,富集产丁酸Odoribacter)的多靶点机制。
主要证据
体外细胞实验显示抑制NO和促炎因子;动物模型显示降低粪便含水量、改善结肠长度、减轻内脏高敏感;转录组和RT-qPCR显示NF-κB和Th1/Th2相关基因下调;16S rRNA测序显示菌群多样性和组成恢复。
研究意义
为L. plantarum 001作为IBS辅助治疗的益生菌候选提供分子基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外抗炎活性筛选

筛选具有抗炎潜力的植物乳杆菌菌株

利用LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞模型,检测不同菌株处理后NO产生和促炎基因表达。

2

动物模型建立与干预

评估L. plantarum 001对IBS症状的影响

C57BL/6J小鼠通过柠檬酸杆菌感染和避水应激构建IBS模型,并给予LP001灌胃干预,检测体重、粪便含水量、结肠长度和内脏敏感性。

3

组织病理和屏障功能评估

评估结肠组织结构和屏障蛋白表达

对结肠组织进行H&E、AB-PAS染色,观察炎症浸润、隐窝深度、杯状细胞数量,并通过免疫荧光检测ZO-1和MUC2表达。

4

转录组测序和机制验证

揭示L. plantarum 001缓解IBS的分子机制

对结肠组织进行RNA-seq,分析差异表达基因,进行GO和KEGG富集,并采用RT-qPCR验证NF-κB和Th1/Th2通路关键基因。

5

肠道菌群分析

评估L. plantarum 001对肠道菌群组成和多样性的影响

对粪便样本进行16S rRNA基因测序,分析α多样性、β多样性及菌群组成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MRS培养基Beijing Aobox Biotechnology Co., Ltd.--
LB培养基----
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素Sigma-Aldrich--
脂多糖Sigma-Aldrich--
一氧化氮比色检测试剂盒Elabscience--
AG RNAex Pro试剂Accurate Biotechnology--
Evo M-MLV逆转录试剂盒Accurate Biotechnology--
SYBR Green Premix Pro Taq Hs qPCR试剂盒Accurate Biotechnology--
QuantStudio™5实时荧光定量PCR仪Thermo Fisher--
啮齿类柠檬酸杆菌DBS100Ningbo Mingzhou Biotechnology Co., Ltd.--
ZO-1抗体Abcam--
MUC2抗体Proteintech--
DAPI----
NanoDrop ONEc分光光度计Thermo Fisher Scientific--
Illumina HiSeq平台Illumina--
E.Z.N.A.土壤DNA提取试剂盒Omega Bio-tek--
Illumina MiSeq平台Illumina--
GraphPad Prism软件----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外抗炎实验
细胞模型(RAW264.7),LPS浓度(100 μg/mL),菌株处理浓度(1×10^6 CFU/mL),处理时间(2h预处理+22h共孵育),NO检测试剂盒品牌。
阅读提示:见2.2节及图1
动物模型建立
小鼠品系和性别(C57BL/6J雄性),周龄(8周),体重(18-20g),感染菌株和剂量(Citrobacter rodentium DBS100,1×10^10 CFU),LP001剂量(2×10^9 CFU/天),避水应激时间(第18-30天)。
阅读提示:见2.3节
组织学与免疫荧光
固定时间(24h),切片厚度(4 μm),抗体稀释比(ZO-1 1:2000,MUC2 1:300),计数方法(每组2张图像,20个隐窝)。
阅读提示:见2.7节及图3
转录组测序
差异表达基因筛选阈值(|log2FC|≥1,FDR<0.05),测序平台(Illumina HiSeq),分析工具(SOAPnuke,DESeq2)。
阅读提示:见2.9节
肠道菌群分析
测序区域(V3-V4),引物序列(338F,806R),测序平台(Illumina MiSeq),DNA提取试剂盒(E.Z.N.A. Soil DNA Kit)。
阅读提示:见2.10节